
- •Буферные системы
- •Фиксатор Карнуа
- •Водные фиксирующие смеси Фиксатор Навашина
- •I. Силы, обусловливающие взаимодействие между реактивом и препаратом.
- •3.1.1. Химические фрагменты
- •3.1.2. Специфические вещества
- •3.1.3. Классы веществ
- •3.2. Выявление биологических объектов
- •3.2.1. Биологические объекты
- •2. Антитела
- •2.1. Структура иммуноглобулинов
- •2.2. Поликлоналыная антисыворотка
- •2.3. Моноклональные антитела
- •2.4. Очистка антител
- •2.5. Специфичность реакций антител
- •3. Воздействие на антигены процедуры обработки ткани
- •3.1. Выбор условий обработки ткани
- •4.2. Ферментные метки
- •4.3. Коллоидное золото
- •4.4. Выбор метки
- •5. Методы окраски
- •5.1. Прямой метод.
- •5.2. Непрямой метод
- •5.3. Методы, основанные на взаимодействии фермент—антифермент
- •5.4. Системы с использованием биотин — авидина
- •7. Решение возникающих проблем с помощью контрольных препаратов
- •Глава 4
- •Флуорохромы
- •3. Флуоресцентный микроскоп
- •3.1. Способы освещения
- •3.1.1. Освещение проходящим светом
- •3.1.2. Освещение падающим светом
- •3.2. Источники света
- •3.3. Домики для ламп
- •3.4. Фильтры
- •3.4.1. Возбуждающие фильтры
- •3.4.2. Запирающие фильтры
- •3.4.3. Цветные светоделительные зеркала
- •3.5. Объективы и окуляры
- •4. Применение флуоресцентных красителей
- •4.1. Нуклеиновые кислоты
- •4.1.1. Прижизненное окрашивание флуорохромами
- •4.2. Иммунофлуоресценция
- •7. Сканирующая лазерная микроскопия
3.1.3. Классы веществ
Иногда получаемая методами гистохимии информация касается основных классов веществ, но не отдельных химических веществ. Так, мы можем исследовать распределение липидов в проксимальных почечных канальцах, но не можем получить какой-либо информации о конкретном составе данных липидов. Даже в тех случаях, когда существует более подробная химическая классификация, мы можем тем не менее очень мало продвинуться в идентификации отдельных веществ. Так, если пациент страдает от болезни накопления — метахроматической лейкодистрофии, то гистохимическое исследование с целью выявления сульфатидных отложений в макрофагах служит ценным методом диагностики, однако никакого более тонкого химического определения веществ в препарате с его помощью сделатьнельзя.
Еще раз отметим, что лежащие в основе гистохимических методов механизмы окрашивания очень разнообразны и включают все типы, описанные выше.
Выявление липидов. В основе метода лежит распределение гидрофобных неионных красителей между полярными растворителями и неполярными липидами. Усиление окрашивания после бромирования происходит благодаря тому, что по местам двойных углеродных связей присоединяются атомы брома. Бромные производные менее полярны и обычно имеют более низкую точку плавления, чем их ненасыщенные предшественники, в результате чего повышается сродство красителей к липидам и, соответственно, ускоряется реакция окрашивания.
Ниже приведены методики выявления липидов.
Стандартный метод выявления нейтральных липидов
1. Изготовьте на криостате срезы с нефиксированной почки и зафиксируйте их в течение 1 часа кальций-формолом. Для приготовления кальций-формола разведите 10 мл коммерческого 40%-ного (вес на объем) водного раствора формальдегида водой (до 100 мл). К полученному раствору добавьте 1 г СаСl2.
2. Смонтируйте срезы на предметные стекла и дайте им подсохнуть.
3 Удалите липиды для получения отрицательного контроля (см. Контроль)
4 Промойте опытные и контрольные срезы в 70%-ном (объем на объем) водном этаноле.
5. Окрасьте опытные и контрольные срезы в течение 15 мин в насыщенном растворе судана черного в 70%-ном (объем на объем) водном этаноле. Перед окраской раствор красителя надо профильтровать
6. Отдифференцируйте срезы в 70%-ном (объем на объем) водном этаноле до тех пор, пока лишенный липидов контроль не станет бесцветным.
7. Промойте водой и заключите в глицероловое желе.
Результаты. Триглицеролы и ненасыщенные эфиры холестерола окрашиваются в сине-черный цвет; некоторые фосфолипиды выглядят коричневыми.
Контроль. Экстрагируйте срезы смесью хлороформ—метанол 2:1 (объем на объем) в течение 2 часов при комнатной температуре. Это позволит удалить все свободные липиды, после чего окраска не возникнет. Из некоторых липопротеинов липиды можно удалить добавлением к метанол-хлороформной смеси 1% (объем на объем) концентрированной соляной кислоты.
Возможные трудности: если в синий цвет окрашиваются ядерные или богатые гликозаминогликанами участки, то замените судан черный.
Выявление суммарных липидов бромом—суданом черным
Возьмите смонтированные срезы и, начиная с этапа 2 предыдущей методики, продолжайте следующим образом.
1. Погрузите срезы в 2,5%-ный (объем на объем) водный раствор брома на 30 мин при комнатной температуре. ОБЯЗАТЕЛЬНО пользоваться вытяжным шкафом.
2. Промойте срезы их в воде, а затем в 0,5%-ном (вес на объем) водном растворе метабисульфита натрия в течение 1 мин.
3. Хорошо промойте в воде. Продолжите процедуру с этапа 3 предыдущей методики.
Выявление фосфолипидов методом бром—ацетон—судан черный
Возьмите обработанные бромом срезы, полученные на этапе 3 пердыдущей методики, и продолжите следующим образом.
1. Хорошо высушите срезы (не должно оставаться даже следов воды, так как в противном случае наряду с -нейтральными липидами проэкстрагируются фосфолипиды).
2. Проэкстрагируйте безводным ацетоном 20 мин при 4 ОС.
3. Удалите растворитель и дайте ацетону испариться. Продолжите процедуру с этапа 3 предыдущей методики.
Результаты. Фосфолипиды окрасятся в сине-черный цвет.
Контроль. Удалите суммарные липиды («Контроль» в предыдущей методике), после чего окрашивания не должно быть.