Principy_diagnostiki_allergicheskih_zabolevanij_Belan_2025
.pdf
Рис. 1. Последовательность выполнения кожных проб (прик-тест) [4]
Внутрикожные пробы проводятся, главным образом, с инфекционными аллергенами (бактериальными, грибковыми и др.)
(табл. 6–8).
Техника постановки: инсулиновым или туберкулиновым шприцем внутрикожно вводят 0,05–0,1 мл инфекционного аллергена в область сгибательной поверхности предплечья или спины (концентрация аллергена в 10 раз меньше, чем при кожном тестировании; количество аллергенов – 4–5). Оценка через 24–48 часов.
|
|
Таблица 6 |
Шкала для оценки результатов прик-тестов |
||
|
|
|
Обозначение реакции |
Условные обозначения |
Описание реакции |
Отрицательная |
– |
Волдыря нет, эритема <1 мм |
Слабо |
+ |
Волдыря нет, эритема не |
положительная |
|
болеее 3 мм |
Положительная |
++ |
Волдырь не более 3 мм, |
|
|
эритема не более 5 мм |
Резко положительная |
+++ |
Волдырь 3–5 мм, эритема >5 мм |
Очень резко |
++++ |
Размеры реакции, превышают |
положительная |
|
предыдущие |
|
– 20 – |
|
|
|
Таблица 7 |
|
Шкала для оценки скарификационных кожных проб |
|||
|
|
|
|
Обозначение реакции |
Условные |
Описание реакции |
|
обозначения |
|||
|
|
||
Отрицательная |
– |
Размеры такие же, как в контроле |
|
|
|
с тест-контрольной жидкостью |
|
Сомнительная |
± |
Гиперемия без волдыря в месте |
|
|
|
скарификации |
|
Слабоположительная |
+ |
Волдырь диаметром 2–3 мм, заметен |
|
|
|
только при натягивании кожи |
|
Положительная |
++ |
Волдырь диаметром не более 5 мм, |
|
|
|
отчетливо виден без натягивания |
|
|
|
кожи, окружен зоной гиперемии |
|
Резко положительная |
+++ |
Волдырь в диаметре не более 10 мм |
|
|
|
с гиперемией и псевдоподиями |
|
Очень резко положи- |
++++ |
Волдырь более 10 мм в диаметре |
|
тельная |
|
с гиперемией и псевдоподиями |
|
|
|
Таблица 8 |
Шкала для оценки результатов внутрикожных проб |
||
|
|
|
Обозначение реакции |
Условные обозначения |
Описание реакции |
Отрицательная |
– |
Размеры такие же, как в |
|
|
контроле |
Сомнительная |
± |
Волдырь рассасывается |
|
|
медленнее чем в тест- |
|
|
контроле |
Слабоположитель- |
+ |
Волдырь диаметром 4–8 мм |
ная |
|
окружен гиперемией |
Положительная |
++ |
Волдырь диаметром 8–15 мм |
|
|
окружен гиперемией |
Резко |
+++ |
Волдырь диаметром 15–20 мм |
положительная |
|
с псевдоподиями, |
|
|
окруженный зоной гиперемии |
Очень резко |
++++ |
Волдырь более 20 мм |
положительная |
|
в диаметре, с псевдоподиями, |
|
|
лимфангоитом, дочерними |
|
|
волдырями по периферии |
|
|
и яркой гиперемией |
– 21 –
Если данные проб подтверждают данные анамнеза, значимость данного аллергена в развитии заболевания считается установленной. Несовпадение результатов кожного тестирования и клиникоанамнестических данных является показанием для определения специфических IgE и проведения провокационных проб.
Преимущества in vivo методов специфической аллергодиагностики:
-быстрота получения результата, наглядность для пациента, относительно низкая стоимость.
Недостатки in vivo методов специфической аллергодиагностики:
-невозможность проведения исследований при остром инфекционном заболевании, в периодах обострения или декомпенсации хронических инфекционных или аутоиммунных заболеваний, у больных злокачественными новообразованиями и приобретенными иммунодефицитами (в том числе СПИД), при беременности и лактации;
-субъективный (визуальный) характер оценки и интерпретации результатов кожных тестов;
-полуколичественный (в крестах) способ регистрации результатов;
-риск возникновения первичной (к новому аллергену) сенсибилизации;
-риск провокации (обострения) аллергического заболевания, возможность развития побочных (в том числе психосоматических) эффектов;
-отсутствие единых (по методике ВОЗ) стандартов контроля качества;
-необходимость ограничения или отмены терапии (в том числе гормональных или антигистаминных препаратов) за несколько дней до проведения обследования;
-необходимость в ряде случаев нескольких этапов диагностики (аллергометрическое титрование);
–22 –
-смена видов тестов, например, прик-теста на внутрикожный);
-возможность развития неспецифических реакций кожи (ангионевротический отек), затрудняющих правильную оценку результата;
-выявление при одном обследовании ограниченного числа аллергенов;
-необходимость исключения из диагностируемого перечня аллергенов, вызвавших системные реакции (анафилактический шок) при ранее проводимом кожном тестировании;
-необходимость специальных условий для обследования – специализированного аллергологического кабинета (стационара)
испециалиста-аллерголога;
-необходимость обеспечения средствами неотложной терапии процедуры кожного и провокационного тестирования.
