Ðведение_в_виÑÑÑоÐогиÑ_2023
.pdf
двукратные разведения типовых гриппозных диагностических сывороток до разведения 1/320. К этим разведениям добавляют 0,25 мл вируссодержащей жидкости и смеси оставляют для контакта на 30-40 минут при комнатной температуре. После этого во все лунки вносят по 0,5мл 1% взвеси куриных эритроцитов.
Контроли реакции: контроль сыворотки (0,5мл сыворотки + 0,5мл эритроцитов) и контроль эритроцитов (0,5мл физ. раствора + 0,5мл эритроцитов).
Учет реакции через 1-2 часа (табл. 6).
Таблица 6 – Схема учета РТГА
Разведения |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
сывороток |
|
|
|
|
|
|
Контр. |
Контр. |
|
|
|
|
|
|
|
|
эрит- |
||
|
1/10 |
1/20 |
1/40 |
1/80 |
1/160 |
1/320 |
сыво- |
||
Гриппозные |
роци- |
||||||||
|
|
|
|
|
|
ротки |
|||
диагностичес- |
|
|
|
|
|
|
тов |
||
|
|
|
|
|
|
|
|||
кие сыворотки |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
A(H1N1) |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
A(H3N2) |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
B |
|
|
|
|
|
|
|
|
Заключение о типе вируса сделайте самостоятельно.
б) индикация и индентификация вирусов, культивируемых в культуре клеток Нер-2.
III этап исследования: учет цитопатогенного действия (ЦПД) исследуемого вируса на культуру клеток Нер-2.
Под малым увеличением микроскопа отмечают дегенерацию клеток, свидетельствующую о размножении вирусов. Монослой разрушен, оставшиеся клетки округлые, без отростков, с темной зернистой цитоплазмой.
С целью идентификации вирусов производят постановку РН в культуре клеток с аденовирусными диагностическими сыворотками к вирусам 3, 4 и 7 типов, т.к. они наиболее часто вызывают заболевания у людей.
Для постановки РН в три пробирки стерильной пипеткой вносят аденовирусные диагностические сыворотки 3, 4, 7 типов в объеме 0,2 мл. К каждой из этих сывороток добавляют другой стерильной пипеткой по 0,2 мл исследуемой вируссодержащей жидкости. Смеси оставляют для контакта на 1 час, затем каждой смесью в объеме 0,2 мл заражают флаконы с культурой клеток и добавляют по 0,8 мл среды 199.
Контроли реакции: контроль культуры клеток; контроль сывороток (культура клеток + смесь сывороток 3, 4, 7 типов); контроль вируса (культура клеток + вируссодержащая жидкость). Все флаконы (опытные и контрольные) помещают в термостат при температуре 370С на 48-72 часа.
IV этап исследования: учет РН в культуре клеток (табл. 7).
31
Таблица 7 – Схема учета РН в культуре клеток
Контроль |
Контроль |
Контроль |
Вирус + |
Вирус + |
Вирус + |
культуры |
смеси сы- |
вируса |
сыворотка |
сыворотка |
сыворотка |
клеток |
вороток |
|
3 типа |
4 типа |
7 типа |
|
|
|
|
|
|
Вконтроле культуры клеток и контроле смеси сывороток – монослой из нормальных клеток, т.е. отсутствует дегенерация.
Вконтроле вируса – дегенерация клеток за счет ЦПД исследуемого вируса.
Вопытных флаконах монослой из нормальных клеток остается в том флаконе, где произошла нейтрализация вируса, т.е. тип сыворотки совпал с типом инфицирующего агента.
Заключение о типе вируса сделайте самостоятельно.
2. Определение фаготипа бактерий (по схеме).
Провести фаготипирование культур микроорганизмов, выделенных от больного и предполагаемого источника инфекции для выявления эпидемиологической цепочки при вспышке инфекционного заболевания. Учет фаготипирования культур S. typhi, выделенных от больных брюшным тифом и брюшнотифозного носителя по демонстрации.
32
Занятие №3
Тема. Генетика и изменчивость бактерий. Антибиотики.
Цель занятия. Изучить генетику и изменчивость бактерий, характеристику и спектр действия антибиотиков. Освоить методы определения чувствительности бактерий к антибиотикам.
I.Теоретические знания:
1.Организация генетического материала бактериальной клетки. Факторы внехромосомной наследственности.
2.Виды генетической изменчивости. Использование генной инженерии в меди-
цине.
3.Антибиотики. Классификация антибиотиков по механизму антимикробного действия.
4.Методы определения чувствительности бактерий к антибиотикам. Осложне-
ния и последствия антибиотикотерапии.
II.Практические навыки:
1.Изучить методику определения чувствительности бактерий к антибиотикам методом серийных разведений.
2.Определение чувствительности бактерий к антибиотикам диско-
диффузионным методом.
