
- •Аннотация
- •Введение
- •Модуль 1. Цитология как наука работа № 1
- •1.1. Правила по технике безопасности
- •1.2. Правила оформления работ
- •1.3. Правила работы с микроскопом
- •1.4. Меры безопасности при работе с микроскопом
- •1.5. Устройство микроскопа
- •1.6. Настройка освещения микроскопа
- •1.6.1. С вынесенным осветителем
- •1.6.2. С встроенным в основание осветителем
- •1.7. Приготовление постоянных и временных препаратов
- •Работа № 2.
- •2.1. Важнейшие характеристики микроскопа
- •2.2. Разрешающая способность
- •2.3. Числовая апертура
- •2.4. Общее увеличение микроскопа
- •2.5. Глубина резкости изображения
- •Задание 1. Определение зависимости т и d от длины волны
- •Модуль 2. Клетка работа № 3
- •3.1. Общий план строения растительной и животной клеток
- •Задание 1. Эндоцитоз
- •Задание 2. Клетки плоского эпителия полости рта человека
- •Задание 3. Межклеточные соединения
- •Задание 4. Плазмодесмы в оболочках клеток запасающей ткани семени хурмы (Diospyros Kaki Thunb.)
- •Задание 5. Гранулярный эндоплазматический ретикулум
- •Задание 6. Аппарат Гольджи
- •Задание 7. Лизосомы
- •Задание 8. Пероксисомы
- •Задание 9. Строение клеток развивающихся листьев элодеи канадской (Elodea canadensis Michx.)
- •Задание 10. Клетки кожицы листа валлиснерии (Vallisneria spiralis l.)
- •Задание 11. Плазмолиз в клетках кожицы чешуи луковицы репчатого лука (Аlliит сера l.)
- •Задание 12. Строение клеток сформированного листа элодеи
- •Работа № 4.
- •Задание 1. Ультраструктурная организация митохондрий
- •Задание 2. Ультраструктурная организация хлоропласта.
- •Задание 3. Обнаружение ассимиляционного крахмала в клетках листа элодеи (Elodea canadensis Mich.)
- •Задание 4. Ультраструктурная организация хромопласта.
- •Задание 5. Хромопласты в клетках околоплодников зрелых плодов и корнеплодах моркови.
- •Задание 6. Ультраструктурная организация лейкопласта.
- •Задание 7. Лейкопласты в клетках кожици листа традесканции вирджинской (Tradescantia virginiana l.)
- •Задание 8. Микрофотография амилопласта.
- •Задание 9. Микрофотография гранулярного эндоплазматического ретикулума
- •Задание 9. Микрофотографии молодой растительной клетки
- •Работа № 5.
- •Задание 5. Митоз в клетках корешка лука
- •Задание 6. Митоз в животной клетке
- •Задание 7. Амитоз эпителиальных клеток
- •Модуль 3. Основы гистологии работа № 6
- •Задание 1. Клетки плоского эпителия полости рта человека
- •Задание 2. Клетки призматического эпителия почечных канальцев
- •Задание 3. Клетки мерцательного эпителия мантии беззубки
- •Задание 4. Многорядный однослойный эпителий
- •Задание 5. Многослойный эпителий
- •Задание 6. Переходный эпителий мочевого пузыря
- •Задание 7. Обкладочные клетки фундальных желез желудка
- •Задание 8. Рыхлая соединительная ткань крысы
- •Задание 9. Жировая ткань
- •Задание 11. Пигментные клетки кожи головастика
- •Меланофоры встречаются в эпидермисе и соединительной ткани кожи, в сосудистых оболочках и сетчатке глаза, а так же в некоторых внутренних органах человека и животных.
- •Задание 1. Гиалиновый хрящ ребра кролика.
- •Задание 2. Волокнистый хрящ межпозвоночного диска
- •Задание 3. Эластическая связка. Продольный разрез
- •Задание 4. Плотная коллагеновая соединительная ткань. Сухожилие, продольный разрез
- •Задание 5. Плотная коллагеновая соединительная ткань. Сухожилие, поперечный разрез
- •Задание 6. Костная ткань. Клетки жаберной крышки
- •Задание 7. Берцовая кость человека в поперечном разрезе.
- •Задание 8. Развитие кости из соединительной ткани. Нижняя челюсть зародыша свиньи.
