
Эмфизема легких
Активированные Мф не только защищают легкие от повреждения, но и сами могут быть проводниками вредных экзогенных факторов в легочную ткань. Такие клетки являются не просто местом их сосредоточения, но и, будучи активированы, начинают выделять в микроокружение факторы, повреждающие собственные клетки организма и компоненты матрикса соединительной ткани легкого. В свою очередь повреждение легочной ткани может спровоцировать воспалительный процесс.
Врачи давно заметили, что легочная эмфизема значительно чаще развивается у курильщиков табака. Затем это получило экспериментальное подтверждение: у собак, вдыхавших табачный дым в течение 6 мес и более, как правило, развивалась эмфизема легких [Auerbach О. et al. 1967]. Табачный дым усиливает приток Мф в легкие, в том числе в полость альвеол и бронхов. Из легких больных эмфиземой постоянно вымывается большое число альвеолярных Мф, которые в культуре in vitro выделяют высокоактивную эластазу, тогда как Мф из полости альвеол здоровых людей такой способностью не обладают [Rodriguez R. et al., 1977]. Активность N-ацетил-β-D-глюкозаминидазы, β-галактозидазы, β-D-глюкуронидазы была в 3—5 раз выше в Мф у лиц, которые выкуривали по 20 сигарет в день в течение 10 лет подряд и более. То же можно сказать в отношении активности катепсинов В, С и D. Но особенно тонко на табачный дым реагирует эластаза Мф. Даже у лиц, которые курят умеренно, от 5 до 10 сигарет в день, активность этого фермента была вдвое выше, а у злостных курильщиков — в 3—5 раз выше, чем в контроле [Scharfman A. et al., 1980].
Считают, что альвеолярные Мф активируются под влиянием многих компонентов табачного дыма. Но особое внимание исследователей в последние годы привлекает входящий в состав табачных листьев каолинит, или алюмосиликаты, — компоненты тех глинистых почв, на которых обычно выращивают табак. Реснички табачных листьев активно захватывают и накапливают каолинит. Кроме того, этот компонент добавляют в табак для уменьшения копоти при его сгорании в сигаретах. Частички алюмосиликатов оседают в дыхательных путях курильщиков из-за плохой работы ресничек мерцательного эпителия бронхов, того самого «слизистого эскалатора», по которому чужеродные частицы как сами по себе, так и в составе альвеолярных Мф продвигаются в ретроградном направлении, снизу вверх, в сторону глотки. Под электронным микроскопом частицы алюмосиликатов обнаруживаются в вакуолях альвеолярных Мф в виде игольчатых кристаллов или телец гексагональной формы. Присутствие Аl и Si в кристаллах включений было доказано методом жесткой рентгеновской спектроскопии [Finch D. et al., 1982].
Может оказаться и так, что компоненты табачного дыма первично раздражают эпителий бронхов и альвеол, а уже эти клетки выделяют вещества, стимулирующие альвеолярные Мф. Как бы то ни было, но в альвеолах и бронхах курильщиков табака общее число Мф существенно возрастает, причем многие из них имеют в высшей степени неровную и высокоадгезивную мембрану. Установлено, что через 15 мин инкубации на нейлоновых волокнах альвеолярные Мф курящих распластывались намного активнее, чем те же клетки от некурящих, которые сохраняли сферическую форму [Warr G., Martin R., 1978].
В патогенезе эмфиземы легких главную роль играет эластаза фагоцитирующих клеток, рекрутированных в легкие. Протеазы с эластазоподобной активностью типа папаина, введенные в легкие через катетер, расщепляют эластический каркас легкого. Однако наиболее активна в этом отношении очищенная эластаза. К развитию эмфиземы предрасполагает генетически детерминированный дефицит α-антитрипсина — естественного ингибитора эластазы [Eriksson S., 1964].