33
МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ К ЗАНЯТИЮ
1.Организация генетического материала бактериальной клетки. Факторы внехромосомной наследственности.
Генетический материал бактериальной клетки представлен хромосом-
ной ДНК с гаплоидным набором генов. Хромосомная ДНК находится в супер-
спирализованной форме в виде кольца.
В бактериях могут присутствовать внехромосомные молекулы ДНК: плаз-
миды, транспозоны, вставочные последовательности.
Хромосомный и внехромосомный генетический материал свободно распо-
лагается в цитоплазме.
Факторы внехромосомной наследственности
Факторы внехромосомной наследственности (плазмиды, транспозоны,
вставочные последовательности) состоят из молекул ДНК, не являются жиз-
ненно важными для бактерий, но придают им новые свойства.
Плазмиды – кольцевидные молекулы ДНК, способные к саморепликации
и несущие от 40 до 50 генов. Они находятся в автономном состоянии в цито-
плазме бактерий и способны к самопереносу из одной клетки в другую при
конъюгации. Плазмиды кодируют свойства, дающие бактерии преимущества
при попадании в неблагоприятные условия существования.
Плазмиды подразделяют на различные категории в зависимости от
свойств, которые они кодируют у бактерий (табл. 8):
Таблица 8 – Классификация плазмид
Категории плазмид |
Свойства |
F-плазмида (от англ. fertility – |
Кодирует способность к переносу плазмид- |
плодовитость). |
ных и хромосомных генов при конъюгации |
|
бактерий через половые пили. |
R-плазмида (от англ. re- |
Кодирует устойчивость бактерий к антибак- |
sistance – противодействие) – |
териальным препаратам. |
плазмида резистентности. |
|
|
|
|
34 |
Плазмиды бактериоциноген- |
Кодируют синтез бактериоцинов (особых |
ности. |
белков), вызывающих гибель близкород- |
|
ственных бактерий. Например, бактериоцины |
|
E. coli вызывают гибель патогенных энте- |
|
робактерий. Бактериоцины могут быть полез- |
|
ны при лечении инфекций, вызванных анти- |
|
биотикорезистентными бактериями. |
Плазмиды патогенности. |
Кодируют синтез поверхностных бактериаль- |
|
ных антигенов, адгезинов, энтеротоксинов, |
|
гемолизинов и других факторов патогенности. |
Подвижные генетические элементы
Транспозоны – подвижные участки ДНК, которые способны перемещать-
ся внутри бактериальной хромосомы или между ДНК бактерий, плазмид и бак-
териофагов («прыгающие гены»). Помимо генов, кодирующих их способность
к перемещению по ДНК, транспозоны могут содержать структурные гены,
обеспечивающие бактерию новыми свойствами (устойчивость к антибиотикам,
токсинопродукция и др.).
Вставочные последовательности или инсерционные элементы (от англ.
insertion sequens – вставочные последовательности) – простейший тип генети-
ческих элементов, мигрирующих между хромосомами, внутри хромосомы,
между хромосомой и плазмидами. Содержат гены, необходимые для их пере-
мещения, новых свойств не кодируют.
Подвижные генетические элементы могут:
-распространять новые гены в популяции бактерий;
-координировать взаимодействие плазмид с хромосомой;
-вызывать изменения генов (мутацию, инактивацию) в местах их внедре-
ния в генетический материал.
Таким образом, внехромосомные молекулы ДНК бактериальной клетки способствуют разнообразным изменениям бактериального генома, появлению новых свойств и эволюционным изменениям микробной популяции в целом.
35
2. Виды генетической изменчивости. Использование генной инженерии в
медицине.
Мутации – это изменения последовательности нуклеотидов в бактериаль-
ной ДНК, которые ведут к изменению или утрате одного или нескольких фено-
типических признаков. Мутации у бактерий происходят с высокой частотой под влиянием очень многих внешних факторов, которые называются мутагена-
ми. Самые частые мутагены: УФ-, γ-лучи (физические), органические и неорга-
нические вещества (химические), транспозоны (биологические). Мутации бы-
вают: точечными (затрагивают один ген) и более протяженными (целый уча-
сток хромосомы). Они могут быть самопроизвольными и вызванными искус-
ственно. Мутации, которые приводят к возникновению новых полезных свойств, обеспечивают выживаемость бактериальных популяции.
Генетические рекомбинации – это передача новых генов от одной клетки к другой с приобретением новых свойств, закодированных в этих генах. Гене-
тические рекомбинации отличаются друг от друга способом попадания в клетку новых генов.
Виды генетических рекомбинаций: трансформация, конъюгация,
трансдукция, фаговая конверсия.
Трансформация – форма генетической изменчивости, при которой бакте-
рия-реципиент поглощает из внешней среды трофическим путем фрагменты ДНК погибшей бактерии-донора. Это приводит к образованию рекомбинант-
ных бактерий, обладающих некоторыми свойствами донорских клеток (рис. 10).
