Скачиваний:
88
Добавлен:
28.12.2013
Размер:
6.02 Mб
Скачать

40

Глава 3

А

Б

В

Рис. 18. Распределение кальция в покоящихся и активированных клетках.

Числа в полосе обозначают наномолярные концентрации [Ca2 + ]j. А-нестимулированная клетка. [Ca2 + ]j в теле клетки составляет 74 нм, в ламеллоподии69 нм (п = 17). Б-нейтрофил, мигрирующий к опсонизированной частице зимозана (стрелка). [Са2 + ]( в теле клетки108 нм, в ламеллоподии146 нм (п = 12). В-нейтрофил, фагоцитирующий опсонизированную частицу зимозана. [Ca2 + ]i в теле клетки106 нм, в псевдоподийной области161 нм (п = 31). Ламеллоподии определен как передняя треть клетки, тело-как ее средняя треть, а область псевдоподия-как часть (клетки), окружающая опсонизированную частицу. (Адаптированный рис. 1 из работы Slawier и соавт. Science, 1985, 230, 663, где измерение Са2+ определено по кальцийзависимой флюоресценции клеток, меченных Quin-2.)

Рис. 19. Влияние ИФ3 на выделение Са2+ проницаемыми

 

 

клетками [Prentki и соавт.,-J. Biol. Chem., 1984, 259, 1377].

ИФ3, мкМ

 

 

 

клетки к микроорганизму и при его после-

непосредственно перед началом процесса и

дующем фагоцитозе отмечается весьма четко

тесно коррелирует с клеточной реакцией (см.

локализованное повышение концентрации ци-

рис. 17). Однако в отсутствие внеклеточного

тозольного

кальция в переднем конце клетки

кальция реакция не определяется, что свиде-

(рис. 18). Такое повышение происходит двумя

тельствует о необходимости повышения кле-

путями. Первоначальная фаза роста обеспе-

точной проницаемости для кальция при дегра-

чивается

мобилизацией

внутриклеточного

нуляции. Увеличение кальциевой проницаемос-

кальция, выходящего из немитохондриального

ти происходит после образования ИФ3. Окон-

депо под действием ИФ3, образующегося из

чательная мобилизация

внутреннего кальция

ФИФ2 (см. выше и рис. 19). ИФ3 синтезируется

также определяется ИФ3.

Показано, что на-

чальныи подъем цитозольного кальция определяется кальциевым каналом плазматической мембраны. В этом процессе принимают участие инозитолтетрафосфат (ИФ4), производное ИФ3. Местное увеличение цитозольного кальция обычно необходимо для активации «двигателя». Повышение концентрации кальция активирует гельзолинактинфрагментирующий белок, вызывающий местные изменения соотношения геля и золя. Необходимо также участие в этом процессе кальмодулина, который активирует киназу легкой цепи миозина, фосфорилирующую миозин. Миозин взаимодействует с F-сетью актина, образуя главный силовой элемент клетки (см. главу 18). К другим эффектам кальция в клетке относятся активация фосфолипазы А2 (см. ниже) и, возможно, активация кальцийзависимой фосфолипазы С, гидролизирующей фосфатидилинозитол и монофосфат фосфатидилинозитола с образованием ДАГ (но не ИФ3).

Увеличение концентрации кальция в цитозоле служит необходимым и достаточным стимулом для экзоцитоза и, возможно, для хемотаксиса и фагоцитоза (хотя частицы, опсонизированные С3bi, могут фагоцитироваться независимо от изменений [Са2+]), но не для дыхательного взрыва, для которого главным передаточным механизмом является активация протеинкиназы С.

Роль протеинкиназы С

Протеинкиназа С- это фермент, активируемый кальцием. Он обычно присутствует в цитозоле, но при активации клетки связывается с мембранными фосфолипидами, например с фосфатидилсерином. ДАГ повышает аффинитет протеинкиназы С к кальцию, поэтому он становится активным уже при нормальной концентрации кальция в клетке. Экспериментально показано, что даже при поразительно низких концентрациях внутриклеточного кальция активация протеинкиназы С (ПКС) служит мощным стимулом для дыхательного взрыва.

ПКС фосфорилирует цитохром В-245 одиг из самых

компонентов НАДФН-оксидазы. Следует, однако, отметить, что в большинстве экспериментов, показавших влияние ПКС на дыхательный взрыв, применялись неприродные соединения, например ФМА. ФМА, относящийся к соединениям с высокой жирорастворимостью, очень медленно метаболизируется в клетке; результаты, полученные при использовании ФМА, могут никак не соотноситься с данными

Нейтрофильные лейкоциты

41

in vivo, так как естественный активатор протеинкиназы С (ДАГ) очень быстро метаболизируется в клетке и, следовательно, доступен лишь при низких концентрациях, локально и только после стимуляции рецепторов. При хемотаксисе, вызванном растворимыми хемотаксинами, ДАГ синтезируется при распаде ФИФ2 и может присутствовать в клетке лишь непродолжительное время. Для дыхательного взрыва, стимулом для которого in vivo является фагоцитоз, необходимо более длительное присутствие ДАГ, поэтому в последующем может иметь место гидролиз фосфатидилинозитола с участием кальцийзависимой фосфолипазы С.