В крови человека обычно циркулируют две антипротеазы: α1-антитрипсин и α2-макроглобулин. Обе из них могут образовывать комплексы с рядом протеаз, включая эластазы ПМЛ и Мф. Они нужны организму для того, чтобы нейтрализовать постоянно поступающие в кровь протеолитические ферменты из поджелудочной железы. В комплексе с антиферментами протеазы активно поглощаются клетками РЭС и прежде всего — Мф-резидентами печени. α1-антитрипсин обнаруживается постоянно в БАЛ-жидкости, где он нейтрализует эластазу фагоцитов. Ингибитор протеаз синтезируется в печени. α1-антитрипсин найден в альвеолярных Мф человека, но неясно, синтезируется ли он в них или захватывается Мф из внеклеточной среды. Другая антипротеаза — α2-макроглобулин определяется в БАЛ-жидкости в виде следов, поскольку высокая мол. масса не позволяет ей свободно проходить через нормальные легочные капилляры. Следует помнить, что альвеолярные Мф и моноциты крови человека могут синтезировать α2-макроглобулин. К тому же альвеолярные Мф поглощают комплексы «специфическая протеаза + + ингибитор» и переваривают их. В дополнение к этому альвеолярные Мф человека имеют рецепторы, связывающие эластазу ПМЛ. После связывания эластаза поглощается, а затем либо подвергается деградации, либо нейтрализуется внутриклеточными антипротеазами [Gee J., Fick R., 1981].
Таким образом, Мф легких не просто обеспечивают протеолиз, а регулируют его. С одной стороны, они могут усиливать протеолиз, секретируя собственные протеазы или стимулируя эластолитическую функцию ПМЛ и Мф, с другой — те же Мф могут поглощать протеазы ПМЛ, синтезировать антипротеазы и обеспечивать элиминацию комплексов «протеаза + антипротеаза».
В активном участке α1-антитрипсина содержится метионин. Окисление SH-rpyпп метионина ведет к инактивации α1-антитрипсина. В процессе инактивации α1-антитрипсина могут участвовать биоокислители, образуемые активированными фагоцитами. Это объясняет, почему при выраженных воспалительных реакциях в легких суммарный протеолиз может усиливаться за счет нейтрализации ингибиторов протеолиза — О2,—Н2О2, ОН• и другими свободными радикалами. Сигаретный дым, содержащий оксиданты, также инактивирует α1-антитрипсин.
Активированные Мф в интерстиции легкого, выделяя эластазу, могут вызвать первичное повреждение перегородки альвеол. Вместе с тем выясняется, что продукты частичной деградации эластина (так же, как и коллагена) служат хемотаксинами для новых порций моноцитов, притекающих с кровью в зоны первичного повреждения и трансформирующихся in situ в Мф-эффекторы дальнейшей деструкции матрикса СТ. В специальных исследованиях проверялись хемотаксические свойства: 1) фрагментов тропоэластина, одноцепочечного полипептида с мол. массой 70 000, предшественника полимеров эластина; 2) фрагментов эластина, нерастворимых полимеров, образованных из тропоэластина путем поперечного связывания лизиновых остатков. Молекулы тропоэластина не притягивали моноциты в легкое. В то же время фрагменты эластина оказались очень действенными хемотаксинами, особенно те из них, мол. масса которых составляла 10 000 — 50 000. Они вызывали аттракцию моноцитов даже в таких низких концентрациях, как 3 нг/мл. По сравнению с ними фрагменты эластина с большей мол. массой и десмозин были активны только в значительно более высоких концентрациях (0,3 мкг/мл). Преинкубация моноцитов с фрагментами эластина с мол. массой 10 000 и 50 000 лишает затем клетки способности мигрировать в направлении этих фрагментов, но не в сторону градиента сывороточных хемотаксинов. Обнаружено, что те пептидные фрагменты эластина, которые вызывали аттракцию моноцитов в ничтожно малых дозах, оказались совершенно неактивными в отношении нейтрофилов даже в таких гигантских дозах, как 30 мкг/мл [Hunninghake G. et al., 1981].
Итак, Мф, накапливаясь в местах первичного повреждения легочного каркаса, служат источником факторов, потенцирующих дальнейший катаболизм матрикса СТ легких. До поры до времени их протеолитический потенциал остается сбалансированным, поскольку в ткани легкого и в самих Мф имеется система антипротеаз. Реальная угроза развития эмфиземы легких возникает при накоплении в интерстиции большого числа Мф с высокой эластолитической активностью и/или при недостаточной нейтрализации ферментов, катаболизирующих матрикс СТ за счет дефектов в системах синтеза антипротеаз.
