
- •Амебна дизентерія свиней.
- •Анаплазмоз худоби.
- •Аскаридіоз та гетеракідоз птахів. Аскаридіоз
- •Гетеракоз
- •Аскаридоз (аскароз) свиней.
- •Бабезіоз коней.
- •Бабезіоз собак.
- •Бабезіози худоби.
- •Балантидіоз свиней.
- •Балантидіоз свиней
- •Визначення та зміст глобальної паразитології.
- •Вплив паразитів на організм хазяїна.
- •Гастрофільоз коней.
- •Гельмінтологічні методи дослідження об’єктів довкілля.
- •Гематопіноз свиней.
- •Гіардіоз (лямбліоз) м’ясоїдних.
- •Гіпобоскоз коней.
- •Гістомоноз птахів.
- •Демодекоз собак.
- •Демодекоз худоби.
- •Дипілідіоз м’ясоїдних.
- •Дирофіляріоз собак.
- •Дифілоботріоз м’ясоїдних.
- •Дрепанідотеніоз гусей
- •Езофагостомоз свиней.
- •Еймеріоз худоби.
- •Еймеріоз, ізоспороз свиней.
- •Енцефалітозооноз кролів.
- •Естроз овець.
- •Ехінококоз ларвальний.
- •Ізоспороз м’ясоїдних
- •Криптоспоридіоз жуйних.
- •Лабораторні методи діагностики акарозів.
- •Вітальні методи виявлення коростяних кліщів
- •Мортальні методи виявлення коростяних кліщів
- •Лабораторні методи діагностики гельмінтозів.
- •Гельмінтоовоскопія
- •Гельмінтоларвоскопія
- •Лабораторні методи діагностики протозоозів.
- •Лейкоцитозооз птахів.
- •Лістрофороз кролів.
- •Макраканторинхоз свиней
- •Опісторхоз м’ясоїдних.
- •Парафілярози тварин.
- •Поліморфоз та філікольоз птахів.
- •Простогонімоз птахів
- •Псороптози тварин.
- •Ринестроз коней.
- •Саркоцистоз худоби
- •Саркоцистози м’ясоїдних.
- •Сингамоз птахів
- •Сирингофільоз птахів.
- •Сучасні антипротозойні лікувальні препарати та лікоопірність паразитів.
- •Сучасні лікувальні препарати за гельмінтозів та лікоопірність паразитів.
- •Сучасні лікувальні препарати за ектопаразитозів та лікоопірність паразитів.
- •Сучасні методи дослідження проміжних та резервуарних хазяїв.
- •Тейлеріози жуйних.
- •Токсоплазмоз м’ясоїдних
- •Трипаносомоз однокопитних.
- •Трихінельози – зооантропонози (діагностика).
- •Трихуроз свиней.
- •Хейлетіоз кролів.
- •Хоріоптози тварин.
- •58. Цистицеркоз бовісний.
- •Цистицеркоз целюлозний.
Лабораторні методи діагностики акарозів.
Методи виявлення та диференціювання акариформних кліщів
Дослідження поверхонь окремих предметів довкілля. Центрифужну пробірку заповнюють на 2/3 сумішшю гліцерину з водою (20 : 80). У суміші змочують м'який акварельний пензлик і багато разів проводять ним поперхнею обстежуваного предмета. Пензлик періодично споліскують у пробірці. Далі пробірку доливають до країв водою і центрифугують протягом 5–15 хвилин за 1500–2000 об/хв. Осад із
пробірок переносять на предметне скло і досліджують під мікроскопом.
Дослідження сміття з тваринницьких приміщень. Відповідні порції зібраного матеріалу вміщують у центрифужну пробірку, заливаютьводою, ретельно розмішують і центрифугують, як вказано вище. Після обережного зливання надосадової рідини до осаду додають 60% розчин гіпосульфіту, через 5 хвилин на поверхню спливають кліщі, які були в субстраті.
