Руководство по иммунофармакологии / 013306
.pdf
40 |
Глава 3 |
А |
Б |
В |
Рис. 18. Распределение кальция в покоящихся и активированных клетках.
Числа в полосе обозначают наномолярные концентрации [Ca2 + ]j. А-нестимулированная клетка. [Ca2 + ]j в теле клетки составляет 74 нм, в ламеллоподии69 нм (п = 17). Б-нейтрофил, мигрирующий к опсонизированной частице зимозана (стрелка). [Са2 + ]( в теле клетки108 нм, в ламеллоподии146 нм (п = 12). В-нейтрофил, фагоцитирующий опсонизированную частицу зимозана. [Ca2 + ]i в теле клетки106 нм, в псевдоподийной области161 нм (п = 31). Ламеллоподии определен как передняя треть клетки, тело-как ее средняя треть, а область псевдоподия-как часть (клетки), окружающая опсонизированную частицу. (Адаптированный рис. 1 из работы Slawier и соавт. Science, 1985, 230, 663, где измерение Са2+ определено по кальцийзависимой флюоресценции клеток, меченных Quin-2.)
Рис. 19. Влияние ИФ3 на выделение Са2+ проницаемыми |
|
|
||
клетками [Prentki и соавт.,-J. Biol. Chem., 1984, 259, 1377]. |
ИФ3, мкМ |
|||
|
|
|
||
клетки к микроорганизму и при его после- |
непосредственно перед началом процесса и |
|||
дующем фагоцитозе отмечается весьма четко |
тесно коррелирует с клеточной реакцией (см. |
|||
локализованное повышение концентрации ци- |
рис. 17). Однако в отсутствие внеклеточного |
|||
тозольного |
кальция в переднем конце клетки |
кальция реакция не определяется, что свиде- |
||
(рис. 18). Такое повышение происходит двумя |
тельствует о необходимости повышения кле- |
|||
путями. Первоначальная фаза роста обеспе- |
точной проницаемости для кальция при дегра- |
|||
чивается |
мобилизацией |
внутриклеточного |
нуляции. Увеличение кальциевой проницаемос- |
|
кальция, выходящего из немитохондриального |
ти происходит после образования ИФ3. Окон- |
|||
депо под действием ИФ3, образующегося из |
чательная мобилизация |
внутреннего кальция |
||
ФИФ2 (см. выше и рис. 19). ИФ3 синтезируется |
также определяется ИФ3. |
Показано, что на- |
||
чальныи подъем цитозольного кальция определяется кальциевым каналом плазматической мембраны. В этом процессе принимают участие инозитолтетрафосфат (ИФ4), производное ИФ3. Местное увеличение цитозольного кальция обычно необходимо для активации «двигателя». Повышение концентрации кальция активирует гельзолинактинфрагментирующий белок, вызывающий местные изменения соотношения геля и золя. Необходимо также участие в этом процессе кальмодулина, который активирует киназу легкой цепи миозина, фосфорилирующую миозин. Миозин взаимодействует с F-сетью актина, образуя главный силовой элемент клетки (см. главу 18). К другим эффектам кальция в клетке относятся активация фосфолипазы А2 (см. ниже) и, возможно, активация кальцийзависимой фосфолипазы С, гидролизирующей фосфатидилинозитол и монофосфат фосфатидилинозитола с образованием ДАГ (но не ИФ3).
Увеличение концентрации кальция в цитозоле служит необходимым и достаточным стимулом для экзоцитоза и, возможно, для хемотаксиса и фагоцитоза (хотя частицы, опсонизированные С3bi, могут фагоцитироваться независимо от изменений [Са2+]), но не для дыхательного взрыва, для которого главным передаточным механизмом является активация протеинкиназы С.
Роль протеинкиназы С
Протеинкиназа С- это фермент, активируемый кальцием. Он обычно присутствует в цитозоле, но при активации клетки связывается с мембранными фосфолипидами, например с фосфатидилсерином. ДАГ повышает аффинитет протеинкиназы С к кальцию, поэтому он становится активным уже при нормальной концентрации кальция в клетке. Экспериментально показано, что даже при поразительно низких концентрациях внутриклеточного кальция активация протеинкиназы С (ПКС) служит мощным стимулом для дыхательного взрыва.
ПКС фосфорилирует цитохром В-245 одиг из самых
компонентов НАДФН-оксидазы. Следует, однако, отметить, что в большинстве экспериментов, показавших влияние ПКС на дыхательный взрыв, применялись неприродные соединения, например ФМА. ФМА, относящийся к соединениям с высокой жирорастворимостью, очень медленно метаболизируется в клетке; результаты, полученные при использовании ФМА, могут никак не соотноситься с данными
Нейтрофильные лейкоциты |
41 |
in vivo, так как естественный активатор протеинкиназы С (ДАГ) очень быстро метаболизируется в клетке и, следовательно, доступен лишь при низких концентрациях, локально и только после стимуляции рецепторов. При хемотаксисе, вызванном растворимыми хемотаксинами, ДАГ синтезируется при распаде ФИФ2 и может присутствовать в клетке лишь непродолжительное время. Для дыхательного взрыва, стимулом для которого in vivo является фагоцитоз, необходимо более длительное присутствие ДАГ, поэтому в последующем может иметь место гидролиз фосфатидилинозитола с участием кальцийзависимой фосфолипазы С.
