
- •Лабораторная работа № 1 цветные реакциии на белки и аминокислоты.
- •1. Биуретовая реакция
- •2. Нингидриновая реакция.
- •3. Ксантопротеиновая реакция (Мульдера).
- •4. Реакция Фоля.
- •5. Реакция на тирозин (Миллона).
- •Вопросы для самоконтроля.
- •Лабораторная работа № 2. Хроматографический метод определения аминокислот
- •Радиальная (распределительная) жидкостная хроматография
- •Вопросы для самоконтроля:
- •Лабораторная работа № 3 кислотный гидролиз и формоловое титрование по серенсену.
- •1. Кислотный гидролиз.
- •2. Формоловое титрование.
- •Вопросы для самоконтроля:
- •Лабораторная работа № 4 физико-химические свойства белков.
- •1. Осаждение белков при кипячении.
- •2. Реакции осаждения белков при комнатной температуре нейтральными солями — высаливание.
- •3. Диализ белка.
- •4. Осаждение белков солями тяжелых металлов.
- •5. Осаждение белков концентрированными минеральными кислотами
- •6. Осаждение белков органическими кислотами.
- •7. Осаждение белков органическими растворителями.
- •8. Осаждение белков алкалоидными реактивами.
- •Вопросы для самоконтроля:
- •Лабораторная работа № 5. Строение сложных белков.
- •Н уклеопротеиды
- •1. Гидролиз нуклеопротеидов.
- •2. Качественные реакции на открытие составных частей нуклеопротеидов.
- •Вопросы для самоконтроля:
- •Лабораторная работа № 6 ферменты.
- •1. Влияние реакции среды на активность амилазы.
- •2. Специфичность действия ферментов.
- •3. Влияние ингибиторов и активаторов на активность амилазы.
- •4. Активность α-амилазы слюны (количественное определение).
- •Вопросы для самоконтроля:
- •Лабораторная работа № 7 витамины.
- •1. Качественная реакция на витамин в2.
- •2. Качественная реакция на витамин рр.
- •3. Качественная реакция на витамин в6.
- •4. Качественная реакция на витамин с.
- •5. Качественная реакция на викасол (жирорастворимые витамины).
- •Вопросы для самоконтроля:
- •Лабораторная работа № 8 липиды.
- •1. Растворимость и эмульгирование жиров.
- •2. Гидролиз (омыление) жира.
- •3. Открытие в гидролизате составных частей жира.
- •4. Открытие ненасыщенности жирных кислот в жире.
- •5. Получение нерастворимых солей высших жирных кислот.
- •6. Гидролиз лецитина (фосфатидилхолина).
- •7. Качественная реакция на холестерин (реакция Шиффа).
- •Вопросы для самоконтроля:
- •Лабораторная работа № 9 углеводы.
- •1. Доказательство наличия гидроксильных групп
- •2. Доказательство наличия карбонильных групп (альдегидная проба Мура).
- •3. Реакции восстановления металлов и окисления моносахаридов.
- •3А. Проба Троммера.
- •3Б. Проба Фелинга.
- •3В. Получение серебряного зеркала.
- •3Г. Проба Подобедова — Молиша с α- нафтолом.
- •3Д. Проба Барфеда.
- •4. Качественные реакции на дисахариды
- •4А. Реакции на сахарозу.
- •4Б. Реакция на мальтозу и лактозу
- •5. Цветные реакции на крахмал и гликоген.
- •6. Гидролиз крахмала.
- •7. Гидролиз клетчатки.
Лабораторная работа № 6 ферменты.
Теоретическая часть.
Ферменты или энзимы — специфические белки, которые играют роль биологических катализаторов. Они входят в состав клеток и тканей живых организмов. Благодаря ферментам обмен веществ протекает с большой скоростью при обычной температуре тела и без участия сильнодействующих химических реагентов.
Белковую часть сложных белков ферментов; называют апоферментом, а небелковую часть — кофактором. Кофактор условно разделяют на кофермент (коэнзим), легкодиссоциирующую и простетическую группу, труднодиссоциирующую. Кофермент легко присоединяется к различным апоферментам, а простетическая группа соединяется только с одним и тем же апоферментом.
Функции и свойства апофермента и кофактора следующие. Апофермент термолабилен, определяет специфичность фермента, участвует в соединении фермента с субстратом [S], активирует кофактор. Кофактор термостабилен, стабилизирует апофермент, участвует в катализе.
В роли кофактора могут выступать ионы металлов (Na+, К+, Mg+2, Са+2, Fe+2) и микроэлементы (Mn2+, Cu2+, Zn2+ и др.). Коферменты часто бывают представлены веществами органической природы — нуклеотидами, витаминами и др.
Согласно современным представлениям, ферменты увеличивают скорость химических реакций, снижая энергетический барьер данной реакции. Это положение лежит в основе теории Михаэлиса—Ментен — теории образования фермент—субстратного комплекса. По этой теории ферментативное действие зависит от скорости образования комплекса фермента с субстратом и скорости последующего распада этого комплекса с образованием продукта реакции и освобождением фермента.