Nishizuka (1984) предположил, что синергизм между кальцием и протеинкиназой С должен иметь большое значение для клеточных реакций. Такой синергизм показан у ней-трофилов при использовании синтетического диацилглицерола (1-олеоил-2-ацетоглицерол, ОАГ) для стимуляции протеинкиназы С и нонофора двухвалентных ионов А23187 с целью

повышения концентрации кальция в цитозоле. ОАГ быстро метаболизируется в клетке теми же ферментами, что и ДАГ, поэтому он считается более физиологичным стимулятором. Подпороговые концентрации ОАГ действуют синергично с А23187, вызывая дозозависимый сдвиг влево кривой «концентрация - эффект» для А23187 в отношении образования OJ, а также выраженное увеличение максимального ответа (рис. 20, а). Аналогично этому, низкая концентрация А23187 усиливает эффект ОАГ

(рис. 20, б).

Протеинкиназа С оказывает комплексное влияние на передачу сигнала. Как и в других клетках, этот фермент является разнонаправленным регулятором некоторых процессов. Так, если активаторы протеинкиназы С си-нергичны с рецепторными стимуляторами дыхательного взрыва, то они же подавляют ре-цепторную стимуляцию дегрануляции (рис. 21), вызванную ф.мет-лей-фен и ЛТВ4, а также стимуляцию хемотаксиса под действием С5а. Подавление сопровождается снижением содержания кальция

вцитозоле (рис. 22) и, вероятно, происходит на уровне рецептора или ассоциированного с ним белка G, поскольку А23187 и подобные ему агенты, вызывающие повышение [Са2 + ]; в обход рецепторов, проявляют синергизм с ФМА

вотношении экзоцитоза. Подавление, повидимому, затрагивает лишь рецепторы к растворимым хемо-таксинам, но не СЗЬ- и Fcрецепторы, участ-

42

Глава 3

Рис. 20. Синергизм активации протеинкиназы С (ОАГ) и увеличения [Ca2+]j (A23187) при образовании перекиси водорода.

а-А23187 (квадраты ), А23187 с 1,1 х 10 -5 М ОАГ

(светлые кружки) и А23187 с 2,3 х Ю-5 М ОАГ (темные кружки); точечная линия - результаты, полученные при низкой концентрации ОАГ, пунктирная линия-при высокой концентрации ОАГ; б-ОАГ (ромбы) и ОАГ с 10"6 М А23187 (треугольники); пунктирная линия - результаты действия с 1С"6 М А23187 [Penfield, DaleBiochem. Biophys. Res. Commun., 1984, 125, 332].

вующие в фагоцитозе и дыхательном взрыве. ПКС также активирует кальциевый насос, выкачивающий Са2 + из клетки, что способствует уменьшению цитозольного кальция и может замедлить обмен ФИФ2.

Следующим эффектом ПКС является активация системы сопряженного обмена Na+/H + , т.е. выведения наружу протонов и введения внутрь Na + , что приводит к ощелачиванию цитозоля (см. ниже). Точное значение активации ПКС при стимуляции нейтрофилов до сих пор неизвестно, и, хотя показано фосфорилирование ряда белков (31, ЗК, 40К, 50К, 55К, 64К, 70К и

90К), их природа и функция еще не совсем ясны. Возможно, что белок 31, ЗК является цитохромом В-245 компонентом НАДФНоксидазы. Протеин 40К может быть

А23187, М

липокортином, поэтому фосфорилирование этого пептидного медиатора действия глюкокортикоидов может «выключать» липокортин и способствовать его активации при повышении уровня кальция в цитоплазме, которое сопровождает активацию ПКС.

Поскольку ПКС обладает как положительной передающей, так и негативной модулирующей функциями, эффекты ингибиторов ПКС трудно поддаются интерпретации. Некоторые из них, например Н7Н9 и Cl, более активны в отношении цАМФ-зависимой киназы, которая сама по себе обладает отрицательным модулирующим действием на нейтрофилы, и менее активны в отношении ПКС. В качестве активатора ПКС обычно используется ФМА; об отрицательных свойствах

Рис. 21. Ингибиторное действие предварительной инкубации (3 мин) нейтрофилов кролика с ФМА на экзоцитоз, индуцированный 2 х Ю-9 М

ф.мет-лей-фен [Naccache и соавт.-J. Biol.