Специфические IgE в сыворотке крови или материале из пораженного органа (табл. 9). Свидетельствуют о сенсибилизации, но не о клинической значимости аллергена. Показания для определения:
-ложноотрицательные результаты кожного тестирования;
-противопоказания для кожного тестирования.
Таблица 9
Полуколичественный способ оценки концентрации специфических иммуноглобулинов Е
Класс |
Концентрации специфических IgE, kU/L |
Интерпретация результатов |
0 |
<0,35 |
Отрицательный |
1 |
0,35–0,69 |
Неоднозначный, часто без |
|
клинических проявлений |
|
|
|
|
2 |
0,70–3,49 |
Слабо позитивный |
3 |
3,50–17,49 |
Позитивный, с выраженны- |
4 |
17,50–52,49 |
ми клиническими проявле- |
5 |
52,50–99,99 |
ниями |
6 |
>100 |
|
– 23 –
Преимущества in vitro методов специфической аллергодиагностики:
-отсутствие противопоказаний для проведения исследований при любом заболевании, беременности и лактации;
-объективный (с помощью приборов) характер оценки и интерпретации результатов лабораторных тестов;
-количественный (в международных единицах измерения концентрации) способ регистрации результатов;
-отсутствие риска возникновения первичной сенсибилизации, развития побочных эффектов или обострения аллергического заболевания;
-наличие единых (по методике ВОЗ) стандартов контроля качества, позволяющих сравнивать результаты, полученные на разных тест-системах;
-отсутствие необходимости ограничения или отмены проводимой терапии;
-проведение исследований в течение короткого (часы) времени в один этап;
-отсутствие влияния реактивности кожи и тканей на правильность оценки результата;
-возможность выявления при одном обследовании значительного (до нескольких сотен) числа аллергенов;
-отсутствие необходимости исключения из диагностируемого перечня аллергенов, вызвавших системные реакции;
-отсутствие специальных требований к условиям обследования – (специализированный аллергологический кабинет или стационар, специалист-аллерголог, средства неотложной терапии).
Недостатки in vitro методов специфическойаллергодиагностики:
-необходимость участия специалистов клинической лабораторной диагностики, специального оборудования и тест-систем;
-не могут полностью заменить методы диагностики in vivo (нет полной взаимозаменяемости);
–24 –
-невозможность корректного сравнения результатов исследований in vivo и in vitro при несоответствии экстрактов аллергенов, используемых для диагностики in vitro, экстрактам аллергенов, используемых для диагностики in vivo;
-относительно высокая стоимость.
Провокационные пробы. Провокационные тесты с медиаторами гиперчувствительности немедленного типа или их аналогами (гистамин, метахолин, аденозин) проводят с целью дифференциальной диагностики заболевания (бронхиальная астма, аллергический ринит), с аллергенами – для специфической диагностики, в том числе при подборе препарата для АСИТ.
Показания:
-несоответствие данных анамнеза и результатов кожного тестирования;
-наличие полисенсибилизации (например, поллиноз) с целью выбора аллергена для АСИТ;
-подозрение на пищевую аллергию с целью подбора базисного рациона;
-слабая интенсивность кожных проб для дифференциальной диагностики манифестной и субклинической форм аллергии.
Виды:
-ингаляционная;
-назальная;
-конъюнктивальная;
-сублингвальная;
-оральная пищевая.
Условие проведения провокационного аллергологического тестирования: все провокационные тесты (in vivo) может проводить только аллерголог-иммунолог, владеющий методикой выполнения данной процедуры в условиях специализированного аллергологического стационара или кабинета при наличии оснащения для оказания помощи в случае развития жизнеугрожающих состояний.
– 25 –
Ингаляционный тест применяют для диагностики бронхиальной астмы и проводят только в условиях стационара. Сначала оценивают показатели функции внешнего дыхания – ОФВ1 (первоначально не менее 70 % от должных величин). Затем проводят ингаляцию контрольной жидкостью. Процедуру можно проводить с помощью дозирующего струйного ингалятора. При отсутствии реакции производятся ингаляции аллергена в двукратных разведениях (1 : 1024, 1 : 512, 1 : 256 и т. д. до 1 : 16). Через каждые 10 мин после очередной ингаляции регистрируется ОФВ1. При снижении показателя более чем на 20 % тест считается положительным, и исследование прекращается. Бронхиальная астма обычно ассоциируется с бронхопровоцирующей концентрацией метахолина не выше 8 г/л. После проведения теста пациент должен оставаться под наблюдением врача 24 ч. В течение одних суток возможно проведение ингаляционного теста только с одним веществом (аллергеном).
Назальный тест применяют для диагностики аллергического ринита. В один носовой ход закапывают 1 каплю тестконтрольной жидкости. При отсутствии какой-либо реакции в другой носовой ход последовательно закапывают по 1 капле десятикратного разведения аллергена (1 : 100, 1 : 10), затем цельный аллерген. Интервал между закапыванием аллергена с более высокой концентрацией должен составлять не менее 20–30 мин. Увеличение концентрации аллергена производится только при отсутствии реакции на предыдущее разведение. Тест считается положительным при появлении симптомов ринита, подтверждённых данными риноскопии и риноманометрии.
