
- •Методы исследования свойств и продуктов питания
- •Методы исследования свойств сырья и продуктов питания
- •ВвЕдение
- •1. Измерения и их классификация
- •1.1. Единицы измерения величин
- •1.2. Системы единиц
- •Кратные и дольные единицы по гост 1052-78
- •2. Статистический анализ измерений
- •2.1. Погрешности приближенных величин
- •2.2. Математическая статистика измерений
- •2.2.1. Параметры точности ряда измерений
- •Интегральная функция Лапласа
- •2.2.2. Анализ результатов экспериментов
- •2.3. Нахождение оптимальных параметров, применение методов планирования экспериментов
- •2.3.1. Схема Зайделя–Гаусса
- •2.3.2. Метод Бокса
- •2.3.3. Нахождение оптимальных параметров с помощью эвм
- •2.3.4. Пример оптимизации процесса приготовления пивного сусла
- •Матрица экспериментальных данных
- •2.3.5. Пример оптимизации использования питательной среды при культивировании пекарских дрожжей
- •Матрица экспериментальных данных
- •2.3.6. Аппроксимация экспериментальных данных
- •3. Отбор проб сырья, полуфабрикатов и пищевых продуктов для проведения исследований
- •3.1. Отбор проб сыпучих продуктов
- •3.1.1. Отбор проб из вагонов
- •3.1.2.Отбор проб из автомашин
- •3.1.3. Отбор проб из танкеров и барж
- •Размеры проб
- •3.1.4. Отбор проб от партии затаренных сыпучих продуктов
- •3.2. Отбор проб сыпучих продуктов при хранении
- •3.2.1. Отбор проб из бунтов
- •3.2.2. Отбор проб из силосов элеваторов
- •3.2.3. Отбор проб в производстве
- •4. Приемы подготовки проб к анализу
- •4.1. Подсушивание (высушивание)
- •4.2. Измельчение
- •4.2.1. Ступки
- •4.2.2. Терочные машины
- •4.2.3. Дисковые мельницы
- •4.2.4. Фрезерные измельчители
- •4.2.5. Комбинированные мельницы
- •4.2.6. Измельчители в жидкой среде
- •4.2.7. Выбор типа измельчительных устройств
- •4.3. Извлечение растворимых компонентов из твердых и пластичных материалов
- •4.3.1. Отжим
- •4.3.2. Извлечение растворителями
- •4.3.3. Специальные приемы извлечения растворимых компонентов
- •4.4. Разделение смеси различных веществ на компоненты
- •4.4.1. Простая перегонка
- •4.4.2. Ректификация
- •4.4.3. Молекулярная перегонка
- •4.4.4. Фракционирование кристаллизацией из растворов
- •5. Измерение кислотности и окислительно-восстановительного потенциала
- •5.1. Определение активной кислотности
- •5.2. Электрометрический метод определения рН
- •5.3. Определение рН при помощи рН-метра марки лпу-01
- •5.4. Колориметрический метод определения рН
- •Характеристика индикаторов для определения рН
- •5.5. Определение титруемой кислотности
- •5.5.1. Титрование с помощью индикаторов
- •5.5.2. Электрометрическое титрование
- •5.6. Определение окислительно-восстановительного потенциала
- •5.6.1. Электрометрический метод
- •5.6.2. Колориметрический метод
- •6. Рефрактометрия
- •6.1. Измерение показателя преломления
- •6.2. Измерения с помощью рефрактометров
- •6.3. Прецизионный рефрактометр
- •6.4. Погружаемый рефрактометр
- •7. Поляриметрия
- •7.1. Устройство поляриметров
- •Удельные вращения сахаров
- •7.2. Приготовление и осветление раствора анализируемого продукта
- •7.3. Методы поляриметрического определения
- •7.4. Определение крахмала методом Эверса
- •8. Колориметрия
- •8.1. Визуальные методы
- •8.2. Фотоэлектрический метод
- •Характеристика светофильтров спектрофотометров фэк-56
- •8.3. Люминесцентный анализ
- •8.3.1. Техника эксперимента и общие приемы анализа
- •8.3.2. Применение люминесцентного анализа в исследовании пищевых продуктов
- •8.4. Цвет и его измерение
- •8.4.1.Общие понятия и приемы измерения цвета
- •8.4.2. Методики определения цветности пищевых продуктов
- •Приготовление серии растворов йода
- •9. Хроматография
- •9.1. Адсорбционная молекулярная хроматография
- •9.2. Распределительная хроматография
- •9.2.1. Хроматография на бумаге
- •9.2.2. Хроматография на колонках
- •9.2.3. Газожидкостная хроматография
- •Характеристика неподвижной фазы
- •10. Электрофорез
- •11. Спектроскопия
- •11.1. Общие понятия и терминология
- •11.2. Эмиссионный спектральный анализ
- •11.3. Анализ элементов методом пламенной фотометрии
- •11.4. Анализ элементов в дуге
- •12. Молекулярный спектральный анализ