Для каждого фермента можно определить константу Михаэлиса (Km):
где Кm — константа Михаэлиса, [S] – концентрация субстрата, V mах — максимальная скорость реакции (при насыщении фермента субстратом), V — скорость реакции в условиях опыта.
По величине Кm можно судить о скорости ферментативной реакции: чем ниже числовое значение Кm, тем выше активность фермента (тем легче образуется фермент — субстратный комплекс и продукты реакции).
Характерные свойства ферментов:
- чувствительность к изменению реакции среды, зависимость активности фермента от величины рН;
- специфичность действия;
- термолабильность и температурный оптимум действия ферментов;
- влияние на активность ферментов различных веществ — активаторов и ингибиторов.
Практическая часть.
1. Влияние реакции среды на активность амилазы.
Принцип метода. Каталитическая активность ферментов зависит от рН среды. С изменением величины рН меняется структура фермента. Для каждого фермента характерен определенный оптимум рН. От рН зависит степень ионизации фермента.
З
ависимость
ферментативной активности от рН среды
изучается в работе на примере α— амилазы,
субстратом которой является крахмал
(полисахарид, состоящий из глюкозы).
Фермент α- амилаза (α-1,4-глюкан-4-глюканогидролаза)
содержится в слюне и катализирует
гидролиз α- глюказидной связи α-1,4-крахмала
и гликогена до дисахарида мальтозы.
Кроме того, в слюне имеется Фермент
мальтаза, расщепляющая мальтозу до
глюкозы.
крахмал декстрины мальтоза
Гидролиз крахмала под действием α- амилазы проходит до стадии образования декстринов. Нерасщепленный крахмал с йодом дает синее окрашивание, декстрины в зависимости от размера дают с йодом окрашивание: амилодекстрины — фиолетовое, эритродекстрины — красно-бурое, ахродекстрины и мальтоза — желтое (цвет йода в воде, т.е. окрашивание с йодом не дают). Конечные продукты гидролиза крахмала — мальтоза и глюкоза — имеют свободные альдегидные группы и могут быть обнаружены реакцией Троммера, в основе которой лежит окислительно—восстановительная реакция. При этом альдегидная группа окисляется до глюконовой кислоты, а медь — гидрат окиси меди (голубого цвета) восстанавливается в гидрат закиси меди желтого цвета. При дальнейшем нагревании гидрат закиси меди переходит в красную закись меди.
Реактивы: амилаза слюны (прополаскивают рот, затем набирают 10—15 мл дистиллированной воды и держат ее во рту в течение минуты, после чего сливают в стаканчик); крахмал, 0,1 % раствор на 0,3 % растворе хлорида натрия; раствор Люголя; едкий натр, 0,1 Н раствор; HCl, 0,1 Н раствор.
Ход работы: Активность амилазы слюны неодинакова у разных людей и даже меняется в течение дня у одного и того же человека. Поэтому необходимо подобрать подходящее разведение раствора слюны так, чтобы гидролиз 1 мл раствора крахмала при комнатной температуре и нейтральной реакции среды под влиянием 1 мл раствора слюны проходил на 5—8 минут. Для этого в пробирке смешивают 1 мл раствора крахмала и 1 мл раствора слюны. Сразу же после смешивания каплю смеси помешают в чистую пробирку, добавляют каплю раствора Люголя и отмечают окраску. В дальнейшем пробы берут с интервалом в полминуты. Реакция считается законченной, когда цвет раствора Люголя не изменяется. Если гидролиз крахмала происходит быстро, то слюну разводят и снова определяют время расщепления крахмала. Если гидролиз крахмала идет медленнее, чем 10 минут, то к раствору фермента добавляют несколько капель неразведенной слюны и определяют время полного гидролиза крахмала. После подбора нужной активности фермента выполняют основную часть работы по изучению влияния реакции среды на активность амилазы.
Схему построения опыта и получение результатов записывают в таблицу:
пробы |
НС1 0,1н; мл |
NaOH 0,1н; мл |
H2O мл |
рН |
Крахмал мл |
Фермент мл |
реакция с йодом |
1 |
0,5 |
- |
1,5 |
Кислая |
2 |
1 |
|
2 |
- |
- |
2,0 |
Нейтральная 6,9-7,0 |
2 |
1 |
|
3 |
- |
0,5 |
1,5 |
Щелочная |
2 |
1 |
|
Так как оптимум рН для амилазы слюны равен 6,9 –7,0, наблюдение за гидролизом крахмала ведут по пробе № 2 и добавляют раствор Люголя. Как только гидролиз во второй пробе закончится, опыт прекращают добавлением во все три пробы 2-3 капли раствора Люголя.
Пробу № 3 перед добавлением раствора Люголя нейтрализуют 0,1н раствором соляной кислоты, так как в щелочной среде реакция с йодом не идет.
Наблюдают отсутствие реакции с йодом во второй пробе и фиксируют оттенок в первой и третьей пробах. Результаты записывают в таблицу, делают выводы о влиянии реакции среды на активность амилазы.