Клиническая иммунология, аллергология. Базовые методы. Практикум

Подсчет лейкоформулы

Мазок крови, окрашенный по методу Романовского– Гимзе, помещают под микроскоп с иммерсионным объективом

иподсчитывают разные формы лейкоцитов. В общей сложности необходимо определить не менее 100 клеток. Более точные результаты получают при анализе 200 клеток. Первую половину форменных элементов следует считать в верхней части мазка, а вторую половину – в нижней части мазка, не заходя на самый край и середину. Двигаться необходимо по зигзагу, например, как показано на рисунке 16. Следует помнить, что гранулоциты

имоноциты в большинстве

случаев располагаются в начале и в конце мазка, а посередине, как правило, располагаются лимфоциты.

Суммарное количество посчитанных клеток принимают за 100 % и вычисляют долю, приходящуюся на каждый из типов выявленных лейкоцитов. При подсчете лейкоформулы анализируют только количество лейкоцитов, не обращая внимания на эритроциты. Далее вы найдете схематическое изображение и основные внешние характеристики основных типов клеток белой крови (лейкоцитов).

31

Основные морфологические характеристики клеток крови

Малые лимфоциты могут составлять 20–50 % от общего числа лейкоцитов. Обычно имеют размер 6–10 мкм. Они имеют круглое или немного овальное ядро, занимающее большую часть объема клетки и по размеру сопоставимое с эритроцитами. Цитоплазма чаще всего видна лишь в виде небольшого ободка вокруг ядра.

от числа лейкоцитов. Их размер

половины объема клетки. По форме ядро может напоминать боб или подкову. Хорошо видна цитоплазма, в которой нередко можно различить азурофильные гранулы. Могут быть видны вакуоли.

32

Нейтрофилы – сегментоядерные лейкоциты, составляющие 40–75 % клеток белой крови. Диаметр клетки обычно 9–16 мкм. Ядро состоит из 2–5 сегментов, которые могут загибаться, накладываясь друг на друга. Видно большое количество цитоплазмы с розово-фиолетовыми гранулами.

Эозинофилы составляют 1–4 % от периферических лейкоцитов. Эти клетки имеют 9–15 мкм в диаметре. Ядро может быть разделено на 2 или 3 доли, или быть несегментированным. При окрашивании по методу Романовского–Гимзе цитоплазма этих клеток становится красновато-оранжевого цвета ввиду большого количества гранул, окрашивающихся эозином.

Базофилы составляют около 0,5–1 % от числа лейкоцитов. Клетки имеют 10– 15 мкм в диаметре. Их ядро часто

бывает несегментированным, но может иметь два, или, реже, 3–4 доли. Цитоплазма бледно голубого цвета, но содержит большое количество фиолетовосиних гранул с гепарином и вазоактивными веществами.

33

Протокол самостоятельного подсчета лейкоцитов

вкамере Горяева

1.Развести образец крови в 20 раз 3–5 % уксусной кислотой (10 мкл крови + 190 мкл С2H4O2). Тщательно перемешать пипетированием.

2.Протереть камеру Горяева и покровное стекло спиртом и чистой сухой тканью.

3.Заправить камеру, плотно притерев покровное стекло до образования радужных колец Ньютона.

4.Еще раз перемешать образец и внести его в камеру (максимальный объем 10 мкл). Подождать 1 минуту.

5.В зависимости от количества клеток, определить область подсчета (в 100 больших квадратах или 20 больших квадратах).

6.Посчитать количество лейкоцитов (клетки, прилегающие

к2-м из 4-х граней квадрата, не учитываются!).

7.Рассчитать концентрацию лейкоцитов в образце по формуле

34

Протокол самостоятельного приготовления красящей смеси и окраска мазков по методу Романовского-Гимзе

1.Распределить каплю крови по стеклу. Высушить мазок.

2.Зафиксировать мазок метанолом или 96 % этанолом. Высушить.

3.Приготовить необходимое количество красящей смеси из расчета 1–2 капли жидкого красителя на 1 мл дистиллированной воды (рН 7,0).

4.Равномерно нанести красящую смесь на мазок, держать 20 минут.

5.Смыть красящую смесь проточной водой.

6.Высушить мазок.

35

Протокол самостоятельного подсчета лейкоформулы

1.Поместить мазок крови, окрашенный по методу Романовскому–Гимзе, под микроскоп с иммерсионным объективом.

2.Считать 100 клеток, различая разные формы лейкоцитов с одного края мазка, двигаясь зигзагом.

3.Считать еще 100 клеток с другого края мазка.