- •12.1. Общие сведения об электронных спектрах молекул
- •12.2. Приборы для регистрации электронных спектров поглощения и техника эксперимента
- •12.2.1. Ультрафиолетовая область
- •12.2.2. Видимая область
- •12.2.3. Использование инфракрасных спектров поглощения
- •12.3. Количественный анализ по спектрам поглощения в ультрафиолетовой, видимой и инфракрасной областях спектра
- •12.3.1. Анализ однокомпонентной смеси
- •12.3.2. Анализ двухкомпонентной смеси
- •13. Масс-спектРометрия
- •14. Спектроскопия электронного парамагнитного и ядерного магнитного резонанса
- •14.1. Электронный парамагнитный резонанс
- •14.2. Ядерный магнитный резонанс
- •Контрольные вопросы
- •Список рекомендуемой литературы
- •Содержание
- •Методы исследования свойств сырья и продуктов питания
Удельные вращения сахаров
Вещество |
[α] |
Вещество |
[α] |
Сахароза |
+66,5 |
Раффиноза (ангидрид) |
+123,1 |
Глюкоза |
+52,5 |
Лактоза |
+55,3 |
Фруктоза |
–92,1 |
Ксилоза |
+18,8 |
Инвертный сахар |
–20,6 |
Мелибиоза |
+145,0 |
Галактоза |
+80,5 |
Мальтоза |
+128,5 |
В современных поляриметрах применяется так называемое полутеневое устройство, при котором поле зрения разделено на две равные части. В исходном положении (нулевая точка) обе половины поля зрения одинаково слабо затемнены (анализатор поставлен на полутень), при повороте анализатора вправо или влево одна половина становится совершенно темной, а другая – освещенной. Различие в интенсивности освещения других рядом лежащих плоскостей легко улавливается глазом, поэтому установка на полутень производится с большой точностью. Для получения двойного поля зрения применяют поляризаторы особой конструкции, дающие два луча поляризованного света, выходящие из поляризатора под определенным углом.
В поляриметрах общего назначения для измерения угла поворота служит круговая шкала, градуированная в дуговых градусах. В пищевой промышленности применяются специальные поляриметры, шкала которых градуирована по раствору сахарозы. Такие поляриметры называют сахариметрами.
Шкала сахариметра градуирована по сахарозе в условных градусах, обозначаемых °S. По этой шкале отсчет 100 °S получают, когда измеряют вращение раствора, содержащего при 20 °С в 100 мл 26,0 г химически чистой безводной сахарозы, отвешенной на воздухе при помощи латунных гирь; измерение производят при 20 °С в поляриметрической трубке длиной 200 мм. Отсчет 0 °S получают, когда та же трубка заполнена дистиллированной водой. Расстояние между этими отметками делят на 100 равных частей – градусов, следовательно, 1 °S сахарной шкалы соответствует 0,26 г сахарозы. Такая шкала называется международной сахарной шкалой. 100 °S сахарной шкалы соответствуют 34,62° дуговой шкалы поляриметра, а 1 °S = 0,3462° дуговой шкалы. Число 0,3462 используют как коэффициент перевода градусов сахарной шкалы в дуговые градусы.
Навеска 26,0 г и трубка длиной 200 мм называются нормальными.
7.2. Приготовление и осветление раствора анализируемого продукта
Точность поляриметрического анализа зависит от правильного взятия навески пробы анализируемого продукта и тщательного выполнения операций, связанных с приготовлением раствора для анализа.
Точность взятия навески пробы для анализа зависит от анализируемого продукта и влажности получаемой величины для контроля. Считается, что ее величина должна быть на порядок выше, чем относительная погрешность самого измерения. Как правило, навеску отвешивают в чашку, откуда переводят в мерную колбу. При растворении следует применять такое количество воды, чтобы раствор в колбе занимал примерно 2/3 объема мерной колбы, т. е. чтобы в мерную колбу можно было добавить рекомендуемое количество осветлителя.
Содержимое колбы перемешивают круговым движением и добавляют дистиллированную воду почти до метки. Пену, образующуюся при добавлении осветлителя и затрудняющую наполнение колбы до метки, гасят несколькими каплями эфира. Колбу с раствором помещают на 20…30 мин на водяную баню температурой 20 °С, а затем, осторожно добавляя дистиллированную воду, доводят объем колбы до метки. Закрыв отверстие колбы, ее несколько раз встряхивают и переворачивают. Затем содержимое колбы фильтруют через бумажный фильтр.