 

Chem., 1985, 260, 2125].

Форбол-12-миристил-13-ацетат, нг/мл

 

Нейтрофильные лейкоциты

43

Рис. 22. Влияние предварительной инкубации (3 мин) при различных концентрациях ФМА на индуцированную ф.мет-лей-фен флюоресценцию кроличьих нейтрофилов, нагруженных Quin-2. Стрелкой показано добавление 2 х 10~9 М

ф.мет-лей-фен [Naccache и соавт.-J. Biol. Chem, 1985, 260, 2125].

ФМА как биологического зонда уже упоми-

Транспорт натрия и изменения

 

налось выше. В качестве более специфичных

внутриклеточного рН

 

 

ингибиторов ПКС, по крайней мере при изуче-

Ф.мет-пептиды активируют амилоридчувстви-

нии дыхательного взрыва, предложены сфин-

гоидные основания.

 

 

тельную систему сопряженного транспорта

Гуаниннуклеотид-регуляторный белок

Na+/H + , которая обеспечивает вход Na и выход

Н

+

, что приводит к повышению внут-

В передаче сигнала в нейтрофилах, как пра-

риклеточного рН с 7,2 до 7,8. Этот эффект,

вило, участвует стимулирующий гуаниннук-

вероятно, связан с активацией ПКС (см. выше).

леотид-регуляторный белок (ГНРБ). Преинку-

Изменение

рН

модулирует

образование

О2

бация нейтрофилов

с коклюшным токсином

(которое при подавлении ощелачивания

(который в других типах клеток дает АДФ-ри-

снижается на 55-75%) и, по имеющимся дан-

бозилирование таких белков, устраняя их ак-

ным, может регулировать активность нейтро-

тивность) приводит к ослаблению реакции

филов, например хемотаксис. Ф.мет-лей-фен не

нейтрофилов на ф.мет-лей-фен, но не влияет на

вызывает какого-либо определимого повышения

пострецепторные механизмы активации (ФМА

проводимости Na+.

 

 

для протеинкиназы С и А23187 для кальция). В

Фосфолипиды и метаболизм арахидоната

 

нейтрофилах ГНРБ (называемый Ср или Np)

 

активирует не аденилатциклазу, а фосфолипазу

Ряд данных свидетельствует об участии про-

С. Это было показано при использовании ана-

цесса метилирования фосфолипидов в стиму-

логов ГТФ, которые активируют нейтрофилы и

ляции передачи сигналов. Этот процесс заклю-

вызывают

распад

полифосфоинозитидов в

чается в ступенчатом присоединении метиль-

мембранах нейтрофилов. ГНРБ уменьшает за-

ных групп к фосфатидилэтаноламину на внут-

висимость

от Са2

фосфолипазы С, которая

ренней стороне плазматической мембраны. В

необходима для гидролиза ФИФ2, так что

результате образуется фосфатидилхолин, ко-

фермент осуществляет свою функцию при

торый по механизму «качелей» появляется на

нормальной концентрации

внутриклеточного

внешней стороне мембраны. Препараты, уг-

кальция.

Дополнительный

внутриклеточный

нетающие данный процесс, подавляют и хемо-

ГНРБ принимает участие в экзоцитозе азуро-

таксис, вызванный ф.мет-лей-фен.

 

фильных гранул.

 

 

 

Формилированные пептиды могут усиливать

Уже давно фториды известны как особенно

деградацию

метилированных

фосфолипидов,

сильные стимуляторы дыхательного взрыва.

что сопровождается накоплением лизо-

(Влияние фторидов на экзоцитоз трудно оп-

фосфатидилхолина и выделением арахидоно-

ределить, поскольку они могут использоваться

вой кислоты, в основном за счет активации

лишь при крайне низких концентрациях вне-

фосфолипазы А2. Степень активности различ-

клеточного Са2 + .) Предполагают, что фториды

ных пептидов одинакова по отношению к хе-

стимулируют ГНРБ, активирующий фос-

мотаксису

и

выделению арахидоната.

Для

фолипазу С.

 

 

ф.мет-лей-фен ЕД50 (для последнего) состав-

 

44

Глава 3

 

 

 

 

 

 

 

 

 

ляет примерно 10"10 М, а кривая дозаэффект

нако точная роль циклических нуклеотидов в

смещается вправо при использовании специ-

нормальном

функционировании

нейтрофилов

фических пептидных антагонистов. Мепакрин,

пока не определена.