В повреждении эластиновых структур легких важную роль играют не только раздраженные Мф интерстиция, но и нейтрофилы. В норме легкое является местом секвестрации отживших нейтрофилов. Они скапливаются в альвеолах, фагоцитируют, гибнут, и выделяемые из них лизосомальные ферменты, в том числе эластазы, могут повредить легкое, если не происходит их своевременная нейтрализация ингибиторами протеаз.
Существует мнение, что эмфизема легких вообще не может развиваться без ПМЛ, которые служат источником высокоактивных эластаз. Действительно, ПМЛ, так же как и Мф, постоянно находятся в стенках альвеол больных с развивающейся эмфиземой. В связи с этим нетрудно представить, что ПМЛ начинают процесс деструкции коллагена, а Мф как бы подхватывают по эстафете эту функцию и придают процессу деструкции не взрывной, а пролонгированный характер.
Кроме того, активированные Мф интерстиция могут привлекать ПМЛ в места своей локализации, формируя градиент хемотаксинов «общего профиля», а также выделяя особые факторы, привлекающие только нейтрофилы. Например, альвеолярные Мф человека и обезьян под действием микробов, ЗГ, ИК, С3в начинают выделять полипептид с мол. массой 400—600, резко усиливающий хемотаксис ПМЛ [Cohen A., 1979]. Следует учитывать, что активированные Мф легких могут создавать условия для притока ПМЛ в легочную ткань и через центры фагоцитопоэза. В связи с этим показательно следующее наблюдение. Если повторять промывание бронхоальвеолярного тракта у обезьян в течение нескольких дней, то уже при третьем промывании число ПМЛ в БАЛ-жидкости возрастает более чем на 50 %, причем не только в промываемом легком, но и в контралатеральном. После того как БАЛ-жидкость концентрировали и вводили интактному животному, содержание в его крови нейтрофилов тоже резко нарастало [Kazmierowski J. et al., 1977]. Источником фактора, стимулирующего лейкопоэз, скорее всего были альвеолярные Мф, раздражаемые повторными промываниями легких. Интересно, что Мф легких, активированные другими способами, так- же могут вызвать усиленный приток ПМЛ. Так, под влиянием кварцевой пыли альвеолярные Мф активируются, частично разрушаются, и образующиеся продукты стимулируют аттракцию фагоцитов в полость альвеол. Увеличение дозы вдыхаемой пыли ведет к росту соотношения ПМЛ/Мф в альвеолах [Katznelson В., Privalova L., 1984].
Таблица 10 Изменение абсолютного числа мононуклеарных фагоцитов полости альвеол и в периферической крови крыс при длительном общем переохлаждении
Условие опыта |
Альвеолярные Мф на 1 г ткани легких, • 103 |
Моноциты периферической крови, • 103 |
Контроль Продолжительность охлаждения: 2 ч 24 ч 8 сут |
6,4 ±0,5
4,9±0,3** 8,0±0,6** 1,7 ±0,2** |
0,5 ±0,04
0,28 + 0,03* 1,06±0,10* 0,99 + 0,10* |
* p< 0,05.
**р<0,01.
В
экспериментах наши сотрудники
изучали изменения клеточного состава
БАЛ-жидкости при общем переохлаждении
организма. В результате были
выявлены новые интересные
закономерности. Как видно из табл.
10, уже через 2 ч после помещения
крыс в холодную камеру с
температурой — 7—8° С число альвеолярных
Мф уменьшалось. Через сутки, однако,
отмечалось резкое нарастание числа
фагоцитирующих Мф в интерстиции легких
и в полости альвеол. В свою очередь,
последнее сопровождалось ростом
активности супероксиданиона Ō2
в клетках БАЛ-жидкости (рис. 39). Через 8
сут холодовой экспозиции поступление
Мф в альвеолы резко сокращалось (табл.
11). Есть основания считать, что подобные
перестройки легочного
отдела СМФ могут иметь прямое отношение
к изменениям резистентности легочной
ткани к инфекции и к развитию воспалительных
заболеваний легких в условиях
переохлаждения [Тнимов М. X.
и др., 1985].
39. Изменение активности супероксиданиона Ō2 (%) в альвеолярных Мф крыс в процессе общего переохлаждения в течение 2 ч, 24 ч и 8 сут.