Приемная воронка для фильтрата должна быть сухой и чистой. Первую порцию фильтрата (около 10 см3) отбрасывают или возвращают снова на фильтр. Для поляриметрического определения берут полученный после этого фильтрат.
Осветление раствора анализируемого продукта. В средах, содержащих загрязнения, происходит рассеяние линейно поляризованного света, в результате чего интенсивность ослабевает. Красящие вещества, находящиеся в растворе, также поглощают часть поляризованного света. Вследствие этого для поляриметрического анализа все пищевые продукты нужно осветлять. Осветление продуктов производится при помощи химических реагентов, которые способны осаждать коллоиды и адсорбировать красящие вещества. Образующийся при этом осадок отделяют фильтрованием. Для осветления сахаросодержащих продуктов наиболее широко используются свинцовый уксус, реактив Герлеса и нейтральный раствор ацетата свинца. С помощью свинцового уксуса из растворов хорошо удаляются белки, сапонины, часть красящих веществ, большинство органических кислот. Осаждение несахаров свинцовым уксусом является неполным: часть из них, например аминокислоты, бетаин, молочная кислота, арабан, вообще не осаждаются. Красящие вещества осаждаются частично, поэтому осветленные растворы окрашены в желтый цвет. Раффиноза свинцовым уксусом не осаждается, глюкоза и фруктоза осаждаются частично, причем фруктоза в большей степени, чем глюкоза.
Свинцовый уксус применяется в виде 30 %-го раствора или порошка (так называемый сухой осветлитель). На 100 см3 раствора исследуемого продукта добавляется свинцового уксуса в виде раствора от 5 до 30 см3; в виде порошка – 1…1,5 г. Оптимальное количество свинцового уксуса для каждого из анализируемых продуктов обычно указывается в инструкции для производства анализов. Осветлитель в виде порошка добавляют в колбу лишь после доведения объема анализируемого раствора до метки. В этом случае ошибка за счет выпадающего осадка будет меньше, так как она обусловлена только гидрофильностью образовавшегося осадка, т. е. его способностью связывать воду. Недостатком сухого осветлителя является его медленное растворение в осветляемом растворе и трудность получения однородной по составу смеси. Поэтому он не получил широкого распространения в промышленности.
Реактив Герлеса имеет более высокую осветляющую способность, чем свинцовый уксус. Он состоит из двух растворов: 340 г нитрата свинца в 1000 см3 (раствор 1) и 32 г гидроксида натрия в 1000 см3 (раствор 2), которые хранят отдельно и добавляют в колбу с осветляемым раствором. При смешивании обоих растворов образуется осадок основного нитрата свинца, который является хорошим адсорбентом.
Растворы 1 и 2 реактива Герлеса следует добавлять в такой последовательности: вначале к осветляемому раствору добавить определенный объем раствора 1, смесь перемешать, а затем при постоянном перемешивании добавить такой же объем раствора 2. После добавления реактива Герлеса объем колбы доводят до метки и смесь выдерживают в течение 15…20 мин, а затем фильтруют. Первые порции фильтрата при этом отбрасывают. Количество добавляемого реактива Герлеса, т. е. равные объемы растворов 1 и 2, зависит от осветляемого раствора и обычно указывается в соответствующей инструкции.
Высокая осветляющая способность реактива Герлеса обусловлена тем, что осаждение несахаров, с одной стороны, происходит под действием значительного избытка ионов Рb2+ в растворе, а с другой – за счет образования осадка основного нитрата свинца непосредственно в осветляемом растворе, который в момент образования обладает более высокой адсорбционной способностью.
Нейтральный раствор ацетата свинца используется только для осветления растворов, служащих для определения содержания в них редуцирующих веществ. Этот осветлитель в отличие от свинцового уксуса и реактива Герлеса не осаждает глюкозу и фруктозу. Он хорошо осаждает все оптически активные органические кислоты, но плохо осаждает белки. Осветляющее действие раствора значительно ниже, чем свинцового уксуса и реактива Герлеса. Его эффективность зависит от среды осветляемого раствора: в нейтральной и щелочной средах она выше, в кислой – ниже.
Кроме рассмотренных, известны и другие осветлители, такие, как фосфорно-вольфрамовая кислота, молибдат аммония или натрия, реактив Карреса и гидроксид алюминия. Однако эффективность их значительно ниже, чем осветлителей на основе свинца.