Nishizuka (1984) предположил, что синергизм между кальцием и протеинкиназой С должен иметь большое значение для клеточных реакций. Такой синергизм показан у ней-трофилов при использовании синтетического диацилглицерола (1-олеоил-2-ацетоглицерол, ОАГ) для стимуляции протеинкиназы С и нонофора двухвалентных ионов А23187 с целью
повышения концентрации кальция в цитозоле. ОАГ быстро метаболизируется в клетке теми же ферментами, что и ДАГ, поэтому он считается более физиологичным стимулятором. Подпороговые концентрации ОАГ действуют синергично с А23187, вызывая дозозависимый сдвиг влево кривой «концентрация - эффект» для А23187 в отношении образования OJ, а также выраженное увеличение максимального ответа (рис. 20, а). Аналогично этому, низкая концентрация А23187 усиливает эффект ОАГ
(рис. 20, б).
Протеинкиназа С оказывает комплексное влияние на передачу сигнала. Как и в других клетках, этот фермент является разнонаправленным регулятором некоторых процессов. Так, если активаторы протеинкиназы С си-нергичны с рецепторными стимуляторами дыхательного взрыва, то они же подавляют ре-цепторную стимуляцию дегрануляции (рис. 21), вызванную ф.мет-лей-фен и ЛТВ4, а также стимуляцию хемотаксиса под действием С5а. Подавление сопровождается снижением содержания кальция
вцитозоле (рис. 22) и, вероятно, происходит на уровне рецептора или ассоциированного с ним белка G, поскольку А23187 и подобные ему агенты, вызывающие повышение [Са2 + ]; в обход рецепторов, проявляют синергизм с ФМА
вотношении экзоцитоза. Подавление, повидимому, затрагивает лишь рецепторы к растворимым хемо-таксинам, но не СЗЬ- и Fcрецепторы, участ-
42 |
Глава 3 |
■
Рис. 20. Синергизм активации протеинкиназы С (ОАГ) и увеличения [Ca2+]j (A23187) при образовании перекиси водорода.
а-А23187 (квадраты ), А23187 с 1,1 х 10 -5 М ОАГ
(светлые кружки) и А23187 с 2,3 х Ю-5 М ОАГ (темные кружки); точечная линия - результаты, полученные при низкой концентрации ОАГ, пунктирная линия-при высокой концентрации ОАГ; б-ОАГ (ромбы) и ОАГ с 10"6 М А23187 (треугольники); пунктирная линия - результаты действия с 1С"6 М А23187 [Penfield, DaleBiochem. Biophys. Res. Commun., 1984, 125, 332].
вующие в фагоцитозе и дыхательном взрыве. ПКС также активирует кальциевый насос, выкачивающий Са2 + из клетки, что способствует уменьшению цитозольного кальция и может замедлить обмен ФИФ2.
Следующим эффектом ПКС является активация системы сопряженного обмена Na+/H + , т.е. выведения наружу протонов и введения внутрь Na + , что приводит к ощелачиванию цитозоля (см. ниже). Точное значение активации ПКС при стимуляции нейтрофилов до сих пор неизвестно, и, хотя показано фосфорилирование ряда белков (31, ЗК, 40К, 50К, 55К, 64К, 70К и
90К), их природа и функция еще не совсем ясны. Возможно, что белок 31, ЗК является цитохромом В-245 компонентом НАДФНоксидазы. Протеин 40К может быть
А23187, М
липокортином, поэтому фосфорилирование этого пептидного медиатора действия глюкокортикоидов может «выключать» липокортин и способствовать его активации при повышении уровня кальция в цитоплазме, которое сопровождает активацию ПКС.
Поскольку ПКС обладает как положительной передающей, так и негативной модулирующей функциями, эффекты ингибиторов ПКС трудно поддаются интерпретации. Некоторые из них, например Н7Н9 и Cl, более активны в отношении цАМФ-зависимой киназы, которая сама по себе обладает отрицательным модулирующим действием на нейтрофилы, и менее активны в отношении ПКС. В качестве активатора ПКС обычно используется ФМА; об отрицательных свойствах
Рис. 21. Ингибиторное действие предварительной инкубации (3 мин) нейтрофилов кролика с ФМА на экзоцитоз, индуцированный 2 х Ю-9 М
ф.мет-лей-фен [Naccache и соавт.-J. Biol. |
|
Chem., 1985, 260, 2125]. |
Форбол-12-миристил-13-ацетат, нг/мл |
|
Нейтрофильные лейкоциты |
43 |
Рис. 22. Влияние предварительной инкубации (3 мин) при различных концентрациях ФМА на индуцированную ф.мет-лей-фен флюоресценцию кроличьих нейтрофилов, нагруженных Quin-2. Стрелкой показано добавление 2 х 10~9 М
ф.мет-лей-фен [Naccache и соавт.-J. Biol. Chem, 1985, 260, 2125].
