- •Введение
- •1.1 Основные правила поведения в бактериологической лаборатории
- •1.3 Правила забора материала и хранения при особо опасных инфекциях
- •1.4 Оформление направления на микробиологическое исследование
- •1.5. Дезинфекция в микробиологической лаборатории
- •1.6. Стерилизация лабораторной посуды, подготовка к стерилизации
- •2.Изучение морфологии и тинкториальных признаков микробов.
- •2.1 Этапы приготовления мазка для иммерсионной микроскопии
- •2.2 Овладение методикой микроскопирования с иммерсионной системой
- •3.2 Метод Дригальского
- •3.3 Методы создания анаэробных условий
- •3.4 Этапы выделения чистой культуры анаэробных бактерий
- •3.5 Вирусологические методы
- •3.6 Реакция гемагглютинации (РГА)
- •3.7 Методы индикации бактериофагов
- •3.8 Реакция фаголизиса
- •3.9Реакция фаготипированияS.aureus
- •4. Идентификация микроорганизмов по генетической структуре.
- •4.1 Полимеразная цепная реакция (ПЦР)
- •4.2 Метод рекомбинации
- •5.1Бактериологический метод контроля эффективности стерилизации
- •5.2 Определение антибиотикочусвтвительности бактерий
- •6. Бактериологическая диагностика дисбактериоза кишечника.
- •8. Билогический метод и идентификация бактерий по вирулентности.
- •8.1 Заражение экспериментальных животных
- •(биологический метод)
- •8.2 Методы определения факторов вирулентности микроорганизмов
- •8.3 Методы определения персистентных свойств бактерий
- •9. Иммунологические методы диагностика инфекционных заболеваний.
- •9.1 Реакция агглютинации (РА) на стекле.
- •9.2 Развернутые реакции агглютинации Видаля, Вейгля и Райта
- •9.3 РПГА – реакция пассивной гемагглютинации
- •9.4 Реакция преципитации (РП)
- •9.5 Реакция нейтрализации токсина антитоксином (РН) на мышах
- •9.6 Реакция нейтрализации вирусов (РН) на мышах
- •9.7 Реакция торможения гемагглютинации (РТГА)
- •9.8 Реакции связывания комплемента (РСК)
- •9.10 Реакции непрямой иммунофлюоресценции (РИФ)
- •9.11 Иммуноферментный анализ (ИФА)
- •Список использованной литературы
- •Основная литература
- •Дополнительная литература
примере идентификации выделенной чистой культуры S.sonnei из испражнения при подозрении на дизентерию.
Компоненты |
Опыт |
Контроль |
|
|
|
1. МПБ |
+ |
+ |
2.Исследуемая дизентерийная культура |
+ |
+ |
(S.sonnei) |
|
|
3. Монофаг S. sonnei |
+ |
- |
|
|
|
Посевы инкубируют в термостате 18-24 часов при 370 С.
При наблюдении за посевами впервые часы бульон в пробирках слегка мутнеет вследствие размножения бактерий. В дальнейшем в контрольной пробирке (без бактериофага) помутнение усиливается; в пробирке с бактериофагом через 6 часов происходит просветление в результате лизиса бактерий. Учет реакции проводятся по просветлению МПБ в результате лизируещего действия монофага на бактерии.
3.9Реакция фаготипированияS.aureus
Определение фаготипа проводится с помощью специальных наборов типовых фагов и является одним из методов внутривидовой дифференциации бактерий. Реакция фаготипирования применяется с целью установления источников и путей передачи инфекции при госпитальных, кишечных заболеваниях и пищевых отравлениях.
Испытуемую суточную бульонную культуру S.aureusравномерно распределяют на поверхности подсушенного агара в чашке Петри. Дно чашки расчерчивают на 22 квадрата по числу фагов, затем капают фаги по одному в каждый квадрат. Посев инкубируют в термостате 18-24 часа при температуре 37°С.
35