- •Отсев характерных колоний на плотную питательную среду с целью получения и накопления изолированных колоний. Чашки инкубируют в анаэробных условиях.
- •Методы, среды и приборы для создания анаэробиоза
- •Биопрепараты
- •Направление №____ на микробиологическое исследование
- •Результат микробиологического исследования №______
- •Антибиограмма
Тема: Микробиологическая диагностика инфекций, вызываемых спорообразующими анаэробными бактериями.
Провести выделение и идентификацию культуры возбудителя, выделенной из глубины раны с подозрением на газовую гангрену.
|
Микроскопия материала из раны, окраска по Граму, х100 |
Микроскопия чистой культуры C. рerfringens,окраска по Граму, х100 |
|
Результат:
|
Результат: |
|
РИФ с меченными АТ к C. perfringens |
СЭМ. Морфология C. perfringens, х15000 |
|
Результат:
|
|
Бактериологическое исследование по выделению и идентификации предполагаемого возбудителя с целью установления этиологии заболевания:
Укажите методы отбора и доставки материала при подозрении на анаэробную инфекцию : _____________________________________________________________________________
1 этап.Посев исследуемого материала на среды культивирования, укажите какие:________________
Посев исследуемого материала на среду Вильсона-Блера и молоко
Ориентировочный ответ о наличии C. perfringens– через 2-4 ч культивирования.
-
Контроль(-)
ОбразецОбразец
Контроль
(-)На среде Вильсона-Блера отмечают почернение среды ввиду восстановления сульфата натрия и образования сульфида железа
На среде с лакмусовым молоком образуется сгусток, пронизанный пузырьками газа.
2 этап.Оценка посева исследуемого материала на СКС или какую-либо среду для выделения анаэробов (анаэробный кровяной агар, среда Китта-Тароцци и т. д.) визуально и микроскопией препаратов, окрашенных по Граму.
Отсев характерных колоний на плотную питательную среду с целью получения и накопления изолированных колоний. Чашки инкубируют в анаэробных условиях.
-
Оценка результатов посевов:
Микроскопия выделенной культуры,окраска по Граму, х100


На среде СКС___________________________.
На кровяном агаре колони:________________.
При микроскопии выявлены крупные грамположительные палочки, образующие споры, превышающие диаметр клетки и занимающие субтерминальное или центральное расположение (споры не окрашены).
3 этап.Характерные колонии отсевают на соответствующие питательные среды для выделения и накопления чистой культуры.
4 этап.Полученная чистая культура подлежит идентификации.
Свойства и методы, позволяющие определить видовую принадлежность. Идентификацию чистых культур (до вида микроорганизма) проводят с учётом морфологических, тинкториальных, культуральных, биохимических, токсигенных и антигенных свойств микроорганизма. Методы идентификации: культуральная диагностика, РИФ, ПЦР, биохимический метод («пестрый ряд»), биологический (РН) и др.
|
Оценка посева культуры на «пестрый ряд»
|
Обнаружение токсина. Тест на лецитиназную активность
|
|
Оценка: каталаза (-), разжижение желатина (+), индол (-), глюкоза (+), лактоза (+), сахароза (+), мальтоза (+), пептонизация молока (+), H2S(+), подвижность (-)
|
1
3 2
2,3 Контроль(-) |
Проведите идентификацию выделенной культуры по таблице (ниже). Результат________________

5 этап.Оценка результата реакции нейтрализации (РН) на белых мышах с центрифугатом культуральной жидкости и противогангренозными антитоксическими сыворотками.
Для определения токсигенности культуры путем постановки РН смесь центрифугата исследуемой культуры с антитоксическими сыворотками вводят подкожно белым мышам. В случае нейтрализации токсина животные остаются живыми; при отрицательной РН – животные погибают.
|
№ |
Введено животным |
Результат | |
|
культуральная жидкость |
антитоксическая сыворотка | ||
|
1. |
+ |
противоперфрингенс |
Мыши живы |
|
2. |
+ |
противонови |
Мыши пали |
|
3. |
+ |
противосептикум |
Мыши пали |
|
4. |
+ |
противогистолитикум |
Мыши пали |
|
5. |
+ |
противосорделлии |
Мыши пали |
|
6. |
+ |
-- |
Мыши пали |
Методы, среды и приборы для создания анаэробиоза
Метод Фортнера. Посевы проводят на чашку Петри с толстым слоем среды, разделённым пополам узкой канавкой, вырезанной в агаре. На одну половину засевают культуру аэробных бактерий, на другую — анаэробных. Края чашки заливают парафином и инкубируют в термостате. Первоначально наблюдают рост аэробов, а затем (после поглощения кислорода) — рост анаэробов.
Метод Биттнера. К крышке чашки Петри с посевом исследуемого материала или выделенной культуры анаэробов прикрепляют пакет из фильтровальной бумаги, содержащей пирогаллол, К2 СО3 и тальк. Чашку герметизируют при помощи парафина или скотча. Содержимое пакета увлажняется за счет образующегося конденсата и ингредиенты вступают в реакцию, которая сопровождается поглощением О2 и выделением СО2.
Газ-пак (Generbag anaer). Система Generbag anaer состоит из воздухонепроницаемых пакетов, изготовленных из прозрачной пластмассы и генераторов, содержащих смесь веществ, поглощающих кислород.
Последовательность работы: вынуть генератор из пакета, поместить в нижнюю часть воздухонепроницаемого пакета, затем поместить чашки (или пробирки) с посевами и с помощью специальной скрепки закрыть пакет. Инкубация при 370.
Среда Китта-Тароцци. Содержит мясо-пептонный бульон (МПБ), 0,5% глюкозы и 0,15% агара. На дно пробирки для адсорбции О2 помещают кусочки вареной печени или фарша слоем 1-1,5 см и заливают 6-7 мл среды. Среду перед посевом регенерируют (прогревают 15-20 мин на водяной бане для удаления воздуха, а затем быстро охлаждают). После посева среду заливают вазелиновым маслом и помещают в термостат.
Полужидкий сахарный агар (высокий столбик). В пробирку с 6-7 мл расплавленного и охлажденного до 40-450 полужидкого питательного агара, содержащего 0,5-1% глюкозы, вносят исследуемый материал и перемешивают. Посевы помещают в термостат.
Среда для контроля стерильности (СКС). Рост многих анаэробных микроорганизмов возможен только на средах с низким окислительно-восстановительным потенциалом. Поэтому в среды добавляют восстановители, например, тиогликолевую кислоту или ее натриевую соль, цистеин, аскорбиновую кислоту. Функции восстановителей выполняют и другие компоненты среды: глюкоза, пептон. СКС содержит питательный бульон, витаминный препарат ЭКД, NaCl, Na2CO3, глюкозу, тиогликолят натрия, цистеин, агар (0,75%). Среду разливают в пробирки по 6-7 мл.
Посевы культивируют в термостате.