ФМА как биологического зонда уже упоми- |
Транспорт натрия и изменения |
|
||||||||
налось выше. В качестве более специфичных |
внутриклеточного рН |
|
|
|||||||
ингибиторов ПКС, по крайней мере при изуче- |
Ф.мет-пептиды активируют амилоридчувстви- |
|||||||||
нии дыхательного взрыва, предложены сфин- |
||||||||||
гоидные основания. |
|
|
тельную систему сопряженного транспорта |
|||||||
Гуаниннуклеотид-регуляторный белок |
Na+/H + , которая обеспечивает вход Na и выход |
|||||||||
Н |
+ |
, что приводит к повышению внут- |
||||||||
В передаче сигнала в нейтрофилах, как пра- |
риклеточного рН с 7,2 до 7,8. Этот эффект, |
|||||||||
вило, участвует стимулирующий гуаниннук- |
вероятно, связан с активацией ПКС (см. выше). |
|||||||||
леотид-регуляторный белок (ГНРБ). Преинку- |
Изменение |
рН |
модулирует |
образование |
О2 |
|||||
бация нейтрофилов |
с коклюшным токсином |
(которое при подавлении ощелачивания |
||||||||
(который в других типах клеток дает АДФ-ри- |
снижается на 55-75%) и, по имеющимся дан- |
|||||||||
бозилирование таких белков, устраняя их ак- |
ным, может регулировать активность нейтро- |
|||||||||
тивность) приводит к ослаблению реакции |
филов, например хемотаксис. Ф.мет-лей-фен не |
|||||||||
нейтрофилов на ф.мет-лей-фен, но не влияет на |
вызывает какого-либо определимого повышения |
|||||||||
пострецепторные механизмы активации (ФМА |
проводимости Na+. |
|
|
|||||||
для протеинкиназы С и А23187 для кальция). В |
Фосфолипиды и метаболизм арахидоната |
|
||||||||
нейтрофилах ГНРБ (называемый Ср или Np) |
|
|||||||||
активирует не аденилатциклазу, а фосфолипазу |
Ряд данных свидетельствует об участии про- |
|||||||||
С. Это было показано при использовании ана- |
цесса метилирования фосфолипидов в стиму- |
|||||||||
логов ГТФ, которые активируют нейтрофилы и |
ляции передачи сигналов. Этот процесс заклю- |
|||||||||
вызывают |
распад |
полифосфоинозитидов в |
чается в ступенчатом присоединении метиль- |
|||||||
мембранах нейтрофилов. ГНРБ уменьшает за- |
ных групп к фосфатидилэтаноламину на внут- |
|||||||||
висимость |
от Са2 |
фосфолипазы С, которая |
ренней стороне плазматической мембраны. В |
|||||||
необходима для гидролиза ФИФ2, так что |
результате образуется фосфатидилхолин, ко- |
|||||||||
фермент осуществляет свою функцию при |
торый по механизму «качелей» появляется на |
|||||||||
нормальной концентрации |
внутриклеточного |
внешней стороне мембраны. Препараты, уг- |
||||||||
кальция. |
Дополнительный |
внутриклеточный |
нетающие данный процесс, подавляют и хемо- |
|||||||
ГНРБ принимает участие в экзоцитозе азуро- |
таксис, вызванный ф.мет-лей-фен. |
|
||||||||
фильных гранул. |
|
|
|
Формилированные пептиды могут усиливать |
||||||
Уже давно фториды известны как особенно |
деградацию |
метилированных |
фосфолипидов, |
|||||||
сильные стимуляторы дыхательного взрыва. |
что сопровождается накоплением лизо- |
|||||||||
(Влияние фторидов на экзоцитоз трудно оп- |
фосфатидилхолина и выделением арахидоно- |
|||||||||
ределить, поскольку они могут использоваться |
вой кислоты, в основном за счет активации |
|||||||||
лишь при крайне низких концентрациях вне- |
фосфолипазы А2. Степень активности различ- |
|||||||||
клеточного Са2 + .) Предполагают, что фториды |
ных пептидов одинакова по отношению к хе- |
|||||||||
стимулируют ГНРБ, активирующий фос- |
мотаксису |
и |
выделению арахидоната. |
Для |
||||||
фолипазу С. |
|
|
ф.мет-лей-фен ЕД50 (для последнего) состав- |
|
||||||
44 |
Глава 3 |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
ляет примерно 10"10 М, а кривая дозаэффект |
нако точная роль циклических нуклеотидов в |
|||||||||
смещается вправо при использовании специ- |
нормальном |
функционировании |
нейтрофилов |
|||||||
фических пептидных антагонистов. Мепакрин, |
пока не определена. |
|
|
|||||||
антагонист фосфолипазы А2, подавляет хемо- |
|
|
|
|
|
|||||
таксис и выделение арахидоната, причем кри- |
Влияние на плотность рецепторов |
|
||||||||
вые доза-эффект для обоих видов активности |
Инкубация нейтрофилов с ф.норлей-лей-фен |
|||||||||
практически идентичны. Следует, однако, от- |
||||||||||
метить, что мепакрин обладает и другими |
или ф.норлей-лей-фен-норлей-тир-лиз умень- |
|||||||||
эффектами на клеточном уровне. |
|
|
шает последующее связывание с теми же ме- |
|||||||
|
Какова же значимость подобных изменений |
