
- •Заякин в. В., Нам и.Я. Культивирование тканей и органов растений in vitro
- •Содержание Тема: Основы техники культивирования тканей растений in vitro
- •Список использованных биологических терминов 44
- •Тема: Основы техники культивирования тканей растений in vitro
- •Методы стерилизации оборудования и материалов.
- •Тема: культура каллусной ткани
- •Цель работы: Практическое ознакомление студентов с современными методами клонального микроразмножения in vitro и демонстрация их возможностей.
- •Тиамин (в1) 0.5 Цитокинин (6-бап) 0.5
- •Ход работы
- •Тема: вторичный морфогенез в культуре каллусных тканей растений in vitro
- •Список использованных терминов
Цель работы: Практическое ознакомление студентов с современными методами клонального микроразмножения in vitro и демонстрация их возможностей.
Материалы: пробирочные растения разных видов для демонстрации различных типов клонального микроразмножения, пробирки с исходным стерильным
19
растительным материалом, питательные среды для клонального микроразмножения и для укоренения, автоклавированные кружки фильтровальной бумаги, спирт для горения спиртовки, спирт для стерилизации и обжигания инструментов.
Оборудование: электроплитка или колбонагреватель, ламинарный шкаф для стерильной работы, стерильные пробирки с пробками или колпачками - 15-20 шт, стерильные стаканы на 100-150 мл (2шт) с отметками на 25, 50 и 75 мл, стаканчик на 50 мл для спирта, спиртовка, стерильная чашка Петри, глазной пинцет -2 шт, крючок, скальпель.
Ход работы:
1. Рассмотреть пробирки с культурами разных видов растений, различающихся по типу размножения (например: малина, земляника, картофель, рододендроны, лизимахия). Зарисовать схематически различные типы клонального микроразмножения.
2. Агаризованную среду для клонального микроразмножения расплавить на электроплитке и разлить по пробиркам. Если среда еще не содержит цитокининов, в расплавленную среду добавить спиртовый раствор гормона. Параллельно разлить среду для укоренения побегов, содержащую ауксин.
3. Выросший растительный материал извлечь вблизи стерильной зоны пламени спиртовки из пробирки пинцетом или длинным крючком, в зависимости от ее размера, и поместить растение на кружок стерильной фильтровальной бумаги, вложенной в чашку Петри, которая также размещается вблизи пламени.
4. Конгломерат побегов и почек, извлеченный из пробирки с помощью стерильных пинцета и скальпеля, разделить на отдельные побеги и небольшие группы почек. Длинные побеги разрезать на черенки, содержащие не меньше 2 междоузлий.
20
5. Полученные таким образом экспланты поместить с помощью крючка и пинцета на поверхность застывшей питательной среды, углубляя их концы в среду на 3-5 мм в зависимости от размера экспланта. Побеги разместить наклонно для лучшего контакта со средой, по 2 экспланта на пробирку. Перед посадкой в каждую очередную пробирку инструменты обжигать в пламени спиртовки и давать им остыть.
6. Крупные побеги поместить на среду для укоренения.
7. Спустя 3-4 недели рассмотреть и зарисовать происходящие с эксплантами изменения. Посчитать процент пробирок с микробиологическим зарастанием.
Контрольные вопросы:
1. В чем состоят сущность и преимущества клонального микроразмножения? 2. Перечислите этапы клонального микроразмножения. 3. Какие типы клонального микроразмножения можно выделить по поведению растений на этапе собственно размножения? 4. Какие фитогормоны и на каких этапах применяются? 5. Какие эффекты вызывают цитокинины и ауксины? 6. Почему при клональном микроразмножении следует избегать образования каллуса? 7. Какие меры для этого можно принять?
Работа 4. Введение новых видов и сортов растений в культуру in vitro. Выделение и культивирование точек роста и меристем растений в качестве первичных эксплантов.
Меристемы и апексы растений находят два основных применения: в качестве первичных эксплантов для клонального микроразмножения и для оздоровления растений от вирусной инфекции.
21
При введении в культуру in vitro для клонального микроразмножения новых видов и сортов растений используются следующие типы эксплантов (по мере убывания их важности и применимости): почки и меристемы растений, незрелые зародыши, зрелые зародыши, стерильные проростки, части цветка, листья, отрезки стеблей, корни. Если при этом не ставится цель обязательного освобождения от вирусов, то обычно не стремятся выделить слишком маленькие точки роста меристемы - более крупные экспланты значительно легче адаптируются к условиям культуры, меньше гибнут и быстрее растут.
Культивирование меристем осуществляется на богатых питательных средах с добавлением витаминов и фитогормонов, из которых наиболее эффективны цитокинины. Примеры составов питательных сред для культивирования меристем в мг/л:
Для меристем земляники:
Минеральная часть МС,
разбавленная в 2 раза
Никотиновая кислота 0.5
Аскорбиновая кислота 1.0
Глюкоза (или сахароза) 20000