 

 

антагонист фосфолипазы А2, подавляет хемо-

 

 

 

 

 

таксис и выделение арахидоната, причем кри-

Влияние на плотность рецепторов

 

вые доза-эффект для обоих видов активности

Инкубация нейтрофилов с ф.норлей-лей-фен

практически идентичны. Следует, однако, от-

метить, что мепакрин обладает и другими

или ф.норлей-лей-фен-норлей-тир-лиз умень-

эффектами на клеточном уровне.

 

 

шает последующее связывание с теми же ме-

 

Какова же значимость подобных изменений

чеными пептидами. Это обусловлено не сни-

фосфолипидов

плазматической

мембраны?

жением аффинитета рецепторов, а уменьшением

Арахидоновая кислота служит субстратом для

их

количества. Данное

явление,

называемое

синтеза лейкотриенов под действием липокси-

«обратной регуляцией», зависит от дозы (рис.

геназы, а лейкотриены оказывают глубокое

23) и наблюдается также у пептидных

влияние на нейтрофилы. Лейкотриен В4, в

рецепторов других типов клеток. У нейтро-

частности, является очень сильным хемотак-

филов потеря рецепторов происходит очень

сином и вызывает агрегацию нейтрофилов (см.

быстро и может достигнуть плато уже через 15

главу 10). По некоторым данным, продукты

мин. Ультраструктурные исследования других

липоксигенации арахидоновой кислоты могут

типов клеток показали, что обратная регуляция

быть внутриклеточными регуляторами нейт-

включает интернализацию комплекса ли-ганд-

рофилов: 11-ОЭТЭ и 5-ОЭТЭ присутствуют в

рецептор. Интернализация этого комплекса

мембранах клеток, и их концентрация уве-

была обнаружена и у нейтрофилов. Ис-

личивается при стимуляции формилирован-

следования с хемотаксическим пептидом, ме-

ными пептидами или другими хемотаксинами.

ченным флюоресцеином, показали, что при 4 °С

Арахидоновая кислота, как было показано,

рецепторы диффузно рассеяны по клеточной

стимулирует дыхательный взрыв и деграну-

мембране, а при 37 °С они образуют кластеры с

ляцию и сама может быть внутриклеточной

последующей

интернализацией

агрегатов в

передающей молекулой. Лизофосфатидил-

небольших везикулах, которые затем исчезают.

холин, обладающий сурфактантными способ-

 

Возможно, существуют механизмы рас-

ностями, может участвовать в локальном из-

щепления комплекса лигандрецептор с ре-

менении текучести мембран, что имеет место

циклингом рецепторов. Так, постоянное ко-

при трансметилировании. При активации фос-

личество рецепторов на мембранах устанав-

фолипазы А2

повышается

уровень

фактора,

ливается через 15 мин после начала инкубации

активирующего

тромбоциты

и

являющегося

нейтрофилов с 10'7 М ф.норлей-лей-фен, а к 90-й

исключительно мощным хемотаксическим ве-

минуте количество интернализирован-ного

ществом и медиатором воспалительных реакций

пептида на 300% превышает число рецепторов,

(см. главу 16). Таким образом, стимулированные

первоначально определяемых на мембране. В

нейтрофилы

образуют

два

 

мощных

исследованиях с ф.нор-лей-лей-фен-норлей-тир-

хемогаксина-ФАТ и ЛТВ4, которые могут

лиз

получены

доказательства

активировать другие нейтрофилы и усиливать

протеолитического распада пептидов. При от-

реакцию.

 

 

 

 

мывании от пептидов клетка восстанавливает

 

 

 

 

 

 

первоначальную способность к связыванию, а

Роль циклических нуклеотидов

 

 

количество доступных рецепторов возвращается

Недавно было показано, что при экзоцитозе

к нормальному уровню через 20 мин. Очевидно,

белковый синтез не принимает участия ни в

происходит раннее, но кратковременное по-

обратной регуляции, ни в восстановлении,

вышение уровня циклического АМФ. Концен-

поскольку циклогексимид в концентрациях,

трация цАМФ достигает своего пика в самом

снижающих синтез белка на 92%, не влияет на

начале выброса содержимого гранул и воз-

эти процессы.

 

 

 

вращается к исходному уровню на фоне про-

 

Приведенные данные были получены на

должающейся дегрануляции. Предполагается,

статичных клетках, находящихся в среде с рав-

что увеличение цАМФ модулирует реакции

номерной концентрацией хемотаксина. Явление

нейтрофилов, в основном через протеинкиназу

обратной регуляции и рециклинга рецепторов

А.

Вещества,

повышающие

уровень

цАМФ,

может быть важным аспектом реакции

снижают реакции нейтрофилов (см. далее), од-

Нейтрофильные лейкоциты

45

Рис. 23. Кривая доза-эффект регуляции по принципу обратной связи.

