
- •1 Семестр лабораторная работа №1
- •1.1 Универсальные реакции на белки
- •Цветные реакции на отдельные аминокислоты
- •Практическая значимость работы
- •2.4 Оформление работы
- •2.1 Обратимое и необратимое осаждение белков
- •2.2 Практическая значимость работы
- •2.3 Оформление работы
- •Лабораторная работа №2
- •Биуретовая реакция на пептиды
- •Серебряная проба на пуриновые основания
- •Качественная реакция на пентозу (Молиша)
- •Качественная реакция на углевод
- •Реакция на дезоксирибозу и рибозу
- •Молибденовая проба на фосфорную кислоту
- •Лабораторная работа №3
- •1. Влияние неспецифических факторов на активность ферментов
- •2. Влияние температуры на активность ферментов
- •3. Влияние реакции среды на активность ферментов и определение оптимума рН для амилазы слюны
- •4. Влияние активаторов и ингибиторов на активность амилазы слюны
- •Лабораторная работа №4
- •Раздел 1. Качественные реакции на водорастворимые и жирорастворимые витамины
- •1.1. Качественная реакция на витамин в1 (тиамин)
- •1.2. Качественная реакция на витамин в2 (рибофлавин)
- •1.7. Качественная реакция на витамин е
- •Раздел 2. Количественное определение витамина с
- •Лабораторная работа 5
- •1. Изучение активности сукцинатдегидрогеназы
- •2. Изучение активности малатдегидрогеназы
- •3. Изучение активности цитохромоксидазы мышц
- •4. Исследование окислительного фосфорилирования в митохондриях
- •Лабораторная работа 6
- •1. Изучение функционирования цтк по убыли ацетил КоА
- •2. Изучение функционирования цтк по образованию со2
- •3. Изучение функционирования цтк по образованию атомов водорода
- •Лабораторная работа 7
- •Лабораторная работа 8
- •2 Семестр лабораторная работа № 1
- •Лабораторная работа № 2
- •1. Проба Легаля.
- •2. Проба Ланге.
- •Лабораторная работа № 3
- •Лабораторная работа № 4
- •Лабораторная работа № 5
- •Лабораторная работа № 6
- •Лабораторная работа № 7
- •1. Определение коэффициента пересчета к.
- •2. Ход определения.
- •Меры предосторожности.
- •Лабораторная работа № 8
- •I. Качественные реакции на инсулин.
- •Лабораторная работа. № 9
- •Лабораторная работа № 11
- •Лабораторная работа № 12
Меры предосторожности.
При работе с набором следует соблюдать общие правила безопасности при работе с химическими веществами.
Нормальные величины:
Связанный билирубин 1,6 – 6,2 мкмоль/л
Общий билирубин 7,5 – 20,5 мкмоль/л
Результат анализа:
Вывод:
Лабораторная работа № 8
Тема: Качественные реакции на гормоны. Качественное и количественное определение 17-кетостероидов в моче
Цель работы: Исследовать химическую природу гормонов с помощью проведения цветных реакций.
I. Качественные реакции на инсулин.
Цветные реакции на инсулин, которые доказывают его белковую природу: а) биуретовая реакция; б) ксантопротеиновая реакция на циклические аминокислоты (фенилаланин, тирозин, триптофан); в) реакция на слабосвязанную серу (цистеин, цистин).
а) Биуретовая связь
Ход работы: К 5 каплям инсулина добавить 5 капель 10% раствора едкого натра и 1 каплю (избыток мешает чтению результатов реакции!!!) 1% раствора сернокислой меди. Жидкость окрашивается в фиолетовый цвет.
б) Ксантопротеиновая реакция
Ход работы: К 5 каплям инсулина добавить 3 капли концентрированной азотной кислоты, образуется осадок белка, который при осторожном нагревании на водяной бане окрашивается в желтый цвет. К охлажденной пробе (!!!) добавляют избыток аммиака - появляется оранжевое окрашивание вследствие образования хиноидного производного тирозина.
