- •Детские инфекционные болезни
- •1. Правила забора материала для лабораторных исследований при инфекционной патологии у детей
- •1А. Методика забора материала для иммунофлюоресцентнго анализа.
- •2. Методика забора материала для бактериологического исследования у больных брюшным тифом.
- •3. Методика взятия мазков со слизистых оболочек зева и небных миндалин на bl.
- •4. Показания, противопоказания и методика проведения промывания желудка.
- •5. Оцените результаты исследования иммунного статус при различных инфекционных заболеваниях у детей.
- •6. Оцените результаты ультразвукового исследование печени при остром и хроническом гепатите.
- •7. Оценка анализа периферической крови при инфекционном мононуклеозе, краснухе, коклюше.
- •8. Оцените результаты исследования серологического маркерного спектра при вирусных гепатитах а, в, с.
- •9. Оцените результаты биохимического исследования крови при вирусных гепатитах (на общий билирубин, его фракции, сулемовую пробу, тимоловую пробу алт, act).
- •10. Особенности забора материала для бактериологического исследования испражнений у больных кишечными инфекциями. Оцените результаты копрологического исследования.
- •11. Показания, противопоказания и методика проведения люмбальной пункции.
- •Сифонные клизмы
- •13. Проведите комплекс противоэпидемических мероприятий в очаге вирусного гепатита а.
- •Мероприятия в очаге в отношении больных, реконвалесцентов, вирусоносителей
- •Мероприятия в отношении лиц, общавшихся с больными.
- •14. Противоэпидемические мероприятия в очаге при ветряной оспе, кори, дифтерии, скарлатине.
- •16. Показания и методика проведения оральной регидротации.
- •17. Правила забора и доставки материала при менингококковой инфекции.
- •18. Методика забора материала для бактериологического исследования каловых масс при дисбактериозе.
- •19. Неотложная помощь при отёке мозга
- •Лист инфузионной терапии
- •20. Неотложная помощь при инфекционно-токсическом шоке
- •Лист инфузионной терапии
17. Правила забора и доставки материала при менингококковой инфекции.
Оборудование: нет. Письменное задание.
Мазок из зева берут натощак или через 2 часа после еды изогнутым шпателем с задней стенки глотки. У постели больного в чашку Петри (из термостата) вначале тампон прикладывают всеми сторонами к среде в центре чашки, затем штрихообразными движениями распределяют посев по всей поверхности.
Забор спинномозговой жидкости. Используют три стерильные пробирки (для бак исследования, для биохимического исследования, для клинического исследования), в каждую собирают 1,5 - 2,0 мл ликвора.
Забор крови на гемокультуру. В процедурном кабинете в стерильных условиях у больного берут в/в 5-10 мл крови, иглу прокаливают над спиртовкой. Предварительно необходимо получить в лаборатории стерильную среду во флаконе в объеме 50 - 100 мл. Верхнюю бумажную крышку снимают, нижнюю прокалывают иглой и вводят кровь во флакон. Накрывают верхней крышкой, отправляют в лабораторию. Соотношение крови со средой 1:10. Используется 1% кровяной агар.
Забор материала из петехий. Кожа обрабатывается спиртом. Туберкулиновым шприцом вводят в розеолу 0,1 мл физиологического раствора, затем набирают обратно в шприц 0,1 мл. При нерозе забор проводят микробиологической петлей в чашку Петри.
Транспортировка при температуре 37,0 °С.
18. Методика забора материала для бактериологического исследования каловых масс при дисбактериозе.
Оборудование: нет. Письменное задание.
В практической работе о состоянии НБК в основном судят по методу Ф.Л.Вильшанской (1970) позволяющему оценить изменения качественного и количественного состава микрофлоры фекалий определить количественно наличие бифидобактерий, лактобактерий, энтерококков, различных видов кишечных палочек, условно-патогенные бактерий и грибов.
Исследуемым материалом является кал после естественной дефекации; посуда для проб фекалий должна быть стерильной. Флаконы емкостью 10-20 мл. прозрачные, с плотно завинчивающейся крышкой стерилизуются автоклавированием, сухим жаром, газовой стерилизацией. Не следую обрабатывать посуду дезинфицирующими растворами и другими химическими веществами.
Забор материала производится стеклянной или деревянной палочкой из средней порции кала в количестве не менее 2 г. Материал следует доставлять в лабораторию в кратчайшие сроки, не позднее чем через 2 часа после забора пробы (интервал между забором пробы и началом посева не должен превышать 4 часа). С момента взятия пробы и до посева оптимальные условия хранения — в холодильнике.
Для полного количественного учета после тщательного эмульгирования пробы готовят серийные десятикратные разведения. Из полученных разведении делают посевы.
Задания и заключения по ним.
|
Возраст ребенка - 7 лет |
Вариант 1 |
Вариант 2 |
|
Кишечные палочки полноценные, типичные |
107 |
105 |
|
Кишечные палочки неполноценные, атипичные, % |
|
|
|
до 10% |
11% |
|
до 5% |
10% |
|
0 |
5% |
|
0 |
12% |
|
1-3% |
10% |
|
Патогенные микроорг. семейства кишечных |
- |
+ |
|
Бифидобактерии |
108 |
107 |
|
Лактобактерии |
109 |
106 |
|
Клостридии (спорообразующие анаэробы) |
102 |
106 |
|
Кокковые формы в общей сумме анаэробов |
108 |
1011 |
|
- энтерококки |
до 108 |
до 1010 |
|
- гемолизирующие стрептококки |
0 |
0 |
|
- сапрофитные стафилококки |
102 |
103 |
|
- золотистый стафилококк (патогенный) |
- |
104 |
|
Протей |
103 |
104 |
|
Синегнойная палочка |
- |
102 |
|
Грибы рода Candida |
- |
108 |
|
Заключение: |
норма |
субкомпенсированный дисбактериоз кишечника |