
- •Ход работы
- •Справочные материалы Первичная статистическая обработка данных эксперимента
- •Коэффициент Стьюдента t для уровней значимости р
- •Алкан Алкен
- •Занятие IV-V. Водообмен клетки
- •Занятие IV-V. Водообмен клетки
- •Занятие IV-V. Водообмен клетки
- •Занятие IV-V. Водообмен клетки
- •Занятие IV-V. Водообмен клетки
- •Занятие IV-V. Водообмен клетки
- •Занятие VI. Движение воды в растении Работа 1. Определение поглощения воды потометрическим методом
- •Занятие VII. Физиология устьичного аппарата
- •Задачи:
- •Занятие IX. Физиология устойчивости растений
- •Оптическая плотность (д) инкубационной среды при разных температурах
- •Недостаток азота (n)
- •Недостаток фосфора (р)
- •Недостаток калия (к)
- •Недостаток кальция (Са)
- •Недостаток магния (Mg)
- •Недостаток серы (s)
- •Недостаток микроэлементов Недостаток железа (Fe)
- •Недостаток бора (в)
- •Содержание нитратов, фосфатов и калия в срезах стеблей и черешков листьев сельскохозяйственных культур при достаточной обеспеченности минеральными элементами
- •Определение нитратов
- •Определение неорганического фосфора
- •Определение калия
- •Содержание нитратов, фосфатов и калия у различных сельскохозяйственных культур
Занятие IV-V. Водообмен клетки
Работа 5. Определение осмотического потенциала клеточного сока методом плазмолиза
Водный потенциал Ψ характеризует способность воды диффундировать, испаряться или поглощаться. Чем ниже энергия молекул воды, тем ниже и водный потенциал; Ψ чистой воды принят равным нулю, с увеличением концентрации растворенных веществ водный потенциал становится более отрицательным. Молекулы воды перемещаются всегда в направлении от более высокого водного потенциала к более низкому. На водный потенциал раствора влияют не только растворенные вещества, но и другие факторы, поэтому компоненту водного потенциала, зависящую от присутствия растворенных веществ, обозначают как осмотический потенциал Ψs. С увеличением концентрации растворенных веществ осмотический потенциал становится все более отрицательным.
Если раствор отделен от чистой воды полупроницаемой мембраной, вода поступает в раствор и вследствие этого возникает давление (осмотическое давление, Р) равное по величине, но противоположное по знаку осмотическому потенциалу. Таким образом, осмотическое давление – это давление, которое необходимо приложить к раствору в осмометре для того, чтобы предотвратить поступление в него воды. Величина осмотического давления в МПа может быть вычислена по формуле:
Р = i сRT; где
R – универсальная газовая постоянная, равная 0,00831 л ∙ МПа/ град ∙ моль;
Ψs = - i сR Т – абсолютная температура, (273 + t в опыте, ˚С);
с – концентрация, моль;
i – изотонический коэффициент, для неэлектролитов равен 1,
для электролитов больше 1.
В отсутствие противодавления клеточной стенки, поступление воды в клетку определяется водным потенциалом Ψкл. равным осмотическому потенциалу Ψs клеточного сока.
Когда противодавление клеточной стенки Ψр. достигает большой величины и уравновесит отрицательный осмотический потенциал, клетка перестанет поглощать воду, в этом случае ее водный потенциал равен нулю (Ψкл.= 0).
Определение величины осмотического потенциала имеет большое значение для экологических и физиологических исследований. Величина осмотического потенциала позволяет судить о возможности растения поглощать воду. Уменьшение осмотического потенциала клеточного сока при засухе является показателем степени обезвоживания растений и необходимости полива. Растения в определенной степени способны регулировать величину осмотического потенциала, разнообразны и факторы, влияющие на величину осмотического потенциала.
Плазмолитический метод основан на подборе такой концентрации наружного раствора, которая вызывает начальный (уголковый) плазмолиз в клетках исследуемой ткани. В этом случае осмотический потенциал раствора примерно равен осмотическому потенциалу клеточного сока. Такие растворы называют изотоническими или изоосмотическими.
Цель работы: определить величину осмотического потенциала клеточного сока плазмолитическим методом.
Объект исследования: лук с окрашенными чешуями.
Реактивы и оборудование: 1 М NaCl, дистиллированная вода; 2 бюретки, 10 бюксов, фильтровальная бумага, предметные и покровные стекла, лезвие, препаровальные иглы, пинцет, секундомер, микроскоп.
Ход работы:
Приготовить в бюксах по 10 мл растворов хлорида натрия с концентрацией от 0,1 до 1 М с интервалом в 0,1М исходя из 1 М раствора NaCl и дистиллированной воды (таблица 1).Для отмеривания нужного объема раствора хлорида натрия и воды использовать бюретки.
Таблица 1
-
Концентрация раствора, М
На 10 мл раствора
1 М NaCl, мл
дист. вода, мл
0,1
1,0
9,0
0,2
2,0
8,0
0,3
3,0
7,0
0,4
4,0
6,0
0,5
5,0
5,0
0,6
6,0
4,0
0,7
7,0
3,0
0,8
8,0
2,0
0,9
9,0
1,0
1,0
10,0
0,0
Приготовить при помощи лезвия 20 срезов эпидермиса с выпуклой стороны чешуи окрашенного лука и через каждые 2 минуты погрузить в растворы по 2 среза на 30 минут.
После экспозиции срезы рассмотреть в микроскоп в том же порядке в капле соответствующего раствора из бюкса, отметить степень и форму плазмолиза, зарисовать наблюдаемую картину.
Определить изотоническую концентрацию раствора (С), которая вызывает уголковый плазмолиз у 50% клеток исследуемого среза.
Зная изотоническую концентрацию, вычислить осмотический потенциал клеточного сока в атмосферах по уравнению: Ψs = - сRT i. Значение i взять из таблицы 2.
Таблица 2
-
Концентрация
NaCl, М
1,0
0,8
0,7
0,6
0,5
0,4
0,3
0,2
0,1
Изотонический
коэффициент, i
1,62
1,64
1,66
1,68
1,70
1,73
1,75
1,78
1,83
6. Объяснить зависимость степени плазмолиза клеток от концентрации наружного раствора.
Результаты и обсуждение:
Концентра-ция раствора, М |
Продолжительность пребывания срезов в растворе, мин |
Степень и форма плазмолиза |
Микроскопическая картина |
|
время погружения |
время наблюдения |
|||
0,1 |
|
|
|
|
0,2 |
|
|
|
|
0,3 |
|
|
|
|
0,4 |
|
|
|
|
0,5 |
|
|
|
|
0,6 |
|
|
|
|
0,7 |
|
|
|
|
0,8 |
|
|
|
|
0,9 |
|
|
|
|
1,0 |
|
|
|
|
Изотоническая концентрация с =