- •Государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования «воронежский государственный университет»
- •020201 Биология
- •1.2.1. Создание модели экспериментального ревматоидного артрита в тканях у экспериментальных животных
- •1.2.3.Определение интенсивности биохемилюминесценции
- •1.2.4. Приготовление буферных растворов
- •1.2.5.4. Методика определения глюкозо-6-фосфатдегидрогеназы
- •1.2.6. Определение концентрации восстановленного глутатиона
- •1.2.5. Определение активности ферментов
- •1.2.5.1. Методика определения активности глутатионредуктазы
- •1.2.5.2. Методика определения активности глутатионпероксидазы
- •1.2.5.3. Методика определения никотинамидадениндинуклеотидфосфат-изоцитратдегидрогеназы
- •1.2.7. Методика определения аконитатгидратазы
- •1.2.8. Определение содержания диеновых конъюгатов
- •1.2.9. Определение активности каталазы
- •Ход определения активности каталазы
- •1.2.10. Методика определения концентрации цитрата
- •1.2.11. Методика определения содержания цитратсинтазы
- •1.2.12. Методика определения активности супероксиддисмутазы
- •1.2.13. Определение содержания белка по методу Лоури
- •1.2.14. Унифицированный метод определения содержания общего белка по биуретовой реакции
- •1.2.15. Определение содержания ά-токоферола
- •1.2.16. Статистическая обработка экспериментальных данных
- •2. Полученные результаты и их обсуждение
1.2.1. Создание модели экспериментального ревматоидного артрита в тканях у экспериментальных животных
Для индуцирования экспериментального ревматоидного артрита группе (n=12) животных вводили 100 мкл полного адъюванта Фрейнда в подушечку лапки животного. Инъекции осуществляли один раз в день.
1.2.2.Подготовка материала для исследования
Сердце извлекали у животных под наркозом после многократного промывания ледяным физиологическим раствором. Промытое сердце осушали фильтрованной бумагой и тщательно измельчали ножницами. Измельченную ткань взвешивали на торсионных весах и гомогенизировали в фарфоровой ступке в 3х-кратном объеме охлаждённой среды выделения.
Полученную в результате гомогенизации вытяжку фильтровали через слой капрона с квадратными ячейками (0,1 мм) и центрифугировали при 3500g в течение 10 минут для отделения неразрушенных тканевых элементов и мембран кардиомиоцитов. Супернатант использовали для определения исследуемых параметров.
Венозную кровь набирали в чистую стеклянную пробирку без антикоагулянта и помещали на 0,5 часа в термостат при температуре 37 0С, после расслаивания фаз собирали супернатант и центрифугировали его при 4000g в течение 10 мин. Полученную сыворотку использовали для дальнейшего исследования.
1.2.3.Определение интенсивности биохемилюминесценции
Для определения интенсивности процессов СО применяли метод железоиндуцированной хемилюминесценции, основанный на том, что в представленной схеме происходит каталитическое разложение пероксида водорода ионами металла с переходной валентностью – Fe2+, по реакции Фентона: Н2О2 + Fe2+ → ОН– + ОН●+ Fe3+. Образующиеся при этом свободные радикалы (R●, OH●, RO●, RO2●, O2●) вступают в процесс инициации СО в исследуемом биологическом субстрате. Рекомбинация радикалов RO2● приводит к образованию неустойчивого тетроксида, распадающегося с выделением кванта света. Интенсивность свободнорадикальных процессов определяли на биохемилюминометре БХЛ-06 с программным обеспечением. Кинетическую кривую биохемилюминесценции регистрировали в течении 30 секунд (времени наибольшей информации об его интенсивности) и определяли следующие параметры: светосумму хемилюминесценции (S), интенсивность вспышки (Imax), характеризующие интенсивность свободнорадикальных процессов и величину тангенса угла наклона кривой (tg2), характеризующую общую антиоксидантную активность. На интенсивность исследуемого процесса оказывает влияние полный комплекс соединений, обладающих как антиоксидантными, так и прооксидантными действиями, то есть метод дает возможность оценить уровень компенсаторных механизмов свободнорадикального процесса в организме. Данный метод является высокочувствительным на наличие патологических процессов в организме.
Среда для определения интенсивности биохемилюминесценции имела следующий состав: 0,4 мл 0,1М калий-фосфатного буфера (pH 7,5), 0,4 мл 0,01мМ FeSO4, 0,2 мл 2%-ного раствора H2O2 (вносимого непосредственно перед измерением). Исследуемый образец сыворотки крови вносили в количестве 0,1 мл перед добавлением 2%-ного раствора H2O2.
1.2.4. Приготовление буферных растворов
Таблица 1.
Приготовление среды выделения
50 мМ трис-HCl буфер |
1 мМ ЭДТА |
2 мМ БМКЭ |
15 мл |
4,4 мг |
2,4 мкл |
30 мл |
8,6 мг |
5 мкл |
70 мл |
20,44 мг |
10 мкл |
100 мл |
29,2 мг |
14,3 мкл |
Таблица 2.
Приготовление Калий-фосфатного буфера
0,1 М pH=7,4 |
50 мМ pH=7,4 |
0,3 М pH=8,0 |
653,6 мг KH2PO4 развести в 19 мл воды 3,693 г K2HPO4 развести в 81 мл воды |
326,8 мг KH2PO4 развести в 19 мл воды 1,847 г K2HPO4 развести в 81 мл воды |
546,6 мг KH2PO4 развести в 5 мл воды 12,995 г K2HPO4 развести в 95 мл воды |
Добавляем меньший объем к большему пока pH не станет соответствующий. После этого доводим водой до 200 мл. |
||
|
653,6 мг KH2PO4 развести в 38 мл воды 3,694 г K2HPO4 развести в 162 мл воды. На 400мл мл. |
|
|
81,7 мг KH2PO4 развести в 4,75 мл воды 462 мг K2HPO4 развести в 20,25 мл воды |
|
Приготовление Трис-HCl буфера pH=7,5 50 мМ для среды выделения
2,42 г – Трис
Развести в 350 мл воды и довести кислотой pH до 7,5
Довести водой до 400 мл.
Приготовление Трис-HCl буфера pH=7,8 50мМ
1,21 г – Трис
Развести в 180 мл воды
Довести кислотой pH до 7,8 и добавляем воды до 200 мл.
Приготовление среды элюции в Трис-HCl буфере pH=7,6-7,8
Трис – 0,5 г (на 450 мл), 130,5 мг – ЭДТА, БМКЭ – 22,5 мкл
Трис – 0,45 г (на 400 мл),116 мг – ЭДТА, БМКЭ – 20 мкл.
