
- •Аннотация
- •Введение
- •Модуль 1. Цитология как наука работа № 1
- •1.1. Правила по технике безопасности
- •1.2. Правила оформления работ
- •1.3. Правила работы с микроскопом
- •1.4. Меры безопасности при работе с микроскопом
- •1.5. Устройство микроскопа
- •1.6. Настройка освещения микроскопа
- •1.6.1. С вынесенным осветителем
- •1.6.2. С встроенным в основание осветителем
- •1.7. Приготовление постоянных и временных препаратов
- •Работа № 2.
- •2.1. Важнейшие характеристики микроскопа
- •2.2. Разрешающая способность
- •2.3. Числовая апертура
- •2.4. Общее увеличение микроскопа
- •2.5. Глубина резкости изображения
- •Задание 1. Определение зависимости т и d от длины волны
- •Модуль 2. Клетка работа № 3
- •3.1. Общий план строения растительной и животной клеток
- •Задание 1. Эндоцитоз
- •Задание 2. Клетки плоского эпителия полости рта человека
- •Задание 3. Межклеточные соединения
- •Задание 4. Плазмодесмы в оболочках клеток запасающей ткани семени хурмы (Diospyros Kaki Thunb.)
- •Задание 5. Гранулярный эндоплазматический ретикулум
- •Задание 6. Аппарат Гольджи
- •Задание 7. Лизосомы
- •Задание 8. Пероксисомы
- •Задание 9. Строение клеток развивающихся листьев элодеи канадской (Elodea canadensis Michx.)
- •Задание 10. Клетки кожицы листа валлиснерии (Vallisneria spiralis l.)
- •Задание 11. Плазмолиз в клетках кожицы чешуи луковицы репчатого лука (Аlliит сера l.)
- •Задание 12. Строение клеток сформированного листа элодеи
- •Работа № 4.
- •Задание 1. Ультраструктурная организация митохондрий
- •Задание 2. Ультраструктурная организация хлоропласта.
- •Задание 3. Обнаружение ассимиляционного крахмала в клетках листа элодеи (Elodea canadensis Mich.)
- •Задание 4. Ультраструктурная организация хромопласта.
- •Задание 5. Хромопласты в клетках околоплодников зрелых плодов и корнеплодах моркови.
- •Задание 6. Ультраструктурная организация лейкопласта.
- •Задание 7. Лейкопласты в клетках кожици листа традесканции вирджинской (Tradescantia virginiana l.)
- •Задание 8. Микрофотография амилопласта.
- •Задание 9. Микрофотография гранулярного эндоплазматического ретикулума
- •Задание 9. Микрофотографии молодой растительной клетки
- •Работа № 5.
- •Задание 5. Митоз в клетках корешка лука
- •Задание 6. Митоз в животной клетке
- •Задание 7. Амитоз эпителиальных клеток
- •Модуль 3. Основы гистологии работа № 6
- •Задание 1. Клетки плоского эпителия полости рта человека
- •Задание 2. Клетки призматического эпителия почечных канальцев
- •Задание 3. Клетки мерцательного эпителия мантии беззубки
- •Задание 4. Многорядный однослойный эпителий
- •Задание 5. Многослойный эпителий
- •Задание 6. Переходный эпителий мочевого пузыря
- •Задание 7. Обкладочные клетки фундальных желез желудка
- •Задание 8. Рыхлая соединительная ткань крысы
- •Задание 9. Жировая ткань
- •Задание 11. Пигментные клетки кожи головастика
- •Меланофоры встречаются в эпидермисе и соединительной ткани кожи, в сосудистых оболочках и сетчатке глаза, а так же в некоторых внутренних органах человека и животных.
- •Задание 1. Гиалиновый хрящ ребра кролика.
- •Задание 2. Волокнистый хрящ межпозвоночного диска
- •Задание 3. Эластическая связка. Продольный разрез
- •Задание 4. Плотная коллагеновая соединительная ткань. Сухожилие, продольный разрез
- •Задание 5. Плотная коллагеновая соединительная ткань. Сухожилие, поперечный разрез
- •Задание 6. Костная ткань. Клетки жаберной крышки
- •Задание 7. Берцовая кость человека в поперечном разрезе.
- •Задание 8. Развитие кости из соединительной ткани. Нижняя челюсть зародыша свиньи.