Процент потери насыщаемых рецепторов после 30-

 

минутной инкубации при 37°С с немеченым пептидом

 

отложен против концентрации немеченого пептида.

 

Потеря рецептора определена как процент насыщаемого

 

связывания 2 х 10 ~8 М ФНЛЛФ, меченного тритием, при

 

инкубации без добавления немеченого пептида [Sullivan

 

S.J., Zigmond S.H.-J. Cell. Biol., 1980, 85, 703].

ФМЛФ, М

нейтрофилов и в градиенте хемотаксина. Как отмечалось выше, на мембранах клеток после селективного экзоцитоза секреторных гранул возрастает количество рецепторов для ф.мет- лей-фен. Вполне вероятно, что подобный процесс имеет место и при хемотаксисе. В этом случае на клетке, особенно на ее головном конце, после активации экспрессируется больше рецепторов, чем в неактивном состоянии (см. рис. 14). Показано, что специфические гранулы служат хранилищем рецепторов для ф.мет-лей-фен (и для других поверхностных лигандов, например для С3bi); количество содержащихся в них рецепторов в 30 раз превышает число рецепторов на плазматических мембранах. При движении клетки по градиенту хемотаксина поверхностные рецепторы, взаимодействующие с хемотаксинами, интернализируются, комплекс лиганд-рецептор распадается, а пептиды деградируют в азурофильных гранулах. В то же время по мере слияния мембран специфических гранул с плазматической мембраной на головном конце клетки появляются другие свободные рецепторы.

Сопряжение сигнал-активация при различных реакциях нейтрофилов

Из вышеизложенного следует, что различные реакции нейтрофилов обеспечиваются разными передаточными механизмами. На рис. 24

дана упрощенная схема взаимодействия передающих механизмов при хемотаксисе и фагоцитозе. Ключевым внутриклеточным посредником в этих процессах, вероятно, является кальций, а активация протеинкиназы С модулирует преимущественно отрицательные эффекты. «Двигатель» имеет важное значение как для хемотаксиса, так и для фагоцитоза (см. главу 18). В дополнение к активации гельзолина и киназы легкой цепи миозина, которые регулируют полимеризацию и перекрестное связывание актина, необходимо увеличение количества актина, связанного с клеточным скелетом. Как было показано, этот процесс протекает быстро при стимуляции нейтрофилов хемотаксином, таким как ф.мет-лей-фен. Установлено, что индуцированный лигандом обмен полифосфоинозитидов сам по себе служит сигналом к началу полимеризации, а ФИФ2 вызывает быструю и эффективную диссоциацию профилактина (комплекс профилин- актин-неполимеризованная форма актина) с последующей полимеризацией. Однако взаимодействие ФИФ2, кальция и гельзолина является достаточно сложным. Недавние исследования в лаборатории Stossel показали, что способность гельзолина к фрагментированию нитей актина (см. главу 18) выше при отсутствии кальция и что ФИФ2, связываясь с гельзолином, может подавлять эту способность. С другой стороны, при микромолярной концентрации кальция гельзолин связывает

46

Глава 3

 

 

 

 

 

 

 

 

мономеры актина и в этой форме стабилизирует

Фармакологическая регуляция

 

ядра, уже начавшие полимеризацию актина;

функций нейтрофилов

 

однако в тех же условиях гельзолин может

Препараты, повышающиеуровень

 

блокировать обмен мономеров с быстрым

 

ростом «бородатых» концов нитей актина.

циклическогоаденозинмонофосфата(цАМФ)

Удаление кальция и(или) присутствие ФИФ2

Дибутирил цАМФ, теофиллин и другие ве-

приводят к отделению актиновых мономеров от

щества, повышающие уровень цАМФ, угнетают

гельзолина, что блокирует последний эффект

различные функции нейтрофилов, включая

гельзолина

и,

следовательно,

ускоряет

хемотаксис,

антителозависимую

цитоток-

полимеризацию актина.

 

 

сичность и экзоцитоз, вызванный опсонизиро-

Протеинкиназа С, по-видимому, является

ванным зимозаном у нейтрофилов, обрабо-

главным активатором дыхательного взрыва. Об

танных цитохалазином В. Среди веществ, об-

этом свидетельствует угнетение

дыхательного

ладающих этими свойствами, следует отметить

взрыва

при

 

использовании

сфингоидных

гистамин, простагландины Е,, Е2 и 12, а также

оснований, селективных ингибиторов фермен-

агонисты адренорецепторов.

 

тов. Однако не исключено участие двух (или

Агонисты адренорецепторов, такие как

более) метаболических путей; по имеющимся

изопреналин, изменяют реакции нейтрофилов,

данным, арахидонат также может играть здесь

воздействуя на клетки через 0-рецеп-торы.