чеными пептидами. Это обусловлено не сни- |
||||||||
фосфолипидов |
плазматической |
мембраны? |
жением аффинитета рецепторов, а уменьшением |
|||||||
Арахидоновая кислота служит субстратом для |
их |
количества. Данное |
явление, |
называемое |
||||||
синтеза лейкотриенов под действием липокси- |
«обратной регуляцией», зависит от дозы (рис. |
|||||||||
геназы, а лейкотриены оказывают глубокое |
23) и наблюдается также у пептидных |
|||||||||
влияние на нейтрофилы. Лейкотриен В4, в |
рецепторов других типов клеток. У нейтро- |
|||||||||
частности, является очень сильным хемотак- |
филов потеря рецепторов происходит очень |
|||||||||
сином и вызывает агрегацию нейтрофилов (см. |
быстро и может достигнуть плато уже через 15 |
|||||||||
главу 10). По некоторым данным, продукты |
мин. Ультраструктурные исследования других |
|||||||||
липоксигенации арахидоновой кислоты могут |
типов клеток показали, что обратная регуляция |
|||||||||
быть внутриклеточными регуляторами нейт- |
включает интернализацию комплекса ли-ганд- |
|||||||||
рофилов: 11-ОЭТЭ и 5-ОЭТЭ присутствуют в |
рецептор. Интернализация этого комплекса |
|||||||||
мембранах клеток, и их концентрация уве- |
была обнаружена и у нейтрофилов. Ис- |
|||||||||
личивается при стимуляции формилирован- |
следования с хемотаксическим пептидом, ме- |
|||||||||
ными пептидами или другими хемотаксинами. |
ченным флюоресцеином, показали, что при 4 °С |
|||||||||
Арахидоновая кислота, как было показано, |
рецепторы диффузно рассеяны по клеточной |
|||||||||
стимулирует дыхательный взрыв и деграну- |
мембране, а при 37 °С они образуют кластеры с |
|||||||||
ляцию и сама может быть внутриклеточной |
последующей |
интернализацией |
агрегатов в |
|||||||
передающей молекулой. Лизофосфатидил- |
небольших везикулах, которые затем исчезают. |
|||||||||
холин, обладающий сурфактантными способ- |
|
Возможно, существуют механизмы рас- |
||||||||
ностями, может участвовать в локальном из- |
щепления комплекса лигандрецептор с ре- |
|||||||||
менении текучести мембран, что имеет место |
циклингом рецепторов. Так, постоянное ко- |
|||||||||
при трансметилировании. При активации фос- |
личество рецепторов на мембранах устанав- |
|||||||||
фолипазы А2 |
повышается |
уровень |
фактора, |
ливается через 15 мин после начала инкубации |
||||||
активирующего |
тромбоциты |
и |
являющегося |
нейтрофилов с 10'7 М ф.норлей-лей-фен, а к 90-й |
||||||
исключительно мощным хемотаксическим ве- |
минуте количество интернализирован-ного |
|||||||||
ществом и медиатором воспалительных реакций |
пептида на 300% превышает число рецепторов, |
|||||||||
(см. главу 16). Таким образом, стимулированные |
первоначально определяемых на мембране. В |
|||||||||
нейтрофилы |
образуют |
два |
|
мощных |
исследованиях с ф.нор-лей-лей-фен-норлей-тир- |
|||||
хемогаксина-ФАТ и ЛТВ4, которые могут |
лиз |
получены |
доказательства |
|||||||
активировать другие нейтрофилы и усиливать |
протеолитического распада пептидов. При от- |
|||||||||
реакцию. |
|
|
|
|
мывании от пептидов клетка восстанавливает |
|||||
|
|
|
|
|
|
первоначальную способность к связыванию, а |
||||
Роль циклических нуклеотидов |
|
|
количество доступных рецепторов возвращается |
|||||||
Недавно было показано, что при экзоцитозе |
к нормальному уровню через 20 мин. Очевидно, |
|||||||||
белковый синтез не принимает участия ни в |
||||||||||
происходит раннее, но кратковременное по- |
обратной регуляции, ни в восстановлении, |
|||||||||
вышение уровня циклического АМФ. Концен- |
поскольку циклогексимид в концентрациях, |
|||||||||
трация цАМФ достигает своего пика в самом |
снижающих синтез белка на 92%, не влияет на |
|||||||||
начале выброса содержимого гранул и воз- |
эти процессы. |
|
|
|
||||||
вращается к исходному уровню на фоне про- |
|
Приведенные данные были получены на |
||||||||
должающейся дегрануляции. Предполагается, |
статичных клетках, находящихся в среде с рав- |
|||||||||
что увеличение цАМФ модулирует реакции |
номерной концентрацией хемотаксина. Явление |
|||||||||
нейтрофилов, в основном через протеинкиназу |
обратной регуляции и рециклинга рецепторов |
|||||||||
А. |
Вещества, |
повышающие |
уровень |
цАМФ, |
может быть важным аспектом реакции |
|||||
снижают реакции нейтрофилов (см. далее), од-
Нейтрофильные лейкоциты |
45 |
Рис. 23. Кривая доза-эффект регуляции по принципу обратной связи.