Визначення життєздатності саркоптоїдних кліщів. Свіжий зскрібок шкіри вміщують у фарфорову ступку і розтирають з невеликою кількістю 10% розчину їдкого натрію, не підігріваючи. Пізніше дві невеликі частки цього матеріалу вміщують поряд на предметному склі, накривають кожну покривним скельцем і досліджують під мікроскопом. У випадку виявлення в препаратах кліщів їх досліджують пізніше під
імерсійною системою мікроскопа. Життєздатність кліщів встановлюють за наявністю швидкого руху гемолімфи в ніжках біля основи епімер по краях тіла паразитів.
Лабораторне виявлення саркоптоїдних кліщів. У глибоких зскрібках із шкіри хворих тварин виявляють збудників корости на різних стадіях диференціювання – яйця, личинки, німфи та імаго. Зскрібки відбирають скальпелем або ложкою Фолькмана на краях ділянок ураженої шкіри до появи сукрів’я. Отриманий матеріал доставляють у лабораторію у закупореній пробірці і досліджують з метою виявлення різних стадій цих кліщів та їх яєць мортальними або вітальними методами. Для виявлення саркоптоїдних кліщів необхідно на тілі тварини знайти місця, підозрілі щодо ураження кліщами: сверблячку, розчухування, скуйовджену шерсть, алопеції, злущення шкіри, потовщення і вкривання грубими товстими кірками, вузликові потовщення, втрату еластичності шкіри. Щоб виявити нашкірників і свербунових кліщів, зскрібки роблять із свіжих неуражених вогнищ (не менше, ніж з 2–3 місць) на межі між ураженою і здоровою шкірою, а для виявлення шкіроїдів – у центрі ураження. Кліщі можуть бути екто- і ендо- паразитами, тому зскрібати слід скальпелем глибоко, обсягом не менше 0,5 см до появи слідів крові. Проби зскрібають на підставлену чашку Петрі, предметне скло або аркуш щільного паперу. Якщо дослідження здійснюють не віддразу, то пробу переносять у пробірку (всередину
кладуть етикетку), закривши гумовим корком. Досліджують протягом 1–2 днів на наявність кліщів, їх яєць, личинок і німф. Існує дві групи методів виявлення рухливих (живих) або нерухливих (мертвих) кліщів.
Вітальні методи виявлення коростяних кліщів
Метод А.В. Алфімової. Свіжий зскрібок шкіри кладуть в бактеріологічну чашку, накривають її кришкою і вміщують у термостат на 10–15 хвилин за температури 35–40° С, або до зскрібка додають восьмикратну за об'ємом кількість води. Кліщі починають активно рухатися на дні чашки, що добре помітно під мікроскопом.
Метод Д.Р. Приселкової. Чашку Петрі, в яку вміщено зішкріб, закривають кришкою, ставлять на джерело тепла (скляний посуд з гарячою водою до 50° С). Через 10–15 хвилин із зскрібка починають мігрувати нашкірники і шкіроїди, а через 20–30 хвилин – свербунові кліщі. Чашку переносять на аркуш чорного паперу, знімають кришку, розглядають чашку на наявність кліщів (можна досліджувати під мікроскопом). Ще краще перенести кліщів зволоженим пензликом у краплю води або гліцерину на предметне скло, накрити накривним скельцем і досліджувати під мікроскопом.
Метод Н.Ф. Родіонової. Монтують апарат Бермана, заповнюють водою, підігрітою до 42–43° С. У верхній частині лійки на залізне ситечко вміщують зскрібок шкіри. Через 30–40 хвилин уміст гумової трубки зливають у центрифужну пробірку, центрифугують. Верхній шар рідини із пробірки зливають, а осад переносять на предметне скло, накривають покривним скельцем і досліджують під мікроскопом.
Метод М.Г. Хатіна. Добре подрібнений зскрібок шкіри вміщують у центрифужну пробірку, заливають підігрітим до 25–30° С фізіологічним розчином і центрифугують протягом 5 хвилин. Пізніше розчин зливають, а осад краплями переносять на предметне скло і досліджують під мікроскопом.