- •Задание 9. Развитие кости на месте хряща. Трубчатая кость зародыша свиньи
- •Задание 10. Эритроциты лягушки
- •Задание 11. Мазок крови человека
- •Работа № 8
- •Задание 1. Поперечнополосатая мышечная ткань
- •Задание 2. Гладкая мышечная ткань
- •Задание 3. Сердечная мышечная ткань
- •Задание 4. Нервные клетки сетчатки лошади
- •Задание 5. Двигательные нейроны. Спинной мозг
- •Задание 6. Тигроид в двигательных нейронах
- •Задание 7. Синапсы на нейронах мозжечка
- •Задание 8. Миелиновые нервные волокна
- •Список литературы
- •Заключение
Задание 10. Клетки кожицы листа валлиснерии (Vallisneria spiralis l.)
Приготовить временный препарат кожицы листа валлиснерии. Рассмотреть препарат на малом и большом увеличении. Зарисовать клетку и видимые органеллы. Сделать подписи к рисунку. Описать препарат.
Для приготовления препарата на любой из сторон линейного листа валлиснерии скальпелем или препаровальной иглой надрезают кожицу, кусочек которой сдирают с листовой пластинки, кладут в каплю воды на предметное стекло, осторожно накрывают покровным стеклом и рассматривают при малом и большом увеличении микроскопа (рис. 9).
Клетки кожицы либо вытянуты по длине листа, либо имеют квадратные или многоугольные очертания. Оболочки клеток тонкие, прозрачные, плотно примыкающие одна к другой. В клетках видны многочисленные зеленые тельца - хлоропласты, или хлорофилловые зерна. Хлоропласт имеет форму двояковыпуклой линзы, фронтальная сторона которой всегда обращена к клеточной стенке.
Рис. 9. Кожица листа валлиснерии: 1 - оболочка клетки; 2 - хлоропласты; 3 - ядро; 4- направления движения цитоплазмы; 5 - цитоплазма.
При внимательном наблюдении можно видеть, что пластиды перемещаются вдоль клеточных стенок. Это происходит вследствие движения вокруг центральной вакуоли цитоплазмы. Такое движение называют круговым или ротационным (циклоз).
Движение цитоплазмы играет важную роль в осуществлении обменных процессов и распределении веществ внутри клетки. В естественных условиях цитоплазма движется очень медленно, под влиянием физических или химических раздражителей движение обычно ускоряется. Это движение называют вторичным. Довольно быстрое движение цитоплазмы в клетках валлиснерии вызвано механическим повреждением листа в связи со снятием кожицы. Сначала оно заметно лишь в некоторых, а затем почти во всех клетках. Движение можно ускорить, если лист на несколько минут положить в теплую воду или добавить в нее каплю спирта.
Задание 11. Плазмолиз в клетках кожицы чешуи луковицы репчатого лука (Аlliит сера l.)
Для ознакомления со строением клеток и особенностями плазмолиза можно использовать кожицу, покрывающую внутренние чешуи луковицы лука. Слегка надрезанная скальпелем или препаровальной иглой кожица обычно легко сдирается. Ее рассматривают в воде под покровным стеклом при малом и большом увеличении микроскопа.
Клетки кожицы разных размеров, многоугольные, с тонкими, плотно сомкнутыми стенками (рис.10). В некоторых местах стенки пересечены узкими канальцами - порами, которые посередине перегорожены тонкой мембраной. В клетке хорошо видно ядро с ядрышком. Ядро окружено цитоплазмой, составляющей так называемый ядерный кармашек, соединенный тяжами с постенным слоем цитоплазмы. В цитоплазме встречаются капли эфирных масел, а в вакуолях - мелкие кубические или призматические кристаллы щавелевокислого кальция.
Рис. 10. Плазмолизированные клетки чешуи лука. 1 - ядро; 4 - вакуоли; 5 – кристалл оксалата кальция; 12- оболочка клетки; 13 – плазмалемма; 14 – нити Гехта.
Цитоплазма в клетках кожицы лука более вязкая, чем у водных растений. О высокой вязкости цитоплазмы можно судить по характеру плазмолиза. Во многих клетках плазмолиз вогнутый. Отошедшие от стенок искривленные участки протопласта обращены к стенкам вогнутыми сторонами. В некоторых местах протопласт связан с клеточными стенками тонкими цитоплазматическими тяжами - «нитями Гехта», часть которых со временем разрывается.
Лучше всего наблюдать плазмолиз в клетках лиловых чешуй лука. Окраска чешуй обусловлена наличием в клеточном соке водорастворимого пигмента - антоциана. По мере выхода из вакуоли воды концентрация пигмента увеличивается, и окраска клеточного сока становится интенсивнее.