- •Задание 9. Развитие кости на месте хряща. Трубчатая кость зародыша свиньи
- •Задание 10. Эритроциты лягушки
- •Задание 11. Мазок крови человека
- •Работа № 8
- •Задание 1. Поперечнополосатая мышечная ткань
- •Задание 2. Гладкая мышечная ткань
- •Задание 3. Сердечная мышечная ткань
- •Задание 4. Нервные клетки сетчатки лошади
- •Задание 5. Двигательные нейроны. Спинной мозг
- •Задание 6. Тигроид в двигательных нейронах
- •Задание 7. Синапсы на нейронах мозжечка
- •Задание 8. Миелиновые нервные волокна
- •Список литературы
- •Заключение
1.2. Правила оформления работ
Каждый студент ведет рабочую тетрадь, оформление которой должно отвечать следующим требованиям:
- на титульном листе указывают предмет, по которому делаются записи, кем они делаются (курс, группа, подгруппа, фамилия, имя, отчество);
- каждое занятие отмечают порядковым номером, указывают его дату;
- при оформлении работы указывают её заглавие, описывают цель, указывают объект изучения;
- результаты фиксируют в виде рисунков с обязательными подписями к ним и описывают текстом, или оформляют в виде таблиц (характер оформления работы обычно указан в методическом пособии);
- рисунки должен быть размером с четверть тетрадного листа, иметь номер, название, выноски и подписи.
- в конце каждой работы делают вывод или заключение, которые обсуждаются при подведении итогов занятия.
Зарисовывание препаратов имеет исключительно важное значение в процессе его изучения. Процесс зарисовки учит студента «читать» препарат, понимать своеобразие и общность клеток и тканей, глубже осмысливать их морфологические, генетические и функциональные особенности.
Все записи необходимо делать в лаборатории. Для проверки академической активности и качества работы студента дневник периодически проверяет преподаватель, дает ему оценку.
1.3. Правила работы с микроскопом
Микроскоп необходимо содержать в чистоте и предохранять от повреждений. В нерабочем состоянии микроскоп должен быть накрыт чехлом. Особое внимание следует обращать на чистоту объективов и других оптических деталей.
ВНИМАНИЕ! Нельзя касаться пальцами поверхностей линз. Для предохранения оптических деталей визуальной насадки от пыли следует оставлять окуляры в тубусах или надевать на них колпачки.
Оптические поверхности окуляров, объективов и конденсора можно осторожно протирать чистой ватой, навернутой на деревянную палочку и смоченной специальной жидкостью для чистки оптических деталей. При загрязнении внутренних поверхностей линз объектива необходимо объектив отправить для чистки в оптическую мастерскую.
ВНИМАНИЕ! Запрещается самим разбирать объективы, окуляры, конденсор.
Рассмотрим важнейшие погрешности при работе с микроскопом, чтобы начинающие исследователи не допускали их с самых первых шагов, добиваясь таким образом максимального использования возможностей микроскопа. К таким ошибочным действиям необходимо отнести следующие.
Одновременное применение вогнутого зеркала и конденсора, что нарушает принцип освещения препарата.
Использование высоко-апертурных конденсоров с NA = 1,2 - 1,4 с низко-апертурными объективами с NA = 0,2 - 0,4 ухудшает качество изображения. Для устранения этой ошибки следует предварительно уменьшить нумерическую апертуру конденсора путем снятия (отвинчивания) его верхней линзы.
Произвольное опускание конденсора без учета толщины предметного стекла может привести к появлению артефактов.
Регулировка освещенности поля зрения микроскопа при помощи опускания и поднятия конденсора, поскольку это влияет на качество изображения.
Произвольное изменение величины отверстия апертурной диафрагмы конденсора с целью регулировки освещенности поля зрения микроскопа.
Пренебрежение нейтральными светофильтрами и матовыми стеклами для регулировки освещенности поля зрения микроскопа, что ухудшает восприятие препарата и может оказывать отрицательное влияние на зрение исследователя.
Применение толстых предметных стекол (толще 1, 2 мм), что препятствует правильной установке освещения при высокоапертурных объективах, поскольку при этом не удается сфокусировать конденсор на объекте.
Применение покровных стекол несоответствующей толщины (толще или тоньше 0,17 мм).
Пренебрежение созданием полной иммерсии при работе с объективами, имеющими нумерическую апертуру более 1,2, что не позволяет полностью использовать нумерическую апертуру объектива.