
- •Буферные системы
- •Фиксатор Карнуа
- •Водные фиксирующие смеси Фиксатор Навашина
- •I. Силы, обусловливающие взаимодействие между реактивом и препаратом.
- •3.1.1. Химические фрагменты
- •3.1.2. Специфические вещества
- •3.1.3. Классы веществ
- •3.2. Выявление биологических объектов
- •3.2.1. Биологические объекты
- •2. Антитела
- •2.1. Структура иммуноглобулинов
- •2.2. Поликлоналыная антисыворотка
- •2.3. Моноклональные антитела
- •2.4. Очистка антител
- •2.5. Специфичность реакций антител
- •3. Воздействие на антигены процедуры обработки ткани
- •3.1. Выбор условий обработки ткани
- •4.2. Ферментные метки
- •4.3. Коллоидное золото
- •4.4. Выбор метки
- •5. Методы окраски
- •5.1. Прямой метод.
- •5.2. Непрямой метод
- •5.3. Методы, основанные на взаимодействии фермент—антифермент
- •5.4. Системы с использованием биотин — авидина
- •7. Решение возникающих проблем с помощью контрольных препаратов
- •Глава 4
- •Флуорохромы
- •3. Флуоресцентный микроскоп
- •3.1. Способы освещения
- •3.1.1. Освещение проходящим светом
- •3.1.2. Освещение падающим светом
- •3.2. Источники света
- •3.3. Домики для ламп
- •3.4. Фильтры
- •3.4.1. Возбуждающие фильтры
- •3.4.2. Запирающие фильтры
- •3.4.3. Цветные светоделительные зеркала
- •3.5. Объективы и окуляры
- •4. Применение флуоресцентных красителей
- •4.1. Нуклеиновые кислоты
- •4.1.1. Прижизненное окрашивание флуорохромами
- •4.2. Иммунофлуоресценция
- •7. Сканирующая лазерная микроскопия
3.1.2. Специфические вещества
Многие вещества можно окрасить специфически. Таким способом можно выявлять полимеры, например полисахариды каллозу и гликоген, структурные белки, такие как коллаген и гемоглобин, а также множество ферментов. Гистохимическими методами можно также выявлять низкомолекулярные вещества, от желчного пигмента до холестерола и различных витаминов. Кроме того, использование в гистохимии гибридизации in situ позволяет с помощью флуоресцентного зонда или радиоактивной метки выявлять многочисленные фрагменты нуклеиновых кислот, от генных последовательностей ДНК до цитоплазматических мРНК. Кроме того, многие биополимеры и другие более мелкие молекулы являются антигенами и могут быть в принципе выявлены с помощью иммуногистохимии.
Механизмы неиммунологического и негибридизационного окрашивания, которые мы здесь рассматриваем, различны. Некоторые вещества (например, желчный пигмент) можно сделать видимыми с помощью маркерного химического фрагмента или комбинации фрагментов. В других случаях маркерным может являться биофизическое свойство молекулы, например ее заряд, гидрофильность или гидрофобность, планарность и т. д. Идентификация может быть основана и на более сложных химических свойствах, как в гистохимии ферментов, где для получения окраски используется специфическая каталитическая активность фермента. Селективность может быть также обусловлена в большей степени свойствами молекулярных агрегатов, а не отдельных молекул — например, коллаген можно избирательно окрасить за счет того, что его фибриллы сильно набухают в кислом растворе.
Выявление сукцинатдегидрогеназы. В этом гистохимическом методе выявления фермента препарат инкубируют в растворе, содержащем сукцинат — природный субстрат фермента — плюс соль тетразолия как индикатор окислительно-восстановительных процессов. В местах локализации фермента от сукцината каталитически отщепляется водород, в результате чего образуется фумарат, а также протоны и электроны. Ферментативный процесс выявляется за счет окисления электронами и протонами соли тетразолия, что ведет к образованию пурпурно-синего нерастворимого пигмента — формазана.
Реактивы, необходимые для выявления сукцинатдегидрогеназы
Концентрированные растворы,
Раствор субстрата
1. Растворите 6,75 г двузамещенного сукцината натрия в 10 мл дистиллированной воды.
2. Если окажется необходимым, доведите рН с помощью 1 М НСl до 7,0—7,1.
Раствор тетразолия
1. Растворите 10 мг тетразолия нитросинего (или тетразолия тетранитросинего) в 2,5 мл дистиллированной воды.
2. Добавьте 2,5 мл 0,2 М Трис-буфера (рН 7,4), 1 мл 0,05 М раствора MgCl2 и 3 мл дистиллированной воды.
Рабочие растворы
Солевой раствор формалина
1. Смешайте 15 мл коммерческого 40%-ного (вес на объем) водного раствора формальдегида с 85 мл воды.
2. Добавьте и растворите 0,9 г NaCl.
Инкубационный раствор
1. Смешайте 1 мл концентрированного раствора субстрата с 9 мл растворатетразолия. 2. Нагрейте до 37 °С.
Метод выявления сукцинатдегидрогеназы
1. Сделайте на криостате срезы толщиной 5—7 мкм и смонтируйте их на покровное стекло. Не фиксируйте (фермент ингибируется формальдегидом, так что фиксацию для сохранения морфологии ткани можно производить только после окрашивания).
2. Проинкубируйте срезы в течение 30—60 мин при 37 °С в растворе, указанном в табл. 5.13.
3. Перенесите срезы в водный раствор формалина (как указано в табл. 5.13) на 15 мин.
4. Промойте дистиллированной водой.
5. Если необходимо, докрасьте ядра 2%-ным (объем к весу) водным раствором метилового зеленого в течение 10 мин.
6. Промойте дистиллированной водой.
7. Проведите обезвоживание препарата в серии спиртов, затем в ксилоле и заключите его в синтетическую смолу.
Результаты. В местах локализации сукцинатдегидрогеназы откладывается пурпурно-синий формазан. Если применялась докраска метиловым зеленым, то ядра окрашены в зеленый цвет.
Контроль. Для проверки того, что окрашивание зависит от ферментативной активности, проведите процедуру, не добавляя сукцинат в инкубационную среду, или прогрейте сухие срезы при 80 °С в течение 1 часа перед инкубацией (денатурировать фермент).
Возможные трудности: следы розового окрашивания могут быть удалены на 4-м этапе с помощью ацетона. Если сохраняется интенсивное розовое окрашивание, то необходимо заменить соли тетразолия.