Процент потери насыщаемых рецепторов после 30- |
|
минутной инкубации при 37°С с немеченым пептидом |
|
отложен против концентрации немеченого пептида. |
|
Потеря рецептора определена как процент насыщаемого |
|
связывания 2 х 10 ~8 М ФНЛЛФ, меченного тритием, при |
|
инкубации без добавления немеченого пептида [Sullivan |
|
S.J., Zigmond S.H.-J. Cell. Biol., 1980, 85, 703]. |
ФМЛФ, М |
нейтрофилов и в градиенте хемотаксина. Как отмечалось выше, на мембранах клеток после селективного экзоцитоза секреторных гранул возрастает количество рецепторов для ф.мет- лей-фен. Вполне вероятно, что подобный процесс имеет место и при хемотаксисе. В этом случае на клетке, особенно на ее головном конце, после активации экспрессируется больше рецепторов, чем в неактивном состоянии (см. рис. 14). Показано, что специфические гранулы служат хранилищем рецепторов для ф.мет-лей-фен (и для других поверхностных лигандов, например для С3bi); количество содержащихся в них рецепторов в 30 раз превышает число рецепторов на плазматических мембранах. При движении клетки по градиенту хемотаксина поверхностные рецепторы, взаимодействующие с хемотаксинами, интернализируются, комплекс лиганд-рецептор распадается, а пептиды деградируют в азурофильных гранулах. В то же время по мере слияния мембран специфических гранул с плазматической мембраной на головном конце клетки появляются другие свободные рецепторы.
Сопряжение сигнал-активация при различных реакциях нейтрофилов
Из вышеизложенного следует, что различные реакции нейтрофилов обеспечиваются разными передаточными механизмами. На рис. 24
дана упрощенная схема взаимодействия передающих механизмов при хемотаксисе и фагоцитозе. Ключевым внутриклеточным посредником в этих процессах, вероятно, является кальций, а активация протеинкиназы С модулирует преимущественно отрицательные эффекты. «Двигатель» имеет важное значение как для хемотаксиса, так и для фагоцитоза (см. главу 18). В дополнение к активации гельзолина и киназы легкой цепи миозина, которые регулируют полимеризацию и перекрестное связывание актина, необходимо увеличение количества актина, связанного с клеточным скелетом. Как было показано, этот процесс протекает быстро при стимуляции нейтрофилов хемотаксином, таким как ф.мет-лей-фен. Установлено, что индуцированный лигандом обмен полифосфоинозитидов сам по себе служит сигналом к началу полимеризации, а ФИФ2 вызывает быструю и эффективную диссоциацию профилактина (комплекс профилин- актин-неполимеризованная форма актина) с последующей полимеризацией. Однако взаимодействие ФИФ2, кальция и гельзолина является достаточно сложным. Недавние исследования в лаборатории Stossel показали, что способность гельзолина к фрагментированию нитей актина (см. главу 18) выше при отсутствии кальция и что ФИФ2, связываясь с гельзолином, может подавлять эту способность. С другой стороны, при микромолярной концентрации кальция гельзолин связывает
46 |
Глава 3 |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
мономеры актина и в этой форме стабилизирует |
Фармакологическая регуляция |
|
||||||||
ядра, уже начавшие полимеризацию актина; |
функций нейтрофилов |
|
||||||||
однако в тех же условиях гельзолин может |
Препараты, повышающиеуровень |
|
||||||||
блокировать обмен мономеров с быстрым |
|
|||||||||
ростом «бородатых» концов нитей актина. |
циклическогоаденозинмонофосфата(цАМФ) |
|||||||||
Удаление кальция и(или) присутствие ФИФ2 |
Дибутирил цАМФ, теофиллин и другие ве- |
|||||||||
приводят к отделению актиновых мономеров от |
щества, повышающие уровень цАМФ, угнетают |
|||||||||
гельзолина, что блокирует последний эффект |
различные функции нейтрофилов, включая |
|||||||||
гельзолина |
и, |
следовательно, |
ускоряет |
хемотаксис, |
антителозависимую |
цитоток- |
||||
полимеризацию актина. |
|
|
сичность и экзоцитоз, вызванный опсонизиро- |
|||||||
Протеинкиназа С, по-видимому, является |
ванным зимозаном у нейтрофилов, обрабо- |
|||||||||
главным активатором дыхательного взрыва. Об |
танных цитохалазином В. Среди веществ, об- |
|||||||||
этом свидетельствует угнетение |
дыхательного |
ладающих этими свойствами, следует отметить |
||||||||
взрыва |
при |
|
использовании |
сфингоидных |
гистамин, простагландины Е,, Е2 и 12, а также |
|||||
оснований, селективных ингибиторов фермен- |
агонисты адренорецепторов. |
|
||||||||
тов. Однако не исключено участие двух (или |
Агонисты адренорецепторов, такие как |
|||||||||
более) метаболических путей; по имеющимся |
изопреналин, изменяют реакции нейтрофилов, |
|||||||||
данным, арахидонат также может играть здесь |
воздействуя на клетки через 0-рецеп-торы. |
|||||||||
определенную роль. |
|
|
Однако условия проведения фармакологических |
|||||||
На рис. 25 схематически представлены не- |
исследований по идентификации рецепторов не |
|||||||||
которые функциональные возможности нейт- |
всегда |
строго |
соблюдались, |
поэтому |
||||||
рофилов при реакциях клетки in vivo. |
|
полученные результаты трудновос- |
|
|||||||
Рнс. 24. Возможные взаимосвязи различных передаточных механизмов хемотаксиса.