36
Рисунок 10 – Трансформация у бактерий (схема)
Впервые феномен трансформации был установлен Ф. Гриффитсом в
1928 г. на модели бескапсульного и капсульного пневмококков (рис. 11). Сле-
дует напомнить, что капсула пневмококков – мощный фактор патогенности,
способствующий возникновению септического течения инфекции и гибели ла-
бораторного животного. Для проведения опыта в качестве индикатора исполь-
зовали 3 белые мыши. Первую мышь заражали живыми, бескапсульными неви-
рулентными пневмококками. Второй мыши вводили убитую культуру капсуль-
ных вирулентных пневмококков; третьей мыши – смесь живых бескапсульных пневмококков и убитых капсульных пневмококков.
В результате из всех мышей, взятых в опыт, погибала третья мышь, т.к.
живые бескапсульные пневмококки поглощали фрагменты ДНК убитых кап-
сульных, приобретали ген, кодирующий синтез капсулы, превращались в виру-
лентные пневмококки и убивали мышь.
37
Рисунок 11 – Опыт Ф. Гриффитса по трансформации пневмококков
Конъюгация – передача генетического (хромосомного и нехромосомного)
материала от бактерии-донора к бактерии-реципиенту при их непосредствен-
ном контакте (рис. 12). Необходимым условием для конъюгации является нали-
чие у бактерии-донора F-плазмиды, которая контролирует синтез половых pili
на поверхности клеток-доноров.
а) |
б) |
Рисунок 12 – Конъюгация у бактерий (а – электронная микроскопия, б – схема)
Процесс конъюгации между бактерией-донором (F+) и бактерией-
реципиентом (F-) имеет следующие стадии:
•установление контакта между донором и реципиентом с помощью половых pili;
38
•прохождение генетического материала через канал половой pili от донора к реципиенту;
•рекомбинация между донорской и реципиентной ДНК.
F-плазмида может находиться как в автономном состоянии в цитоплазме,
так и в интегрированном с хромосомой клетки. Находясь в автономном состоя-
нии, она контролирует только собственный перенос при конъюгации. В резуль-
тате F- клетка превращается в F+ клетку, содержащую F-плазмиду и способную к конъюгации. Если F-плазмида интегрирована с хромосомой бактерии, то при конъюгации она контролирует не только собственный перенос, но и перенос части хромосомной ДНК в клетку-реципиент. С помощью интегрированной F-
плазмиды частота переноса хромосомных генов между бактериями существен-
но возрастает.
Трансдукция – перенос небольшого фрагмента хромосомной ДНК от клетки-донора к клетке-реципиенту с помощью умеренного бактериофага (рис. 13). В результате трансдукции бактерия-реципиент приобретает новые феноти-
пические признаки (ферментативные свойства, устойчивость к антибиотикам и др.). При выходе бактериофага из клетки-реципиента, фрагмент донорской трансдуцированной ДНК остается в хромосоме клетки, следовательно, сохра-
няются и новые фенотипические признаки. Таким образом, при трансдукции умеренный бактериофаг выполняет только транспортную функцию.
Рисунок 13 – Трансдукция у бактерий
39
Фаговая конверсия (от лат conversion – превращение) – получение бакте-
рией новых свойств в результате использования генов профага, интегрирован-
ного с бактериальной хромосомой. Например, ДНК умеренного дифтерийного фага содержит ген, который кодирует синтез дифтерийного экзотоксина (ген tox). Если ДНК такого умеренного фага интегрируется с ДНК дифтерийной па-
лочки, то она превращается в токсигенную, т.е. продуцирующую дифтерийный экзотоксин. При выходе из клетки умеренного фага дифтерийные бактерии утрачивают ген tox и теряют способность к продукции экзотоксина. Лизогенная конверсия выявлена также у возбудителей ботулизма, холеры и др.
Использование генной инженерии в медицине
•Получение живых вакцин. В основе лежит принцип аттенуации, предложен-
ный Л. Пастером. Аттенуация – ослабление вирулентности микробов под действием физических, химических или биологических факторов с сохране-
нием их иммуногенных свойств. Например, вакцинный штамм туберкулез-
ных бактерий (БЦЖ) был получен А.Ш. Кальметом и Ж-М.К. Жереном пу-
тем длительного (13 лет) культивирования возбудителя туберкулеза на пита-
тельной среде с желчью.
•Получение генно-инженерных вакцин (рекомбинантная дрожжевая вакцина против вирусного гепатита В содержит протективный HBs-антиген вируса).
•Разработка и внедрение в практику молекулярно-биологических методов ди-
агностики инфекционных заболеваний, например, ПЦР.
•Получение штаммов бактерий и микроскопических грибов с высокой про-
дукцией антибиотиков.
•Получение инсулина, гормонов, интерферона и других биологических ве-
ществ в бактериальных клетках с помощью генно-инженерных методов.
40