определенную роль.

 

 

Однако условия проведения фармакологических

На рис. 25 схематически представлены не-

исследований по идентификации рецепторов не

которые функциональные возможности нейт-

всегда

строго

соблюдались,

поэтому

рофилов при реакциях клетки in vivo.

 

полученные результаты трудновос-

 

Рнс. 24. Возможные взаимосвязи различных передаточных механизмов хемотаксиса.

ФХ - фосфатидилхолин; ФЭфосфатидилэтаноламин; МФЭмонометилфосфатидилэтаноламин; ФЛ - фосфолипид; ГНРБ - гуаниннуклеотид-регуляторный белок; ФИ - фосфатидилинозитол; ФИФ- фосфатидилинозитол-фосфат; ФИФ2 - фосфатидилинозитол-дифосфат; ИФ3 - инозитолтрифосфат; ДАГдиацилглицерол; ИФ4 - инозитолтетрафосфат; ФК-фосфатидиловая кислота; ФАТ-фактор активации тромбоцитов; ЛТВ4 - лейкотриен В4.

производимы. Однако исследования связывания с радиоактивным антагонистом, которые проводились после предварительной обработки нейтрофилов лизосомотропными препаратами для предупреждения распада аминов в лизосомах, указывают на возможное существование р-адренорецепторов.

Гистамин уменьшает экзоцитоз, вызванный зимозаном у нейтрофилов, стимулированных цитохалазином В; однако данные, полученные при воспроизведении в разных лабораториях, весьма вариабельны.

Простагландин Е2 вызывает дозозави-симое подавление экзоцитоза; при высокой концентрации 2,8- Ю-4 М отмечается 37% подавление. (Это контрастирует с его дйствием

Нейтрофильные лейкоциты

47

на трансформацию лимфоцитов, которое наблюдается при концентрации в 10 000 раз более низкой.)

Вещества, повышающие уровень циклического

гуанозин-3,5-монофосфата (цГМФ)

Агонисты холинергических рецепторов повышают уровень цГМФ в нейтрофилах и уменьшают внеклеточную гибель клеток-мишеней, покрытых антителами. Результаты исследований связывания хиналдинилбензилата указывают на возможность существования мест связывания ацетилхолина на нейтрофилах; однако доказательства наличия холинергических рецепторовнанейтрофилахвцеломнеубедительны.

Хемотаксис

Фагоцитоз и гибель микроорганизмов

Взаимодействие хемотаксин - рецептор:

Высокие концентрации хемотаксина замедляют

локализованный гидролиз ФИФ, вызывает

движение. Повторные взаимодействия рецепторов

образование ИФ ,+ДАГ на головном конце клетки.

к СЗЬ и Fc с опсонинами и микроорганизмами

ИФ мобилизует Са2*, обусловливая вход Са2*.

приводят ктрехмерномуэффекту «молнии»,

[Са [активирует киназу легкой цепи миозина,

причем каждое взаимодействие вызывает

которая стимулирует «двигатель», в результате

местный обмен ИФ2 с образованием ИФ3и ДАТ.

чего происходит движение клетки вперед. ДАТ

ИФ3 мобилизует Са2*, который контролирует

быстро удаляется ДАГ-киназой, поэтому

"двигательпоглощающих псевдоподий, а также

активация ПКС минимальна. Фосфорилирование

активирует ФЛА2 генерирующую АК и

липокортина ПКС или другой киназой: активация

лизофосфатидилхолин. Азурофильные гранулы

Ф/^ при повышении Са2*, вследствие чего

сливаются с фагосомами, образуя фаголизосомы.

происходит образование ФАТ и ЛТВ4 в переднем

Высокий уровень [ДАТ] поддерживается

конце клетки, что повышает градиент (для этого

распадом ФИ при участии ФЛС. ДАТ активирует

необходимо примирование другими цитокинами).

ПКС, которая в синергизме с Са2* (и, возможно, с

ПКС и Са2* обладают синергизмом при индукции

АК) стимулирует NADPH-оксидазу. Повышенная

повторных слияний специфических гранул с

активность ПКС уменьшает обмен ФИФ2 и

мембраной, что приводит к экспрессии скрытых

снижает [Са2*]за счет активации выхода Са2*.

хемотаксических рецепторов на переднем конце

ПКС активирует NaVH'-противоток и

клеток. Комплексы лиганд -рецептор

ощелачивает фаголизосомы. Микроорганизмы

интернализуются и расщепляются, а рецепторы

убиваются токсическими продуктами Ог и др., а

рециклируют. При слиянии специфических

впоследствии перевариваются лизосомными

гранул с плазматической мембраной

ферментами.