ФХ - фосфатидилхолин; ФЭфосфатидилэтаноламин; МФЭмонометилфосфатидилэтаноламин; ФЛ - фосфолипид; ГНРБ - гуаниннуклеотид-регуляторный белок; ФИ - фосфатидилинозитол; ФИФ- фосфатидилинозитол-фосфат; ФИФ2 - фосфатидилинозитол-дифосфат; ИФ3 - инозитолтрифосфат; ДАГдиацилглицерол; ИФ4 - инозитолтетрафосфат; ФК-фосфатидиловая кислота; ФАТ-фактор активации тромбоцитов; ЛТВ4 - лейкотриен В4.
производимы. Однако исследования связывания с радиоактивным антагонистом, которые проводились после предварительной обработки нейтрофилов лизосомотропными препаратами для предупреждения распада аминов в лизосомах, указывают на возможное существование р-адренорецепторов.
Гистамин уменьшает экзоцитоз, вызванный зимозаном у нейтрофилов, стимулированных цитохалазином В; однако данные, полученные при воспроизведении в разных лабораториях, весьма вариабельны.
Простагландин Е2 вызывает дозозави-симое подавление экзоцитоза; при высокой концентрации 2,8- Ю-4 М отмечается 37% подавление. (Это контрастирует с его дйствием
Нейтрофильные лейкоциты |
47 |
на трансформацию лимфоцитов, которое наблюдается при концентрации в 10 000 раз более низкой.)
Вещества, повышающие уровень циклического
гуанозин-3,5-монофосфата (цГМФ)
Агонисты холинергических рецепторов повышают уровень цГМФ в нейтрофилах и уменьшают внеклеточную гибель клеток-мишеней, покрытых антителами. Результаты исследований связывания хиналдинилбензилата указывают на возможность существования мест связывания ацетилхолина на нейтрофилах; однако доказательства наличия холинергических рецепторовнанейтрофилахвцеломнеубедительны.
Хемотаксис |
Фагоцитоз и гибель микроорганизмов |
Взаимодействие хемотаксин - рецептор: |
Высокие концентрации хемотаксина замедляют |
локализованный гидролиз ФИФ, вызывает |
движение. Повторные взаимодействия рецепторов |
образование ИФ ,+ДАГ на головном конце клетки. |
к СЗЬ и Fc с опсонинами и микроорганизмами |
ИФ мобилизует Са2*, обусловливая вход Са2*. |
приводят ктрехмерномуэффекту «молнии», |
[Са [активирует киназу легкой цепи миозина, |
причем каждое взаимодействие вызывает |
которая стимулирует «двигатель», в результате |
местный обмен ИФ2 с образованием ИФ3и ДАТ. |
чего происходит движение клетки вперед. ДАТ |
ИФ3 мобилизует Са2*, который контролирует |
быстро удаляется ДАГ-киназой, поэтому |
"двигательпоглощающих псевдоподий, а также |
активация ПКС минимальна. Фосфорилирование |
активирует ФЛА2 генерирующую АК и |
липокортина ПКС или другой киназой: активация |
лизофосфатидилхолин. Азурофильные гранулы |
Ф/^ при повышении Са2*, вследствие чего |
сливаются с фагосомами, образуя фаголизосомы. |
происходит образование ФАТ и ЛТВ4 в переднем |
Высокий уровень [ДАТ] поддерживается |
конце клетки, что повышает градиент (для этого |
распадом ФИ при участии ФЛС. ДАТ активирует |
необходимо примирование другими цитокинами). |
ПКС, которая в синергизме с Са2* (и, возможно, с |
ПКС и Са2* обладают синергизмом при индукции |
АК) стимулирует NADPH-оксидазу. Повышенная |
повторных слияний специфических гранул с |
активность ПКС уменьшает обмен ФИФ2 и |
мембраной, что приводит к экспрессии скрытых |
снижает [Са2*]за счет активации выхода Са2*. |
хемотаксических рецепторов на переднем конце |
ПКС активирует NaVH'-противоток и |
клеток. Комплексы лиганд -рецептор |
ощелачивает фаголизосомы. Микроорганизмы |
интернализуются и расщепляются, а рецепторы |
убиваются токсическими продуктами Ог и др., а |
рециклируют. При слиянии специфических |
впоследствии перевариваются лизосомными |
гранул с плазматической мембраной |
ферментами. |
увеличивается также экспрессия рецепторов к |
|
СЗЬ и, возможно, к Fc. |
|
Рис. 25. Схема некоторых функций нейтрофилов, участвующих в первой линии защиты от микроорганизмов in vivo.
ПКВ-посткапиллярные венулы; ФИФ2-фосфатидилинозитол-дифосфат; ДАГ-диацилглицерол; ПКСпротеинкиназа С. Остальные сокращения см. на рис. 24.
