
- •Аннотация
- •Введение
- •Модуль 1. Цитология как наука работа № 1
- •1.1. Правила по технике безопасности
- •1.2. Правила оформления работ
- •1.3. Правила работы с микроскопом
- •1.4. Меры безопасности при работе с микроскопом
- •1.5. Устройство микроскопа
- •1.6. Настройка освещения микроскопа
- •1.6.1. С вынесенным осветителем
- •1.6.2. С встроенным в основание осветителем
- •1.7. Приготовление постоянных и временных препаратов
- •Работа № 2.
- •2.1. Важнейшие характеристики микроскопа
- •2.2. Разрешающая способность
- •2.3. Числовая апертура
- •2.4. Общее увеличение микроскопа
- •2.5. Глубина резкости изображения
- •Задание 1. Определение зависимости т и d от длины волны
- •Модуль 2. Клетка работа № 3
- •3.1. Общий план строения растительной и животной клеток
- •Задание 1. Эндоцитоз
- •Задание 2. Клетки плоского эпителия полости рта человека
- •Задание 3. Межклеточные соединения
- •Задание 4. Плазмодесмы в оболочках клеток запасающей ткани семени хурмы (Diospyros Kaki Thunb.)
- •Задание 5. Гранулярный эндоплазматический ретикулум
- •Задание 6. Аппарат Гольджи
- •Задание 7. Лизосомы
- •Задание 8. Пероксисомы
- •Задание 9. Строение клеток развивающихся листьев элодеи канадской (Elodea canadensis Michx.)
- •Задание 10. Клетки кожицы листа валлиснерии (Vallisneria spiralis l.)
- •Задание 11. Плазмолиз в клетках кожицы чешуи луковицы репчатого лука (Аlliит сера l.)
- •Задание 12. Строение клеток сформированного листа элодеи
- •Работа № 4.
- •Задание 1. Ультраструктурная организация митохондрий
- •Задание 2. Ультраструктурная организация хлоропласта.
- •Задание 3. Обнаружение ассимиляционного крахмала в клетках листа элодеи (Elodea canadensis Mich.)
- •Задание 4. Ультраструктурная организация хромопласта.
- •Задание 5. Хромопласты в клетках околоплодников зрелых плодов и корнеплодах моркови.
- •Задание 6. Ультраструктурная организация лейкопласта.
- •Задание 7. Лейкопласты в клетках кожици листа традесканции вирджинской (Tradescantia virginiana l.)
- •Задание 8. Микрофотография амилопласта.
- •Задание 9. Микрофотография гранулярного эндоплазматического ретикулума
- •Задание 9. Микрофотографии молодой растительной клетки
- •Работа № 5.
- •Задание 5. Митоз в клетках корешка лука
- •Задание 6. Митоз в животной клетке
- •Задание 7. Амитоз эпителиальных клеток
- •Модуль 3. Основы гистологии работа № 6
- •Задание 1. Клетки плоского эпителия полости рта человека
- •Задание 2. Клетки призматического эпителия почечных канальцев
- •Задание 3. Клетки мерцательного эпителия мантии беззубки
- •Задание 4. Многорядный однослойный эпителий
- •Задание 5. Многослойный эпителий
- •Задание 6. Переходный эпителий мочевого пузыря
- •Задание 7. Обкладочные клетки фундальных желез желудка
- •Задание 8. Рыхлая соединительная ткань крысы
- •Задание 9. Жировая ткань
- •Задание 11. Пигментные клетки кожи головастика
- •Меланофоры встречаются в эпидермисе и соединительной ткани кожи, в сосудистых оболочках и сетчатке глаза, а так же в некоторых внутренних органах человека и животных.
- •Задание 1. Гиалиновый хрящ ребра кролика.
- •Задание 2. Волокнистый хрящ межпозвоночного диска
- •Задание 3. Эластическая связка. Продольный разрез
- •Задание 4. Плотная коллагеновая соединительная ткань. Сухожилие, продольный разрез
- •Задание 5. Плотная коллагеновая соединительная ткань. Сухожилие, поперечный разрез
- •Задание 6. Костная ткань. Клетки жаберной крышки
- •Задание 7. Берцовая кость человека в поперечном разрезе.