увеличивается также экспрессия рецепторов к

 

СЗЬ и, возможно, к Fc.

 

Рис. 25. Схема некоторых функций нейтрофилов, участвующих в первой линии защиты от микроорганизмов in vivo.

ПКВ-посткапиллярные венулы; ФИФ2-фосфатидилинозитол-дифосфат; ДАГ-диацилглицерол; ПКСпротеинкиназа С. Остальные сокращения см. на рис. 24.

48

Глава 3

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Препараты, влияющиенамикротрубочки

 

рофилы снабжены множеством различных ре-

Колхицин и винбластин вызывают растворение

цепторов, которые позволяют им реагировать на

градиент хемотаксина, распознавать бактерии и

микротрубочек, связываясь с тубулином и

многие

чужеродные

вещества,

взаимо-

препятствуя его полимеризации; однако

действовать с ними. На примере взаимодействия

окончательная

интерпретация

эффектов

этих

нейтрофилов с синтетическим пептидом ф.мет-

препаратов осложняется тем, что под их дей-

лей-фен показано, что для реакции клетки

ствием может нарушаться процесс мембранного

необходимо

участие

стереоспецифических

транспорта. Какое же влияние на функции

рецепторов, активация которых вызывает обмен

нейтрофилов

оказывают

препараты

данной

полифосфоинозитидов,

увеличение

внут-

группы? Колхицин и винбластин уменьшают

риклеточного пула обмениваемого кальция и

экзоцитоз, но при концентрациях, практически

активацию протеинкиназы С. Передаточный

элиминирующих микротрубочки, дегрануля-ция

механизм может включать активацию фосфо-

снижается только на 40%. Микротрубочки, по-

липазы А2 с последующим образованием фак-

видимому, более специфически вовлекаются в

тора, активирующего тромбоциты, арахидо-нат

пространственные

органелл

взаимоотношения

и лейкотриен В4; возможно также участие

внутриклеточных

и

плазматической

локального увеличения текучести мембраны.

мембраны. Препараты, вызывающие сборку или

После образования комплекса лиганд-ре-

дезагрегацию микротрубочек, могут влиять на

цептор последний интернализируется, рецеп-

вероятность контакта между гранулой и

торы подвергаются рециклингу и вновь по-

плазматической мембраной, однако ясно, что в

являются на мембране. Одним из эффектов

экзоцитозе принимают участие и другие

повышения

концентрации

кальция

является

факторы. Микротрубочки, по общему мнению,

активация «мотора» - микрофиламентной сети

участвуют в ориентации и стабилизации клеток

актинАСБ с миозином, которая включает

во время движения. При электронной

активность гельзолина и стимуляцию киназы

микроскопии

 

клетки,

 

обработанной

легкой цепи миозина. Клеточная подвижность,

хемотаксинами, выявляется увеличение поли-

фагоцитоз и экзоцитоз зависят также от эле-

меризации. Участие микротрубочек в этом

ментов, генерирующих силовое напряжение.

процессе до конца не ясно. Хотя в некоторых

Микротрубочки участвуют

в

стабилизации

исследованиях отмечается снижение хемотак-

клеток во время их реакции, а циклические

сиса под действием винбластина и колхицина, в

нуклеотиды модулируют активность нейтро-

ряде других работ обнаруживается лишь слабый

филов. Однако доказательства существования

эффект этих препаратов. Прямое наблюдение

специфических рецепторов для фармпрепаратов,

показало, что после обработки указанными

обычно

вызывающих

изменения

уровня

препаратами

движение

нейтрофилов

по

циклических нуклеотидов, весьма неоднознач-

градиенту

хемотаксина напоминает

прогулку

ны. Нейтрофилы обладают запасом гликогена и

пьяного.

 

 

 

 

 

 

 

получают энергию главным образом при

 

Не менее противоречивые данные получены

метаболизме углеводов. Фагоцитоз и индукция

при изучении влияния колхицина на индукцию

внеклеточной гибели сопровождаются увели-

внеклеточной гибели: отсутствие эффекта в

чением потребления кислорода с образованием

одном исследовании и 50% подавление-в

перекисей и других токсических продуктов

другом.

 

 

 

 

 

 

 

кислорода; те же эффекты наблюдаются при

Заключение

 

 

 

 

 

 

других видах активации нейтрофилов.

 

 

 

 

 

 

 

Список литературы

 

 

 

 

Нейтрофил-конечная клетка, неспособная к

 

 

 

 

Berridge M.J. &

Irvine R.F. (1984)

Inositol trisphosphate,

делению,

с

ограниченными

возможностями

a novel second messenger in cellular signal transduction.