4.Определить среднее арифметическое количества каждого типа лейкоцитов. Если результаты подсчета клеток с двух сторон сильно отличаются, пересчитать еще раз.

5.Рассчитать абсолютные количества каждого типа лейкоцитов в мл крови.

36

ЗАНЯТИЕ 5. ВЫДЕЛЕНИЕ МОНОНУКЛЕАРНЫХ КЛЕТОК ИЗ ПЕРИФЕРИЧЕСКОЙ КРОВИ

Основной метод, используемый для выделения мононуклеаров (лимфоцитов и моноцитов) из периферической крови человека – это разделение клеток в градиенте плотности среды. Метод основан на различиях в величине плавучей плотности клеток. Нанесенный на градиентный раствор (ρ = 1,077 г/см3) образец крови центрифугируют, в результате чего клетки оседают, пока не достигнут области градиента, где их плавучая плотность равна плотности среды (рис. 17). Так как плавучая плотность мононуклеаров меньше, чем величина градиента, они располагаются в интерфазе (слое между плазмой и градиентом), а гранулоциты и эритроциты, имеющие большую плавучую плотность, проходят через градиентный раствор и опускаются на дно пробирки. После разделения мононуклеарные клетки аккуратно собирают из интерфазы, отмывают, считают в камере Горяева и используют для дальнейшей работы или замораживают для длительного хранения.

Плазма, DPBS, тромбоциты

Мононуклеарные клетки Диаколл

Эритроциты и гранулоциты

Рис. 17. Принцип разделения клеток на градиенте плотности диаколла

(ρ = 1,077 г/см3)

Следует помнить, что цельную периферическую кровь, смешанную с антикоагулянтом, от момента забора до начала обработки необходимо хранить при комнатной температуре (15– 30оС). Выделение клеток лучше начать так быстро, как это

37

возможно. Выделить и заморозить клетки следует в течение менее чем 8 часов после момента забора (рис. 18). Сам процесс выделения должен быть произведен менее чем за 4 часа. Ни в коем случае не следует охлаждать или замораживать цельную кровь.

Рисунок. 18. Схема распределения времени при работе с кровью

Для выделения мононуклеарных клеток периферической крови вам понадобятся:

одноразовые перчатки;

цельная периферическая кровь человека;

DPBS (или раствор Хэнкса);

градиентная среда плотностью 1,077 г/см3 (фиколлурографин, диаколл или аналоги);

центрифуга с бакет-роторами;

механические дозаторы разного объема;

одноразовые наконечники для дозаторов разного объема;

полипропиленовые пробирки объемом 50 мл и 10 мл;

раствор трипанового синего;

камера Горяева.

38

Протокол для самостоятельного выделения мононуклеарных клеток на градиенте плотности диаколла

1.До начала работы нагреть DPBS и диаколл до комнатной температуры. Беречь диаколл от попадания света.

2.Перенести кровь в стерильную пробирку объемом 50 мл, посчитав объем крови с точностью до 0,5 мл.

3.Разбавить цельную кровь в 2 раза DPBS (например, 10 мл крови + 10 мл DPBS).

4.В пробирки на 10 мл внести по 3 мл диаколла.

5.Нанести на диаколл по 6 мл разведенной крови. Наносить плавно, пуская тонкую струйку крови по стенке пробирки. Кровь не должна пробить границу раздела фаз.

6.Центрифугировать при 400 g 40 минут при комнатной температуре на центрифуге с бакет-роторами.

7.Убрать и выбросить 2/3 объема плазмы.

8.Собрать кольцо мононуклеаров из интерфазы в чистые пробирки на 10 мл.

9.Добавить до 10 мл DPBS, тщательно перемешивая клеточный осадок.

10.Центрифугировать клетки при 400 g в течение 15 мин. 11.Слить супернатант, разбить клеточный осадок.

12.Добавить 10 мл DPBS, тщательно перемешивая клеточный осадок.

13.Центрифугировать клетки при 400 g в течение 10 мин. 14.Слить супернатант, разбить клеточный осадок. 15.Добавить 1 мл DPBS. Тщательно перемешать.

16.Посчитать количество клеток в камере Горяева и оценить их жизнеспособность с трипановым синим.

39

17. Рассчитать:

a.Абсолютное количество клеток = концентрация

(106/мл)* объем DPBS.

b.Выход клеток (106/мл) = абсолютное кол-во клеток / объем крови

Выделенные таким образом клетки можно использовать для дальнейших исследований или заморозить в парах жидкого азота для длительного хранения.

40