- •Задание 8. Развитие кости из соединительной ткани. Нижняя челюсть зародыша свиньи.
- •Задание 9. Развитие кости на месте хряща. Трубчатая кость зародыша свиньи
- •Задание 10. Эритроциты лягушки
- •Задание 11. Мазок крови человека
- •Работа № 8
- •Задание 1. Поперечнополосатая мышечная ткань
- •Задание 2. Гладкая мышечная ткань
- •Задание 3. Сердечная мышечная ткань
- •Задание 4. Нервные клетки сетчатки лошади
- •Задание 5. Двигательные нейроны. Спинной мозг
- •Задание 6. Тигроид в двигательных нейронах
- •Задание 7. Синапсы на нейронах мозжечка
- •Задание 8. Миелиновые нервные волокна
- •Список литературы
- •Заключение
2.5. Глубина резкости изображения
Глубина резкости изображения (глубина фокуса) - способность объектива одновременно давать резкие изображения точек, находящихся от него на разном расстоянии, или глубина препарата, видимая одновременно резко. Она зависит от увеличения микроскопа и апертуры объектива. Каждый объектив позволяет видеть препарат на определенную глубину в одной плоскости. На большом увеличении необходимо поочередно фокусировать объектив в разных плоскостях. На малых увеличениях и малой апертуре глубина резкости больше, чем при больших увеличениях. Показатель глубины резкости следует особенно учитывать при микрофотографии, когда необходимо четко видеть изображение объекта в одной плоскости зрения. Глубина резкости – это глубина препарата, видимая одновременно резко. Её определяют по формуле:
T = (1000/7A×V)+(λ/2A2) (1.5)
При небольших увеличениях и малой апертуре глубина резкости больше, чем при больших увеличениях и высокой апертуре.
Качество микроскопа определяется не увеличением, а разрешающей способностью оптических устройств.
В случае сухих объективов (без использования жидких сред - иммерсии) коэффициент преломления равен единице (п = 1) и NA < 0,95.
Иммерсионная система - объектив микроскопа, у которого пространство между фронтальной линзой и рассматриваемым предметом заполнено жидкостью с более высоким показателем преломления, чем воздух. Для иммерсионных объективов нумерическая апертура зависит от показателя преломления жидкости, находящейся между препаратом и объективом. Поэтому для водноиммерсионных объективов NA меньше либо 1,25 (вода имеет n = 1,33), а для масляно - иммерсионных объективов NA меньше либо равно 1,4 (кедровое масло имеет n = 1,515). На рисунке 3 представлен ход лучей при использовании масляной иммерсии и сухого объектива. Как видно из этого рисунка, в сухой системе некоторая часть лучей не попадает в объектив, так как при выходе из покровного стекла, они отклоняются. Лучи, которые в месте выхода к поверхности стекла образуют угол больше 41о (предельный угол), полностью отражаются. Для стекла и воды предельный угол равен 41°, для кедрового масла и стекла, он не существует по причине равенства показателей их преломления. Для улучшения качества изображения часто применяется полная иммерсия, когда иммерсионную жидкость наносят и на конденсор.
Рис. 3. Сравнение хода лучей при использовании сухого (слева) и иммерсионного масляного (справа) объективов.
При работе с иммерсионными объективами следует соблюдать осторожность, чтобы при опускании тубуса не повредить линзу.
Иммерсионную жидкость наносят между линзой и объективом в виде капли на поверхность покровного стекла препарата и, опуская затем тубус, погружают линзу в каплю иммерсии. Иммерсионную жидкость можно нанести и на поверхность линзы объектива либо по капле и на препарат, и на объектив. Главное требование — создание иммерсии без пузырьков воздуха.
Только в случае соответствия апертур коллектора осветителя, конденсора и объектива разрешающая способность оптики микроскопа используется полностью.