
- •Методичні вказівки
- •Львів 2010
- •Тема 1. Техніка культивування рослинного матеріалу на штучних поживних середовищах.
- •Робота 1. Організація лабораторії
- •Техніка безпеки при роботі в лабораторії
- •Загальні положення
- •Правила техніки безпеки
- •Перша допомога при нещасних випадках
- •Гасіння місцевої пожежі і палаючого одягу
- •Робота 2. Приготування поживних середовищ для культивування клітин і тканин in vitro Теоретичні відомості
- •Хід роботи.
- •Теоретичні відомості
- •Хід роботи.
- •Теоретичні відомості
- •Теоретичні відомості
- •Хід роботи.
- •Тема 2. Мікроклональне розмноження рослин і отримання безвирусного посадочного матеріалу.
- •Регенерація рослин Теоретичні відомості
- •Хід роботи.
- •Стерильних проростків. Теоретичні відомості
- •Хід роботи.
- •Мікроклональному розмноженні рослин. Теоретичні відомості
- •Хід роботи.
- •Теоретичні відомості
- •Хід роботи.
- •Рослинного матеріалу на вміст вірусів Теоретичні відомості
- •Хід роботи.
- •Теоретичні відомості
- •Хід роботи.
- •Апікальних меристем. Теоретичні відомості
- •Хід роботи.
- •Теоретичні відомості
- •Хід роботи.
- •Вузлів кущіння пшениці Теоретичні відомості
- •Хід роботи.
- •Теоретичні відомості
- •Хід роботи.
- •Теоретичні відомості
- •Хід роботи.
- •Тема 4. Суспензійні культури. Робота 1. Отримання і культивування суспензії. Теоретичні відомості
- •Хід роботи.
- •Теоретичні відомості
- •Хід роботи.
- •Робота 3. Визначення міри агрегації і життєздатності суспензії. Теоретичні відомості
- •Хід роботи.
- •Теоретичні відомості
- •Хід роботи.
- •Тема V. Гормональна регуляція в культурі клітин
- •Хід роботи.
- •Робота 2. Індукція ділення і росту клітин розтягуванням під дією ауксину і гібереліну Теоретичні відомості
- •Хід роботи.
- •Тема VI. Культура гаплоїдних клітин.
- •Робота 1. Отримання калусів з пильників вишні
- •І яблуні.
- •Теоретичні відомості
- •Хід роботи.
- •Теоретичні відомості
- •Хід роботи.
- •Додаток
- •Список літератури
- •Навчальне видання
Тема 4. Суспензійні культури. Робота 1. Отримання і культивування суспензії. Теоретичні відомості
Суспензійні культури - це поодинокі клітини, дрібні, середні і великі агрегати (групи клітин), що вирощуються в рідкому поживному середовищі при постійній аерації (доступі кисню) в асептичних умовах. Суспензії отримують з калусів. Для ініціації суспензійної культури потрібно 2-3 г свіжої рихлої маси калусних клітин на 60-100 мл рідкого поживного середовища. Первинну суспензію культивують в колбах з рідким поживним середовищем на кругових гойдалках із швидкістю 100-120 об./хв.
Модельна крива росту суспензії має S-подібну форму і включає: лаг-фазу, експоненціальну фазу, стаціонарну фазу і фазу деградації. Форма реальних ростових кривих відрізняється тривалістю фаз. Це залежить від генетики популяції, кількості інокулюма та складу поживного середовища. Швидкість наростання біомаси коливається від 15 до 70 діб.
Суспензії використовують для отримання важливих хімічних речовин: органічних кислот, ферментів, алкалоїдів, барвників, білків, амінокислот, які застосовуються у фармакології, парфумерії, харчовій і хімічній промисловості, сільському господарстві.
Суспензійні культури мають велике значення для генетики і особливо молекулярної біології: з суспензійних клітин отримують протопласти, що використовуються для соматичної гібридизації, генетичної інженерії, а також для вивчення метаболізму клітин.
Матеріали і устаткування. Ламінар-бокс, пробірки з рихлими калусами тютюну (середовище МС+2,4-Д 2мг/л), колби з поживним середовищем для ініціацій суспензії, магнітні мішалки, стерильні інструменти, флакон з 96 % спиртом.
Хід роботи.
1. У асептичних умовах витягнути калус з пробірки і помістити в колбу з поживним середовищем, з розрахунку 2-3 г на 100мл середовища:
1. МС+2,4-Д,
2. МС+ІОК,
3.МС+ІОК+6-БАП,
4. МС без гормонів.
2. Колби з суспензією помістити на кругові гойдалки при 100-120 об/хв і залишити на 2 тижні.
3. Результати культивування суспензії на різних по складу середовищах замалювати і зробити висновки.
Робота 2. ПІДРАХУНОК ГУСТИНИ СУСПЕНЗІЇ.
Теоретичні відомості
За густиною суспензії можна не лише охарактеризувати стан клітинної популяції, але і визначити час субкультивування (відбору інокулянта і пересадки на свіже поживне середовище). В більшості випадків суспензію для субкультивування відбирають у кінці експоненціальної фази (через 14-16 днів після початку культивування). При побудові кривої росту показники знімають через день. Щільність суспензії за 2-3 тижні культивування зростає в 20 разів. Клітини суспензій зручніше усього підраховувати в спеціальних рахункових камерах Фукса-Розенталя (гемоцитомерах). Для підрахунку клітин суспензії іноді використовують тимчасові препарати, але це більш трудомісткий процес: значно збільшується число повторностей.
Об'єм вибірки повинен складати не менше 1000 клітин. Підрахунок клітин утруднюється, якщо в суспензії переважає фракція агрегатів. У таких випадках до 1 об'єму культури додають 2 об'єми 8 % оксиду хрому і нагрівають до 700С протягом 2-15 хвилин. Після охолодження культуру струшують, щоб розпалися агрегати. Для руйнування агрегатів в суспензію додають пектиназу - 0,25 % об'єму.
Густину суспензії можна визначити і по співвідношенню об'єму біомаси до загального об'єму суспензії. Вимірюють середній об'єм клітини і отримують число клітин в 1 мл суспензії.
Матеріали і устаткування. Мікроскоп, центрифуга, колба з суспензією, стерильна піпетка, предметне скло, покривне скло, камера для підрахунку елементів крові, фільтрувальний папір.