
- •Уход за хирургическими больными
- •III-VI уровня аккредитации
- •Предусловие
- •Тема 1. Введение в хирургию. Гигиена в хирургическом стационаре. Работа младшего медицинского персонала в условиях хирургического отделения
- •1. Задания для самостоятельной работы во время подготовки к занятию:
- •2. Содержание темы Вопросы хирургической деонтологии. Правила поведения в хирургической клинике
- •Структура хирургической клиники
- •3. Вопросы для самоконтроля.
- •1. Задания для самостоятельной работы во время подготовки к занятию
- •2. Содержание темы
- •Особенности ухода за больными, которые перенесли оперативное вмешательства на голове, шеи, грудной клетки
- •Тема 3. Уход за больными, оперируемыми на органах брюшной полости, промежности, конечностях. Повязки на живот, промежность, конечности. Уход за больными с переломами. Гипсовая техника.
- •1. Задания для самостоятельной работы во время подготовки к занятию:
- •2. Содержание темы:
- •3. Вопросы для самоконтроля:
- •Методы современной антисептики, их характеристика
- •Тема 5. Организация работы в стерилизационной. Подготовка и стерилизация режущих, оптических, общехирургических инструментов. Стерилизация шовного материала
- •2. Содержание темы
- •Тема 6. Хирургическая операция, подготовка больных к операциям. Уход за больными в послеоперационном периоде
- •2. Содержание темы
- •Материалы для самоконтроля Тестовые задания к тем к тема № 1
- •К теме № 2
- •К теме № 3
- •К теме № 4
- •К теме № 5
- •К теме № 6
- •Список основной литературы
- •Список дополнительной литературы
Тема 5. Организация работы в стерилизационной. Подготовка и стерилизация режущих, оптических, общехирургических инструментов. Стерилизация шовного материала
1. Задания для самостоятельной работы во время подготовки к занятию:
1.1. Теоретические вопросы к занятию:
Что такое асептика;
Виды хирургического инструментария;
Методы подготовки хирургического инструментария к стерилизации;
Методы стерилизации режущих, оптических, обще хирургических инструментов;
Виды шовного материала;
Методы стерилизации шовного материала;
Методы контроля стерилизации.
1.2. Практические задания, которые выполняются на занятии (надо уметь
проводить):
Подготовка инструментов к стерилизации;
Стерилизация различных видов инструментария;
Пробы на качество предстерилизационной обработки инструментов;
Стерилизацию различных видов шовного материала.
2. Содержание темы
Асептика - комплекс мероприятий, направленных на предотвращение проникновения микробов в рану. В основу асептики положено правило: все, что соприкасается с раной (инструменты, руки медицинского персонала, перевязочный и шовный материал, операционная белье, воздух в операционной и перевязочной), должно быть стерильным.
Подготовку инструментов к стерилизации. Предстерилизационной подготовка - тщательную механическую очистку инструментария.
Порядок предстерилизационной подготовки инструментария:
дезинфекция;
промывание под проточной водой в течение 30 с;
замачивание в смеси из водорода пероксида и моющего средства 50°С на 15 мин;
мытье в моечно-пероксидной смеси с помощью ватно-марлевого тампона в течение 30 с;
полоскание дистиллированной водой;
просушка;
пробы на качество предстерилизацийнои подготовки (на наличие моющих средств - фенолфталеиновой на наличие остатков крови и жира - бензидиновая проба).
Укладка и подготовка инструментария к стерилизации. После предварительного просушивания на воздухе инструментарий вкладывают в сухожаровой шкаф, который нагревают до 80°С при открытой дверце. После этого дверь закрывают и начинается стерилизация.
Стерилизация. Металлический инструментарий и стеклянную посуду стерилизуют в сухожаровых шкафах-стерилизаторах. После закрытия дверей температуру в шкафу доводят до 180°С и поддерживают ее автоматически в течение 60 мин, затем выключают.
Стерилизацию инструментария с пластмассовыми деталями можно проводить в паровом стерилизаторе (автоклаве), положив его в бокс. Стерилизация длится 20 мин при 2 атм. при температуре 132,9°С. началом стерилизации считают с момента достижения соответствующего давления. Резиновые перчатки, резиновые дренажные трубки стерилизуют при 1,1 атм. при температуре 120°С в течение 45 мин.