48 |
Глава 3 |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
Препараты, влияющиенамикротрубочки |
|
рофилы снабжены множеством различных ре- |
|||||||||||||
Колхицин и винбластин вызывают растворение |
цепторов, которые позволяют им реагировать на |
||||||||||||||
градиент хемотаксина, распознавать бактерии и |
|||||||||||||||
микротрубочек, связываясь с тубулином и |
многие |
чужеродные |
вещества, |
взаимо- |
|||||||||||
препятствуя его полимеризации; однако |
действовать с ними. На примере взаимодействия |
||||||||||||||
окончательная |
интерпретация |
эффектов |
этих |
нейтрофилов с синтетическим пептидом ф.мет- |
|||||||||||
препаратов осложняется тем, что под их дей- |
лей-фен показано, что для реакции клетки |
||||||||||||||
ствием может нарушаться процесс мембранного |
необходимо |
участие |
стереоспецифических |
||||||||||||
транспорта. Какое же влияние на функции |
рецепторов, активация которых вызывает обмен |
||||||||||||||
нейтрофилов |
оказывают |
препараты |
данной |
полифосфоинозитидов, |
увеличение |
внут- |
|||||||||
группы? Колхицин и винбластин уменьшают |
риклеточного пула обмениваемого кальция и |
||||||||||||||
экзоцитоз, но при концентрациях, практически |
активацию протеинкиназы С. Передаточный |
||||||||||||||
элиминирующих микротрубочки, дегрануля-ция |
механизм может включать активацию фосфо- |
||||||||||||||
снижается только на 40%. Микротрубочки, по- |
липазы А2 с последующим образованием фак- |
||||||||||||||
видимому, более специфически вовлекаются в |
тора, активирующего тромбоциты, арахидо-нат |
||||||||||||||
пространственные |
органелл |
взаимоотношения |
и лейкотриен В4; возможно также участие |
||||||||||||
внутриклеточных |
и |
плазматической |
локального увеличения текучести мембраны. |
||||||||||||
мембраны. Препараты, вызывающие сборку или |
После образования комплекса лиганд-ре- |
||||||||||||||
дезагрегацию микротрубочек, могут влиять на |
цептор последний интернализируется, рецеп- |
||||||||||||||
вероятность контакта между гранулой и |
торы подвергаются рециклингу и вновь по- |
||||||||||||||
плазматической мембраной, однако ясно, что в |
являются на мембране. Одним из эффектов |
||||||||||||||
экзоцитозе принимают участие и другие |
повышения |
концентрации |
кальция |
является |
|||||||||||
факторы. Микротрубочки, по общему мнению, |
активация «мотора» - микрофиламентной сети |
||||||||||||||
участвуют в ориентации и стабилизации клеток |
актинАСБ с миозином, которая включает |
||||||||||||||
во время движения. При электронной |
активность гельзолина и стимуляцию киназы |
||||||||||||||
микроскопии |
|
клетки, |
|
обработанной |
легкой цепи миозина. Клеточная подвижность, |
||||||||||
хемотаксинами, выявляется увеличение поли- |
фагоцитоз и экзоцитоз зависят также от эле- |
||||||||||||||
меризации. Участие микротрубочек в этом |
ментов, генерирующих силовое напряжение. |
||||||||||||||
процессе до конца не ясно. Хотя в некоторых |
Микротрубочки участвуют |
в |
стабилизации |
||||||||||||
исследованиях отмечается снижение хемотак- |
клеток во время их реакции, а циклические |
||||||||||||||
сиса под действием винбластина и колхицина, в |
нуклеотиды модулируют активность нейтро- |
||||||||||||||
ряде других работ обнаруживается лишь слабый |
филов. Однако доказательства существования |
||||||||||||||
эффект этих препаратов. Прямое наблюдение |
специфических рецепторов для фармпрепаратов, |
||||||||||||||
показало, что после обработки указанными |
обычно |
вызывающих |
изменения |
уровня |
|||||||||||
препаратами |
движение |
нейтрофилов |
по |
циклических нуклеотидов, весьма неоднознач- |
|||||||||||
градиенту |
хемотаксина напоминает |
прогулку |
ны. Нейтрофилы обладают запасом гликогена и |
||||||||||||
пьяного. |
|
|
|
|
|
|
|
получают энергию главным образом при |
|||||||
|
Не менее противоречивые данные получены |
метаболизме углеводов. Фагоцитоз и индукция |
|||||||||||||
при изучении влияния колхицина на индукцию |
внеклеточной гибели сопровождаются увели- |
||||||||||||||
внеклеточной гибели: отсутствие эффекта в |
чением потребления кислорода с образованием |
||||||||||||||
одном исследовании и 50% подавление-в |
перекисей и других токсических продуктов |
||||||||||||||
другом. |
|
|
|
|
|
|
|
кислорода; те же эффекты наблюдаются при |
|||||||
Заключение |
|
|
|
|
|
|
других видах активации нейтрофилов. |
|
|||||||
|
|
|
|
|
|
Список литературы |
|
|
|
|
|||||
Нейтрофил-конечная клетка, неспособная к |
|
|
|
|
|||||||||||
Berridge M.J. & |
Irvine R.F. (1984) |
Inositol trisphosphate, |
|||||||||||||
делению, |
с |