в) Реакция на слабосвязанную серу
Ход работы: Вначале денатурируют белок, добавляя к 5 каплям раствора инсулина 1% раствор уксуснокислого свинца к каплям до выпадения осадка. Затем также по каплям добавляют 10% раствор NaOH до полного просветления жидкости (растворение осадка денатурированного белка). Пробирку нагревают в кипящей водяной бане, пока раствор не окрасится в темный (черный) цвет за счет образования осадка сульфида свинца.
ΙΙ. Качественные реакции на адреналин, обусловленные наличием кольца пирокатехина в его молекуле.
а) Реакция с хлорным железом
Адреналин, в молекулу которого входит фенольное кольцо, образует с хлорным железом соединение типа фенолята.
Ход работы: В пробирку внести 2 - 3 капли раствора адреналина (1:1000) и каплю 1% раствора хлорного железа. Жидкость окрашивается в изумрудно-зеленый цвет, переходящий при стоянии в желтый.
б) Реакция с йодатом калия (КJО3)
Продукты «хиноидного» окисления адреналина окрашивают раствор адреналина в цвета от розового до бурого. В условиях опыта адреналин окисляется в пигмент - галохром, имеющий красно-фиолетовую окраску.
Ход работы: В пробирку внести 2-3 капли раствора адреналина (1:1000), 2 капли 1% раствора йодата калия и 2 капли 10% раствора уксусной кислоты. При легком нагревании появляется красно-фиолетовое окрашивание.
в) Диазореакция
При взаимодействии адреналина с диазореактивом образуется азокраситель красного цвета.
Ход работы: В пробирку внести 3 капли 1% раствора сульфаниловой кислоты, 3 капли 5% раствора азотистого натрия, 5 капель адреналина (1:100) и 3 капли 10% раствора углекислого натрия. Жидкость окрашивается в красный цвет.
Вывод:
Лабораторная работа. № 9
Тема: Построение и анализ гликемических кривых
Цель: Изучить промежуточный обмен углеводов, роль углеводов в энергетическом обмене. Клинико-диагностическое значение метода сахарной нагрузки при сахарном диабете, аддисоновой болезни, гипофункции щитовидной железы и т.д.
Принцип метода: Определение глюкозы основано на реакции, катализируемой глюкозооксидазой:
глюкоза + О2
глюконолактон + Н2О2
Образующаяся в ходе данной реакции перекись водорода вызывает окисление субстратов пероксидазы с образованием окрашенного продукта.
Метод сахарной нагрузки: Утром натощак у больного берут кровь из пальца и определяют концентрацию глюкозы крови. После этого дают выпить 50 - 100 г глюкозы в 200 мл теплой кипяченой воды (1 г глюкозы на 1 кг веса) в течение не более 5 минут. Затем повторно исследуют содержание глюкозы в крови, беря из пальца кровь через каждые 30 минут в течение 2-3 часов. Строят график в координатах: время – концентрация глюкозы в сыворотке крови, по виду графика ставят или уточняют диагноз.
Ход работы: В образцах сыворотки (до и после приема глюкозы) определяют концентрацию глюкозы. Для этого в серию пробирок вносят 2 мл рабочего реактива (фосфатный буфер, субстраты пероксидазы + глюкозооксидазы в отношении 40:1). В одну из пробирок вносят 0,05 мл стандартного раствора глюкозы концентрации 10 ммоль/л. В другие по 0,05 мл сыворотки крови, взятой по методу сахарной нагрузки. Растворы встряхивают и инкубируют при комнатной температуре 20 мин.
После инкубации измеряют оптическую плотность растворов на ФЭК при длине волны 490 нм. Кювета с длиной оптического пути, равной 5 мм. Раствор сравнения - рабочий реактив.
Расчет концентрации глюкозы:
С =
10 ммоль/л
где Е оп - оптическая плотность в образцах сыворотки;
Е ст - оптическая плотность стандартного раствора глюкозы
Результат анализа:
Время, час |
0 (натощак) |
0,5 |
1 |
2 |
3 |
Концентрация глюкозы, моль/л |
|
|
|
|
|
График:
Вывод: