Добавил:
Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:

Principy_diagnostiki_allergicheskih_zabolevanij_Belan_2025

.pdf
Скачиваний:
0
Добавлен:
13.02.2026
Размер:
2.06 Mб
Скачать

Рис. 1. Последовательность выполнения кожных проб (прик-тест) [4]

Внутрикожные пробы проводятся, главным образом, с инфекционными аллергенами (бактериальными, грибковыми и др.)

(табл. 6–8).

Техника постановки: инсулиновым или туберкулиновым шприцем внутрикожно вводят 0,05–0,1 мл инфекционного аллергена в область сгибательной поверхности предплечья или спины (концентрация аллергена в 10 раз меньше, чем при кожном тестировании; количество аллергенов – 4–5). Оценка через 24–48 часов.

 

 

Таблица 6

Шкала для оценки результатов прик-тестов

 

 

 

Обозначение реакции

Условные обозначения

Описание реакции

Отрицательная

Волдыря нет, эритема <1 мм

Слабо

+

Волдыря нет, эритема не

положительная

 

болеее 3 мм

Положительная

++

Волдырь не более 3 мм,

 

 

эритема не более 5 мм

Резко положительная

+++

Волдырь 3–5 мм, эритема >5 мм

Очень резко

++++

Размеры реакции, превышают

положительная

 

предыдущие

 

– 20 –

 

 

 

Таблица 7

Шкала для оценки скарификационных кожных проб

 

 

 

Обозначение реакции

Условные

Описание реакции

обозначения

 

 

Отрицательная

Размеры такие же, как в контроле

 

 

с тест-контрольной жидкостью

Сомнительная

±

Гиперемия без волдыря в месте

 

 

скарификации

Слабоположительная

+

Волдырь диаметром 2–3 мм, заметен

 

 

только при натягивании кожи

Положительная

++

Волдырь диаметром не более 5 мм,

 

 

отчетливо виден без натягивания

 

 

кожи, окружен зоной гиперемии

Резко положительная

+++

Волдырь в диаметре не более 10 мм

 

 

с гиперемией и псевдоподиями

Очень резко положи-

++++

Волдырь более 10 мм в диаметре

тельная

 

с гиперемией и псевдоподиями

 

 

Таблица 8

Шкала для оценки результатов внутрикожных проб

 

 

 

Обозначение реакции

Условные обозначения

Описание реакции

Отрицательная

Размеры такие же, как в

 

 

контроле

Сомнительная

±

Волдырь рассасывается

 

 

медленнее чем в тест-

 

 

контроле

Слабоположитель-

+

Волдырь диаметром 4–8 мм

ная

 

окружен гиперемией

Положительная

++

Волдырь диаметром 8–15 мм

 

 

окружен гиперемией

Резко

+++

Волдырь диаметром 15–20 мм

положительная

 

с псевдоподиями,

 

 

окруженный зоной гиперемии

Очень резко

++++

Волдырь более 20 мм

положительная

 

в диаметре, с псевдоподиями,

 

 

лимфангоитом, дочерними

 

 

волдырями по периферии

 

 

и яркой гиперемией

– 21 –

Если данные проб подтверждают данные анамнеза, значимость данного аллергена в развитии заболевания считается установленной. Несовпадение результатов кожного тестирования и клиникоанамнестических данных является показанием для определения специфических IgE и проведения провокационных проб.

Преимущества in vivo методов специфической аллергодиагностики:

-быстрота получения результата, наглядность для пациента, относительно низкая стоимость.

Недостатки in vivo методов специфической аллергодиагностики:

-невозможность проведения исследований при остром инфекционном заболевании, в периодах обострения или декомпенсации хронических инфекционных или аутоиммунных заболеваний, у больных злокачественными новообразованиями и приобретенными иммунодефицитами (в том числе СПИД), при беременности и лактации;

-субъективный (визуальный) характер оценки и интерпретации результатов кожных тестов;

-полуколичественный (в крестах) способ регистрации результатов;

-риск возникновения первичной (к новому аллергену) сенсибилизации;

-риск провокации (обострения) аллергического заболевания, возможность развития побочных (в том числе психосоматических) эффектов;

-отсутствие единых (по методике ВОЗ) стандартов контроля качества;

-необходимость ограничения или отмены терапии (в том числе гормональных или антигистаминных препаратов) за несколько дней до проведения обследования;

-необходимость в ряде случаев нескольких этапов диагностики (аллергометрическое титрование);

22 –

-смена видов тестов, например, прик-теста на внутрикожный);

-возможность развития неспецифических реакций кожи (ангионевротический отек), затрудняющих правильную оценку результата;

-выявление при одном обследовании ограниченного числа аллергенов;

-необходимость исключения из диагностируемого перечня аллергенов, вызвавших системные реакции (анафилактический шок) при ранее проводимом кожном тестировании;

-необходимость специальных условий для обследования – специализированного аллергологического кабинета (стационара)

испециалиста-аллерголога;

-необходимость обеспечения средствами неотложной терапии процедуры кожного и провокационного тестирования.

Специфические IgE в сыворотке крови или материале из пораженного органа (табл. 9). Свидетельствуют о сенсибилизации, но не о клинической значимости аллергена. Показания для определения:

-ложноотрицательные результаты кожного тестирования;

-противопоказания для кожного тестирования.

Таблица 9

Полуколичественный способ оценки концентрации специфических иммуноглобулинов Е

Класс

Концентрации специфических IgE, kU/L

Интерпретация результатов

0

<0,35

Отрицательный

1

0,35–0,69

Неоднозначный, часто без

 

клинических проявлений

 

 

2

0,70–3,49

Слабо позитивный

3

3,50–17,49

Позитивный, с выраженны-

4

17,50–52,49

ми клиническими проявле-

5

52,50–99,99

ниями

6

>100

 

– 23 –

Преимущества in vitro методов специфической аллергодиагностики:

-отсутствие противопоказаний для проведения исследований при любом заболевании, беременности и лактации;

-объективный (с помощью приборов) характер оценки и интерпретации результатов лабораторных тестов;

-количественный (в международных единицах измерения концентрации) способ регистрации результатов;

-отсутствие риска возникновения первичной сенсибилизации, развития побочных эффектов или обострения аллергического заболевания;

-наличие единых (по методике ВОЗ) стандартов контроля качества, позволяющих сравнивать результаты, полученные на разных тест-системах;

-отсутствие необходимости ограничения или отмены проводимой терапии;

-проведение исследований в течение короткого (часы) времени в один этап;

-отсутствие влияния реактивности кожи и тканей на правильность оценки результата;

-возможность выявления при одном обследовании значительного (до нескольких сотен) числа аллергенов;

-отсутствие необходимости исключения из диагностируемого перечня аллергенов, вызвавших системные реакции;

-отсутствие специальных требований к условиям обследования – (специализированный аллергологический кабинет или стационар, специалист-аллерголог, средства неотложной терапии).

Недостатки in vitro методов специфическойаллергодиагностики:

-необходимость участия специалистов клинической лабораторной диагностики, специального оборудования и тест-систем;

-не могут полностью заменить методы диагностики in vivo (нет полной взаимозаменяемости);

24 –

-невозможность корректного сравнения результатов исследований in vivo и in vitro при несоответствии экстрактов аллергенов, используемых для диагностики in vitro, экстрактам аллергенов, используемых для диагностики in vivo;

-относительно высокая стоимость.

Провокационные пробы. Провокационные тесты с медиаторами гиперчувствительности немедленного типа или их аналогами (гистамин, метахолин, аденозин) проводят с целью дифференциальной диагностики заболевания (бронхиальная астма, аллергический ринит), с аллергенами – для специфической диагностики, в том числе при подборе препарата для АСИТ.

Показания:

-несоответствие данных анамнеза и результатов кожного тестирования;

-наличие полисенсибилизации (например, поллиноз) с целью выбора аллергена для АСИТ;

-подозрение на пищевую аллергию с целью подбора базисного рациона;

-слабая интенсивность кожных проб для дифференциальной диагностики манифестной и субклинической форм аллергии.

Виды:

-ингаляционная;

-назальная;

-конъюнктивальная;

-сублингвальная;

-оральная пищевая.

Условие проведения провокационного аллергологического тестирования: все провокационные тесты (in vivo) может проводить только аллерголог-иммунолог, владеющий методикой выполнения данной процедуры в условиях специализированного аллергологического стационара или кабинета при наличии оснащения для оказания помощи в случае развития жизнеугрожающих состояний.

– 25 –

Ингаляционный тест применяют для диагностики бронхиальной астмы и проводят только в условиях стационара. Сначала оценивают показатели функции внешнего дыхания – ОФВ1 (первоначально не менее 70 % от должных величин). Затем проводят ингаляцию контрольной жидкостью. Процедуру можно проводить с помощью дозирующего струйного ингалятора. При отсутствии реакции производятся ингаляции аллергена в двукратных разведениях (1 : 1024, 1 : 512, 1 : 256 и т. д. до 1 : 16). Через каждые 10 мин после очередной ингаляции регистрируется ОФВ1. При снижении показателя более чем на 20 % тест считается положительным, и исследование прекращается. Бронхиальная астма обычно ассоциируется с бронхопровоцирующей концентрацией метахолина не выше 8 г/л. После проведения теста пациент должен оставаться под наблюдением врача 24 ч. В течение одних суток возможно проведение ингаляционного теста только с одним веществом (аллергеном).

Назальный тест применяют для диагностики аллергического ринита. В один носовой ход закапывают 1 каплю тестконтрольной жидкости. При отсутствии какой-либо реакции в другой носовой ход последовательно закапывают по 1 капле десятикратного разведения аллергена (1 : 100, 1 : 10), затем цельный аллерген. Интервал между закапыванием аллергена с более высокой концентрацией должен составлять не менее 20–30 мин. Увеличение концентрации аллергена производится только при отсутствии реакции на предыдущее разведение. Тест считается положительным при появлении симптомов ринита, подтверждённых данными риноскопии и риноманометрии.