ограниченными |
возможностями |
a novel second messenger in cellular signal transduction. |
|||||||||||
синтеза белка; тем не менее диапазон ее реакций |
Nature 312, 315. K/ebanoffM.J. & Clark R.A. (1978) The |
||||||||||||||
Neutrophil: Function |
|
|
|
|
|||||||||||
весьма широк и включает хемотаксис, |
and Clincia/ Disorders. North Holland, Amsterdam. |
||||||||||||||
фагоцитоз, экзоцитоз, индукцию как внутри- |
Nishizuka Y. |
(1984) The role of protein |
kinase С in cell |
||||||||||||
клеточной, |
так |
и внеклеточной гибели. В |
surface signal transduction and human promotion. Nature |
||||||||||||
нейтрофилах имеется по крайней мере два типа |
308, 693. Snyderman R. (1984) Contemporary |
Topics in |
|||||||||||||
Immunology, |
|
|
|
|
|
|
|||||||||
гранул, содержимое которых обладает микро- |
vol. 14. Academic Press, London. Wilkinson P. С (1982) |
||||||||||||||
бицидной активностью и оказывает действие на |
Chemotaxis and Inflammation, 2nd ed. |
|
|
|
|||||||||||
другие клетки и компоненты тканей. Нейт- |
|
Churchill-Livingstone, Edinburgh. |
|
|
|||||||||||
4 Тромбоциты
Дж. К. Формен (J. С. Foreman)
Целью данной главы является краткая характеристика структуры, стимулов, биохимии и фармакологии тромбоцитов с учетом их возможной роли в воспалительной реакции. Отдельная глава (см. главу 16) будет посвящена медиатору, известному как фактор активации тромбоцитов.
Представления о роли тромбоцитов в воспалении или других иммунных реакциях весьма противоречивы. Участие тромбоцитов в подобных реакциях не вызывает особых сомнений; вопрос заключается в определении их значимости и пользы либо в констатации отсутствия какого-либо их вклада в эти процессы. Утверждается, что устранение тромбоцитов не изменяет воспалительных реакций, однако это не означает обязательного отсутствия активной и функциональной роли тромбоцитов в таких процессах. Из последующих глав станет очевидным, что воспаление-это многокомпонентный процесс с множеством альтернативных и перекрещивающихся связей. Следовательно, выпадение какого-то одного компонента может не повлиять на исход процесса, поскольку выпавший компонент нередко замещается. В дополнение к этому следует сказать, что тромбоциты активируются множеством различных стимулов, что объединяет их с тучными клетками и нейтрофилами; более того, они выделяют значительное количество медиаторов воспаления с широким спектром действия. Все это чрезвычайно усложняет задачу определения истинного участия тромбоцитов в иммунных и воспалительных реакциях.
Структура тромбоцитов
Тромбоциты ввиду отсутствия в них ядра не могут быть определенно отнесены к клеткам. Они являются фрагментами больших мегакариоцитов костного мозга и обнаруживаются в циркулирующей крови, а не в тканях (за исключением патологических состояний). Продолжительность жизни тромбоцитов в циркуляции составляет 8-14 дней; в 1 мкл
крови содержится 105 - 5*106 тромбоцитов. Из одного мегакариоцита образуется 3000-4000 тромбоцитов; их продукция, по-видимому, контролируется тромбопоэтином, гуморальным фактором печени или почек.
Интактный тромбоцит имеет вид диска диаметром 0,75-2,25 мкм. Несмотря на отсутствие ядра цитоплазма содержит некоторое количество РНК, поэтому тромбоциты способны к ограниченному белковому синтезу. Мембрана, окружающая цитоплазму, состоит из двух слоев фосфолипидов, между которыми располагаются белки (трехслойная структура, типичная для клеток-эукариотов). Внешняя поверхность мембраны покрыта аморфным слоем толщиной 20 нм, который состоит из белков и сульфатированных протеогликанов. Функциональное значение аморфного слоя определяется тем, что среди всех прочих веществ в нем содержатся факторы свертывания.
В результате инвагинации поверхностной мембраны в цитоплазме образуется сложная система канальцев, которые сообщаются с поверхностью тромбоцита. Возможно, что вещества, выделяемые гранулами тромбоцитов, сначала попадают в эту систему канальцев и лишь затем окончательно высвобождаются во внешнюю среду. С системой канальцев, сообщающихся с поверхностью, тесно связана плотная тубулярная система. Подобно саркоплазматическому ретикулуму мышц, плотная тубулярная система может участвовать в секвестрации и хранении кальция в тромбоцитах.
Значительная часть цитоплазмы тромбоцита заполнена гранулами, которые разделяют на три основных типа: 1) плотные гранулы; 2) а- гранулы; 3) гранулы, содержащие кислые гидролазы.
Кроме того, цитоплазма содержит некоторое количество гранул гликогена и немного митохондрий.
Плотные гранулы
Эти гранулы содержат АТФ, АДФ, пирофосфат, бивалентный катион (кальций либо маг-
49