Режущие инструменты обертывают двумя слоями специальной бумаги и стерилизуют сухожаровым методом. Но режущие инструменты при стерилизации высокой температурой постепенно теряют свои свойства, так как металл становится более «мягким» и инструменты быстро затупляются. Поэтому их после достерилизацийного обработки целесообразнее стерилизовать «холодными» методами, чаще всего замачивают в растворах антисептиков: 96°-70° спирта - на 2 часа, 6% раствор перекиси водорода при температуре 18° С – на 6 часов, раствора дезоксон-1 – на 45 мин, раствора препарата «Сайдекс» в течение 60 мин. По истечении времени стерилизации инструменты хранятся в этих растворах к практическому использованию.
Инструменты и предметы, которые не подлежат термической обработке (эндоскопы, торакоскопы, лапароскопы, аппараты или блоки аппаратов для искусственного кровообращения, гемосорбции), стерилизуют в специальном газовом стерилизаторе. Предметы вкладывают в герметичную стерилизационную камеру, которую наполняют оксидом этилена. Срок экспозиции – 16 часов при температуре 18°С. Стерилизацию можно проводить смесью оксида этилена и бромистого метилена при температуре 55°С в течение 6 часов.
Стерилизацию инструментария и аппаратов химическими средствами следует проводить в металлических или пластиковых коробках с плотными крышками предотвращает испарение препаратов.
Хранения стерильных материалов. Стерильные материал хранят в специальном помещении. Не допускается хранение в одном помещении нестерильных и стерильных материалов. Стерильность материалов в биксах (если они не открывались) сохраняется в течение 48 часов, а при дополнительной упаковки в хлопчатобумажный мешок - 72 часа.
Лучшим в плане асептики следует считать применение инструментов одноразового использования (шприцы, скальпели, системы для в/венных вливаний, некоторые сшивающие аппараты и др.), которые стерилизуются на предприятиях медицинской промышленности различными методами, в том числе γ-облучением и ультразвуком.
Приготовление моющих и дезинфицирующих растворов. Современные дезинфицирующие средства используют для дезинфекции и уборки; сочетание дезинфекции и предстерилизационной обработки инструментария, гибких и жестких фиброскопов; дезинфекции лабораторной посуды.
Корзолекс плюс (только для инструментария): 30 мл на 1 л (3% раствор).
Корзолекс Базик (только для инструментария): 20 мл на 1 л (2% раствор).
Дезактин: 2 г на 1 л - для текущей уборки (0,2% раствор), 10 г на 1 л - для генеральной уборки (1% раствор).
Хлорантоин: 2 г на 1 л - для текущей уборки (0,2% раствор), 10 г на 1 л - для генеральной уборки (1% раствор).
Дезэффект: 23 мл на 1 л - для текущей уборки (2,3% раствор), 38 мл на 1 л - для генеральной уборки (3,8% раствор).
Максисан: 1,7 мл на 1 л - для текущей уборки (0,17% раствор), 2,5 мл на 1 л - для генеральной уборки (0,25% раствор).
Септодор-форте: 0,25 мл на 1 л - для текущей уборки (0,025% раствор), 2 мл на 1 л - для генеральной уборки (0,2% раствор).
Корзолекс экстра: 15 мл на 1 л - для текущей уборки (1,5% раствор), 2 мл на 1 л - для генеральной уборки (2% раствор).
Бацилоцид расант: 2,5 мл на 1 л - для текущей уборки (0,25% раствор), 5 мл на 1 л - для генеральной уборки (0,5% раствор).
Бланидас: 2 г на 1 л - для текущей уборки (0,2% раствор), 10 г на 1 л - для генеральной уборки (1% раствор).
Пробы на качество предстерилизационной обработки инструментов. Качество предстерилизационной обработки проверяют путем выполнения проб на наличие:
Крови (бензидина, Азопирамовая, амидопиринова);
Моющих химических средств (фенолфталеин);
Жира (проба с Суданом III).