Легочный отдел СМФ оказался чувствительным к изменениям эндокринного статуса. По данным Л. Н. Шишкиной и соавт. (1987), после введения крысам больших доз гидрокортизона (125 мг/кг) ежедневно в течение недели общее число клеток в БАЛ-жидкости возрастало более чем в 5 раз. При этом число Мф в смыве увеличивалось в 2 раза и более, а нейтрофилов — в 66 раз (табл. 11; рис. 40). После двусторонней адре-налэктомии, производимой за 7 сут до исследования, общее число вымываемых клеток менялось незначительно. Однако наблюдался существенный прирост доли Мф среди клеток БАЛ-жидкости.
Таблица 11 Число клеток в БАЛ-жидкости крыс •106/1 г ткани легких) после введения больших доз гидрокортизона (1-я) или адреналэктомии (2-я)
Группа животных |
Общее число клеток |
Альвеолярные Мф |
Лимфоциты |
Нейтрофилы |
Эозинофилы |
Свободные альвеолярные клетки |
1-я |
|
|
|
|
|
|
опыт контроль |
34,9+4,90** 6,6 ±0,74 |
12,5±3,7** 5,2 ±0,44 |
0,8±0,30 0,1 ±0,04 |
20,0 ±3,80** 0,3±0,11 |
0,1 ±0,09 0,01 ± 0,00 |
2,6 ±0,52** 0,3 ±0,06 |
2-я |
|
|
|
|
|
|
опыт контроль |
3,6 ±0,41* 2,9 ±0,37 |
2,7±0,49* 1,7±0,13 |
0,1 ±0,06 0,1 ±0,06 |
0,1 ±0,06 0,1 ±0,03 |
0,02 + 0,01 0,01 ±0,00 |
0,3 + 0,03 0,2 ±0,02 |
* Р<0,1.
**p<0.05.
Возвращаясь к клеточным основам патологии, заметим, что повреждение легочных структур может быть связано не только с протеазами фагоцитирующих клеток. Было доказано, что активные формы кислорода, вырабатываемые ПМЛ и Мф, могут повреждать эндотелий легочных капилляров, создавая тем самым условия для воспалительной инфильтрации стромы органа [Martin W., 1984; Brigham К., Меуrick В., 1984]. Известно, что активные формы кислорода могут вызывать дезинтеграцию коллагенсодержащих структур [Monboisse J. et al., 1984]. К числу наиболее мощных биоокислителей, генерируемых легочными Мф, относится супероксиданион Ō2. Последствия его выделения предугадать трудно. В легком имеются антиоксиданты, которые могут быстро нейтрализовать цитопатогенные эффекты Ō2. В самих фагоцитах, особенно в альвеолярных Мф, имеются механизмы, препятствующие избыточному накоплению активных форм кислорода. Прежде всего, это система, включающая в себя глютатионпероксидазу и НАДФН-зависимую глютатионредуктазу. От избытка перекисей защищает фермент каталаза. Для обезвреживания Ō2 имеется супероксиддисмутаза (СОД). Особенно высокая активность СОД выявляется в альвеолярных Мф, где она в 5 раз выше, чем в ПМЛ, и в 3 раза выше, чем в моноцитах крови [Rister M., Baehner R., 1976].
Синтез
СОД в альвеолярных Мф компенсаторно
усиливается при высоком напряжении
кислорода в среде. Если вначале животные
адаптируются к атмосфере с 85 % Ō2
и лишь после этого помещаются в атмосферу
чистого кислорода, то их летальность
резко снижается по сравнению с животными,
сразу помещенными в камеру с чистым
кислородом. Адаптация в таких ситуациях
в значительной мере связана с
гиперпродукцией СОД легочными Мф [Crapo
J.
et
al.,
1978]. Однако, когда антиоксидантная
система легких работает недостаточно
активно, возникает дополнительный
шанс, что Ō2
и другие активные формы кислорода
вместе с перекисью водорода и липоперекисями
вызовут повреждение легочной ткани.
40. Клетки из бронхоальвео-лярного тракта крысы.
а — Мф; б — массивный приток нейтрофилов в альвеолы после повторных введений больших доз гидрокортизона. Окраска по Паппенгейму. х 1500.