Конъюнктивальный тест используют для диагностики аллергического конъюнктивита. В нижний конъюнктивальный мешок глаза закапывают тест-контрольную жидкость. При отсутствии реакции в другой конъюнктивальный мешок последовательно закапывают по 1 капле аллергена в двукратных разведениях

– 26 –

(1 : 2048, 1 : 1024, 1 : 512 и т. д. до 1 : 2). Интервал между нанесениями аллергена с разными концентрациями не менее 20–30 мин. Увеличение концентрации аллергена производится только при отсутствии реакции на предыдущую концентрацию.

Тест считается положительным при появлении симптомов конъюнктивита (рис. 2).

Рис. 2. Конъюнктивальный тест [5]

Сублингвальный тест применяют для диагностики лекарственной и пищевой аллергии. При наличии в анамнезе пациента тяжелых реакций, предположительно связанных с исследуемым препаратом или пищевым продуктом, предпочтительнее использовать лабораторные методы исследования. Перед началом тестирования измеряют частоту сердечных сокращений, артериальное давление, осматривают полость рта. Затем 1/8 (1/4) таблетки (или 2–3 капли растворенного лекарственного препарата) или натуральный пищевой продукт в разведении 1 : 10 помещают под язык пациента на 5–15 мин. Тест считается положительным при возникновении местной воспалительной реакции на слизистой оболочке

– 27 –

полости рта или системной реакции. После тестирования больной должен находиться под наблюдением врача в течение суток. За этот период времени врач проводит мониторинг состояния сер- дечно-сосудистой и дыхательной систем пациента.

Полоскательный тест по А. Д. Адо (тест торможения ми-

грации лейкоцитов in vivo, слизисто-десневой тест) заключается

втом, что при сенсибилизации к аллергену ополаскивание рта слабым раствором этого аллергена вызывает торможение естественной миграции нейтрофилов на поверхность слизистой оболочки рта. Данный тест используется для диагностики как пищевой, так и лекарственной аллергии. Тест эффективен как при истинной реакции, так и при псевдоаллергии. Тест торможения естественной миграции лейкоцитов in vivo сводится к подсчету в камере Горяева числа лейкоцитов в изотоническом растворе NaCl после полоскания им и испытуемым препаратом полости рта. Сначала проводят полоскание изотоническим раствором NaCl, затем раствором испытуемого препарата, затем проводят еще два полоскания через 15 и 30 минут и подсчитывают количество лейкоцитов

впоследней порции. Тест считается положительным, если число лейкоцитов снизилось на 30 % и более.

Оральный пищевой провокационный тест позволяет с вы-

сокой достоверностью доказать наличие или отсутствие у больного аллергической реакции на пищу. При выполнении теста доза аллергена увеличивается постепенно, пока не достигается нормальный объем обычно принимаемой пищи (чтобы избежать ложноотрицательных результатов). Начинают тест с минимальной переносимой дозы, чтобы не допустить развития выраженной реакции в самом начале провокации. Прирост дозы и интервалы между ними должны быть выбраны таким образом, чтобы предотвратить возникновение тяжелых реакций. Отрицательной проба считается тогда, когда съеденный максимальный объем продукта не провоцирует развитие каких-либо симптомов. Необходимо

28 –

наблюдать за пациентом на протяжении еще нескольких часов после завершения исследования. Важно помнить, что данный тест не назначается больным с наличием подтвержденной анафилактической реакции на исследуемый продукт.

Дополнительные методы: тест активации базофилов

В диагностике аллергии важным является не только оценка количества аллерген-специфических IgE, но и ответ эффекторных клеток на IgE. Использование кожного теста или других провокационных тестов не позволяет дифференцировать действие предполагаемого аллергена на продукцию специфических IgE и на активацию эффекторных клеток этими иммуноглобулинами.

Для выявления способности эффекторных клеток иммунной системы, вовлеченных в развитие аллергических реакций специфическими IgE, в 1991 году был разработан тест активации базо-

филов (Basophil Activation Test (BAT). С функциональной точки зрения стимуляция живых клеток в свежей цельной крови пациента аллергеном при проведении BAT является более точным показателем аллергии, чем измерение концентрации аллергенспецифического IgE. По сравнению с провокационным тестом, BAT менее инвазивен, более удобен и совершенно безопасен для пациента. BAT может быть использован, если обычные клинические (кожный тест) и лабораторные анализы (определение содержания специфических IgE в сыворотке крови) дают неоднозначные результаты или не согласуются с анамнезом. Кроме того, случаются ситуации, в которых проведение кожного или провокационных тестов выглядит слишком рискованным, поскольку BAT позволяет избежать контакта пациентов с исследуемым аллергеном.

Активацию базофилов можно проконтролировать различными способами, например, по высвобождению гистамина или по появлению на цитоплазматической мембране антигенов, связанных

– 29 –