Качество предстерилизационной обработки контролируют санитарно-эпидемиологическая и дезинфекционная станция не реже одного раза в квартал; самоконтроль – заведующий централизованной стерилизационной проводит один раз в день. Проверяют не менее 1% от количества изделий каждого наименования, подлежащих обработке за одну смену.
Амидопириновой проба - раствор готовят непосредственно перед применением. Смешивают 5% спиртовой раствор амидопирина, 30% раствор уксусной кислоты и 3% раствор водорода пероксида в равных пропорциях. Готовый раствор хранят во флаконе с притертой пробкой в холодильнике в течение 1 месяца. Проба является положительной, если в течение 1 мин после нанесения раствора появляется сине-фиолетовую окраску.
При постановке азопирамовой и амидопириновой проб окраска, которая появляется позднее чем через 1 мин, не учитывается.
Фенолфталеин проба – готовят 1% спиртовой раствор фенолфталеина. Готовый раствор хранят в плотно закрытом флаконе в холодильнике в течение 1 месяца. Проба является положительной, если после обработки раствором появляется розовая окраска. Это свидетельствует о наличии остатков щелочей с моющих средств.
Проба с Суданом III – готовят раствор с 0,2 г Судана III и 0,2 г синего метиленового, которые растворяют в 70 мл 96% этилового спирта, подогретого на водяной бане до 60°С и добавляют 10 мл 20-25% раствора аммиака и 20 мл дистиллированной воды. Готовый раствор хранят во флаконе с притертой пробкой в холодильнике в течение 6 месяцев. При постановке пробы 3-5 мл раствора наносят на инструментарий и через 10 с смывают водой. Желтые пятна указывают на наличие жировых загрязнений. В случае выявления положительных проб вся партия инструментария подлежит повторной обработке.
Виды шовного материала. Шовный материал классифицируют на:
Тот, что рассасывается:
животного происхождения (кетгут, коллаген);
растительного происхождения - на основе целлюлозы (окцелон, кацелон);
синтетический:
на основе полигликолизов (Полисорб, викрил, дексон, Максон);
полидиоксанон;
полиуретан.
Тот, что рассасывается медленно: шелк, полиамид (капрон).
Тот, не рассасывается:
полиэфиры (лавсан, суржидак, мерсилен, етибонд);
полиолефины (суржипрон, пролен, полипропилен, суржилен);
фтор полимеры (гортекс);
поливинилидена (корален);
металлический провод, металлические скобы.
Способы контроля стерильности. Методы контроля стерильности разделяют на прямой и косвенный.
Прямой метод контроля является результатом бактериологического исследования (точный метод). Специальным стерильным тампоном проводят по стерильному инструментария, коже рук хирурга, операционному полю и др. Тампон помещают в стерильную пробирку и направляют в бактериологической лаборатории, где делают посев на различные питательные среды. Затем констатируют отсутствие или наличие роста микрофлоры и проводят ее идентификацию.
Косвенный метод контроля используют в основном при термических методов стерилизации для определения показателя температуры, при которой проводили обработку материалов. Метод не дает точного ответа о наличии или отсутствии микрофлоры и применяется при каждой стерилизации. Перед автоклавированием в бокс кладут ампулу с порошкообразным веществом, имеющим температуру плавления 110-120°С или специальные индикаторы, меняющие свой цвет при соблюдении стандартных температурных режимов автоклавирования. По окончании стерилизации, открыв бокс, операционная сестра проверяет состояние вещества в пробирке или цвет индикатора. Если вещество в пробирке расплавилась, изменился цвет индикатора, то можно считать, что режимы автоклавирования были соблюдены и материал является стерильным.
3. Вопросы для самоконтроля:
Предстерилизационная подготовка инструментария.
Методы стерилизации хирургического инструментария.
Стерилизация инструментария в автоклаве.
Стерилизация инструментария в сухожаровом шкафу.
Особенности стерилизации инструментов, не подлежащих термической обработке.
Способы контроля за стерильностью хирургических инструментов.
Приготовление моющих и дезинфицирующих растворов.
Виды шовного материала.
Методы стерилизации шовного материала.
Способы контроля стерильности.