2.1.2 Рост на плотной питательной среде на чашках Петри

Идентификацию микроорганизма проводили по следующими призанакам: форма, размер, оптические свойства, цвет, край, структура, консистенция колнии. Результаты исследования сведены в таблицу 1.

Таблица 1 - Рост на плотной питательной среде на чашках Петри. Возраст колоний-12 суток.

Признак\ Культура	18-19	77-32(сух)
Форма колонии	круглая	круглая
Размер колонии	4 мм	3мм
Поверхность колонии	гладкая	гладкая
Профиль колонии	каплевидный	каплевидный
Блеск	есть	есть
Прозрачность	Не прозрачна	Не прозрачна
Цвет колонии	Розовато-кремовый	Кремовый с розовым
Край колонии	гладкий	гладкий
Структура колонии	однородная	однородная
Консистенция колонии	Легко снимающаяся с агара, пленчатая	Легко снимающаяся с агара, пленчатая

Рисунок 1 – Рост на плотной питательной среде на чашках Петри. Возраст колоний-12 суток.

Таблица 2 – Морфологические и физиолого-биохимические признаки

Возраст клеток-3 суток.

Показатель	Результат
	18-19		77-32
Форма клетки	Палочка		Палочка
Цвет колонии	белый		белый
Форма колонии	округлая		округлая
Консистенция	маслянистая, однородная		маслянистая, однородная
Отношение к кислороду	аэробные		аэробные
Каталазная активность	+		+
Лизис	-		-
Кислотоустойчивость	-		-
Окраска по Граму	грам(+)		грам(+)
Разжижение желатины
Амилолитическая активность (гидролиз крахмала)
Протеолиз казеина

Рисунок 2 – Аэробность микроорганизмов

2.1.3 Использование соединений углерода:

Основной фон среды состава(г\л):

(NH₄)₂SO₄ -2,6; KH ₂PO _4-2,4; K ₂HPO₄ x3H ₂O-5,6;MgSO ₄x7H₂O-1,0; агар микробиологический-18; раствор микроэлементов-0,1 мл; вода дистиллированная _.

Раствор микроэлементов(г) СuSO₄x5H₂O-0,64;FeSO_4Х7H₂O;-0,11;MnCl_2Х4H₂O-0,79;ZnSO₄х7Н₂О-0,15, вода дистиллированная-100. Раствор готовят отдельно и хранят при температуре 3-5^о.

Углеводы и спирты готовят в виде 10 %-ных водных растворов и стерилизуют отдельно от основного фона среды автоклавированием при 0,5 атм или фильтрованием. Раздельная стерилизация рекомендуется в связи с тем, что сахара в присутствии фосфатов и других компонентов среды частично разрушаются и образуют соединения, токсичные для микроорганизмов. Стерильные растворы добавляют к основному фону в таком количестве, чтобы концентрация сахара (спирта) в среде.составляла 1 г на 100 мл. Стерильные растворы углеводов(спиртов) добавлябт в стерильную агаризованную расплавленную среду, тщательно перемешивают ее и разливают в стерильные чашки Петри. После того как агар застынет, дно чашки Петри с наружной стороны делят на секторы чернилами или карандашом по стеклу. Затем каждую из исследуемых культур микроорганизмов высевают петлей, проводя радиальный штрих (рис. 1)

Рисунок 3 - Схема посева на плотную среду различных микроорганизмов для определения способности использовать углеводы

Продолжительность культивирования 2-10 суток . О результатах судят по интенсивности роста культур в сравнении с ростом на контрольной среде, не содержащей испытываемых соединений углерода. (таб. 3)

Таблица 3- Использование соединений углерода на плотной питательной среде

Соединение углерода	2 суток		5 суток		3 недели
	18-19	77-32	18-19	77-32	18-19	77-32
Глюкоза	-	-	-	-	с	с
фруктоза	-	-	-	-	с	с
Сахароза	с	-	н	-	н	-
мальтоза	-	-	-	-	н	н
рамноза	с	с	с	с	с	с
инизотол	с	-	н	-	н	-
Маннитол	с	-	н	с	н	-
Сорбитол	-	-	-	с	с	с

Соединение углерода	6 недель
	18-19	77-32	18-19	77-32	18-19	77-32
Глюкоза
фруктоза
Сахароза
мальтоза
рамноза
инизотол
Маннитол
Сорбитол

- роста нет

Н нормальный рост

С слабый рост

Таблица 4- Использование соединений углерода в жидкой среде

Соединение углерода	3 суток		7 суток		2 недели
	18-19	77-32	18-19	77-32	18-19	77-32
Глюкоза	Н	-	Н	-	Н	-
фруктоза	Н	-	Н	-	Н	-
Сахароза	Н	-	Н	-	Н	-
мальтоза	С	-	С	-	Н	С
рамноза	-	-	С	-	-	-
инизотол	-	С	-	Н	С	С
Маннитол	С	-	Н	-	Н	С
Сорбитол	С	-	Н	-	Н	С

Соединение углерода	3 недели
	18-19	77-32	18-19	77-32	18-19	77-32
Глюкоза	Н	С
фруктоза	НН	С
Сахароза	Н	С
мальтоза	Н	С
рамноза	С	-
инизотол	С	С
Маннитол	Н	С
Сорбитол	Н	С

Рисунок – Использование соединений углерода в жидкой среде