Конъюнктивальный тест используют для диагностики аллергического конъюнктивита. В нижний конъюнктивальный мешок глаза закапывают тест-контрольную жидкость. При отсутствии реакции в другой конъюнктивальный мешок последовательно закапывают по 1 капле аллергена в двукратных разведениях
– 26 –
(1 : 2048, 1 : 1024, 1 : 512 и т. д. до 1 : 2). Интервал между нанесениями аллергена с разными концентрациями не менее 20–30 мин. Увеличение концентрации аллергена производится только при отсутствии реакции на предыдущую концентрацию.
Тест считается положительным при появлении симптомов конъюнктивита (рис. 2).
Рис. 2. Конъюнктивальный тест [5]
Сублингвальный тест применяют для диагностики лекарственной и пищевой аллергии. При наличии в анамнезе пациента тяжелых реакций, предположительно связанных с исследуемым препаратом или пищевым продуктом, предпочтительнее использовать лабораторные методы исследования. Перед началом тестирования измеряют частоту сердечных сокращений, артериальное давление, осматривают полость рта. Затем 1/8 (1/4) таблетки (или 2–3 капли растворенного лекарственного препарата) или натуральный пищевой продукт в разведении 1 : 10 помещают под язык пациента на 5–15 мин. Тест считается положительным при возникновении местной воспалительной реакции на слизистой оболочке
– 27 –
полости рта или системной реакции. После тестирования больной должен находиться под наблюдением врача в течение суток. За этот период времени врач проводит мониторинг состояния сер- дечно-сосудистой и дыхательной систем пациента.
Полоскательный тест по А. Д. Адо (тест торможения ми-
грации лейкоцитов in vivo, слизисто-десневой тест) заключается
втом, что при сенсибилизации к аллергену ополаскивание рта слабым раствором этого аллергена вызывает торможение естественной миграции нейтрофилов на поверхность слизистой оболочки рта. Данный тест используется для диагностики как пищевой, так и лекарственной аллергии. Тест эффективен как при истинной реакции, так и при псевдоаллергии. Тест торможения естественной миграции лейкоцитов in vivo сводится к подсчету в камере Горяева числа лейкоцитов в изотоническом растворе NaCl после полоскания им и испытуемым препаратом полости рта. Сначала проводят полоскание изотоническим раствором NaCl, затем раствором испытуемого препарата, затем проводят еще два полоскания через 15 и 30 минут и подсчитывают количество лейкоцитов
впоследней порции. Тест считается положительным, если число лейкоцитов снизилось на 30 % и более.
Оральный пищевой провокационный тест позволяет с вы-
сокой достоверностью доказать наличие или отсутствие у больного аллергической реакции на пищу. При выполнении теста доза аллергена увеличивается постепенно, пока не достигается нормальный объем обычно принимаемой пищи (чтобы избежать ложноотрицательных результатов). Начинают тест с минимальной переносимой дозы, чтобы не допустить развития выраженной реакции в самом начале провокации. Прирост дозы и интервалы между ними должны быть выбраны таким образом, чтобы предотвратить возникновение тяжелых реакций. Отрицательной проба считается тогда, когда съеденный максимальный объем продукта не провоцирует развитие каких-либо симптомов. Необходимо
–28 –
наблюдать за пациентом на протяжении еще нескольких часов после завершения исследования. Важно помнить, что данный тест не назначается больным с наличием подтвержденной анафилактической реакции на исследуемый продукт.
Дополнительные методы: тест активации базофилов
В диагностике аллергии важным является не только оценка количества аллерген-специфических IgE, но и ответ эффекторных клеток на IgE. Использование кожного теста или других провокационных тестов не позволяет дифференцировать действие предполагаемого аллергена на продукцию специфических IgE и на активацию эффекторных клеток этими иммуноглобулинами.
Для выявления способности эффекторных клеток иммунной системы, вовлеченных в развитие аллергических реакций специфическими IgE, в 1991 году был разработан тест активации базо-
филов (Basophil Activation Test (BAT). С функциональной точки зрения стимуляция живых клеток в свежей цельной крови пациента аллергеном при проведении BAT является более точным показателем аллергии, чем измерение концентрации аллергенспецифического IgE. По сравнению с провокационным тестом, BAT менее инвазивен, более удобен и совершенно безопасен для пациента. BAT может быть использован, если обычные клинические (кожный тест) и лабораторные анализы (определение содержания специфических IgE в сыворотке крови) дают неоднозначные результаты или не согласуются с анамнезом. Кроме того, случаются ситуации, в которых проведение кожного или провокационных тестов выглядит слишком рискованным, поскольку BAT позволяет избежать контакта пациентов с исследуемым аллергеном.
Активацию базофилов можно проконтролировать различными способами, например, по высвобождению гистамина или по появлению на цитоплазматической мембране антигенов, связанных
– 29 –