синтеза белка; тем не менее диапазон ее реакций

Nature 312, 315. K/ebanoffM.J. & Clark R.A. (1978) The

Neutrophil: Function

 

 

 

 

весьма широк и включает хемотаксис,

and Clincia/ Disorders. North Holland, Amsterdam.

фагоцитоз, экзоцитоз, индукцию как внутри-

Nishizuka Y.

(1984) The role of protein

kinase С in cell

клеточной,

так

и внеклеточной гибели. В

surface signal transduction and human promotion. Nature

нейтрофилах имеется по крайней мере два типа

308, 693. Snyderman R. (1984) Contemporary

Topics in

Immunology,

 

 

 

 

 

 

гранул, содержимое которых обладает микро-

vol. 14. Academic Press, London. Wilkinson P. С (1982)

бицидной активностью и оказывает действие на

Chemotaxis and Inflammation, 2nd ed.

 

 

 

другие клетки и компоненты тканей. Нейт-

 

Churchill-Livingstone, Edinburgh.

 

 

4 Тромбоциты

Дж. К. Формен (J. С. Foreman)

Целью данной главы является краткая характеристика структуры, стимулов, биохимии и фармакологии тромбоцитов с учетом их возможной роли в воспалительной реакции. Отдельная глава (см. главу 16) будет посвящена медиатору, известному как фактор активации тромбоцитов.

Представления о роли тромбоцитов в воспалении или других иммунных реакциях весьма противоречивы. Участие тромбоцитов в подобных реакциях не вызывает особых сомнений; вопрос заключается в определении их значимости и пользы либо в констатации отсутствия какого-либо их вклада в эти процессы. Утверждается, что устранение тромбоцитов не изменяет воспалительных реакций, однако это не означает обязательного отсутствия активной и функциональной роли тромбоцитов в таких процессах. Из последующих глав станет очевидным, что воспаление-это многокомпонентный процесс с множеством альтернативных и перекрещивающихся связей. Следовательно, выпадение какого-то одного компонента может не повлиять на исход процесса, поскольку выпавший компонент нередко замещается. В дополнение к этому следует сказать, что тромбоциты активируются множеством различных стимулов, что объединяет их с тучными клетками и нейтрофилами; более того, они выделяют значительное количество медиаторов воспаления с широким спектром действия. Все это чрезвычайно усложняет задачу определения истинного участия тромбоцитов в иммунных и воспалительных реакциях.

Структура тромбоцитов

Тромбоциты ввиду отсутствия в них ядра не могут быть определенно отнесены к клеткам. Они являются фрагментами больших мегакариоцитов костного мозга и обнаруживаются в циркулирующей крови, а не в тканях (за исключением патологических состояний). Продолжительность жизни тромбоцитов в циркуляции составляет 8-14 дней; в 1 мкл

крови содержится 105 - 5*106 тромбоцитов. Из одного мегакариоцита образуется 3000-4000 тромбоцитов; их продукция, по-видимому, контролируется тромбопоэтином, гуморальным фактором печени или почек.

Интактный тромбоцит имеет вид диска диаметром 0,75-2,25 мкм. Несмотря на отсутствие ядра цитоплазма содержит некоторое количество РНК, поэтому тромбоциты способны к ограниченному белковому синтезу. Мембрана, окружающая цитоплазму, состоит из двух слоев фосфолипидов, между которыми располагаются белки (трехслойная структура, типичная для клеток-эукариотов). Внешняя поверхность мембраны покрыта аморфным слоем толщиной 20 нм, который состоит из белков и сульфатированных протеогликанов. Функциональное значение аморфного слоя определяется тем, что среди всех прочих веществ в нем содержатся факторы свертывания.

В результате инвагинации поверхностной мембраны в цитоплазме образуется сложная система канальцев, которые сообщаются с поверхностью тромбоцита. Возможно, что вещества, выделяемые гранулами тромбоцитов, сначала попадают в эту систему канальцев и лишь затем окончательно высвобождаются во внешнюю среду. С системой канальцев, сообщающихся с поверхностью, тесно связана плотная тубулярная система. Подобно саркоплазматическому ретикулуму мышц, плотная тубулярная система может участвовать в секвестрации и хранении кальция в тромбоцитах.

Значительная часть цитоплазмы тромбоцита заполнена гранулами, которые разделяют на три основных типа: 1) плотные гранулы; 2) а- гранулы; 3) гранулы, содержащие кислые гидролазы.

Кроме того, цитоплазма содержит некоторое количество гранул гликогена и немного митохондрий.

Плотные гранулы

Эти гранулы содержат АТФ, АДФ, пирофосфат, бивалентный катион (кальций либо маг-

49