- •Государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования
- •Государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования
- •Учебное пособие предназначено для студентов высших медицинских учебных заведений Рецензенты:
- •Общая патофизиология 9 общая нозология. Этиология и патогенез 9
- •Учение о реактивности и резистентности организма 23
- •Типовые патологические процессы 40
- •Список дополнительной литературы 105 предисловие
- •1. Контроль и коррекция исходного уровня подготовки студентов.
- •2. Выполнение обучающих заданий.
- •Занятие 2. Причины и условия возникновения патологических процессов. Повреждающее действие электрической энергии и механических факторов.
- •1. Контроль и коррекция исходного уровня подготовки студентов.
- •2. Выполнение обучающих заданий.
- •Занятие 3. Причинно-следственные отношения в патогенезе. Повреждающее действие изменений барометрического давления. Кислородное голодание.
- •1. Контроль и коррекция исходного уровня подготовки студентов.
- •2. Выполнение обучающих заданий.
- •Занятие 4. Экстремальные и терминальные состояния в медицине. Повреждающее действие высокой и низкой температуры
- •1. Контроль и коррекция исходного уровня подготовки студентов.
- •2. Выполнение обучающих заданий.
- •Методика определения потребления кислорода
- •Учение о реактивности и резистентности организма Занятие 5. Реактивность и резистентность организма, их роль в патологии. Факторы, влияющие на реактивность и резистентность
- •1. Контроль и коррекция исходного уровня подготовки студентов.
- •2. Выполнение обучающих заданий.
- •Методика подсчета количества лейкоцитов
- •Занятие 6. Иммунологическая реактивность организма. Иммунопатология
- •1. Контроль и коррекция исходного уровня подготовки студентов.
- •2. Выполнение обучающих заданий.
- •Занятие 7. Аллергия. Анафилаксия
- •1. Контроль и коррекция исходного уровня подготовки студентов.
- •2. Выполнение обучающих заданий.
- •Микроскопия препаратов
- •Типовые патологические процессы Занятие 8. Нарушения органнотканевого кровообращения и микроциркуляции
- •1. Контроль и коррекция исходного уровня подготовки студентов.
- •2. Выполнение обучающих заданий.
- •Занятие 9. Воспаление
- •1. Контроль и коррекция исходного уровня подготовки студентов.
- •2. Выполнение обучающих заданий.
- •Приготовление висячей капли
- •Приготовление мазка
- •Занятие 10. Лихорадка
- •1. Контроль и коррекция исходного уровня подготовки студентов.
- •2. Выполнение обучающих заданий.
- •Занятие 11. Типовые нарушения обмена веществ
- •1. Контроль и коррекция исходного уровня подготовки студентов.
- •2. Выполнение обучающих заданий.
- •Патофизиология органов и систем Занятие 12. Недостаточность кровообращения
- •1. Контроль и коррекция исходного уровня подготовки студентов.
- •2. Выполнение обучающих заданий.
- •Занятие 13. Нарушение функции проводниковой системы сердца. Аритмии. Артериальные гипертензии и гипотензии
- •1. Контроль и коррекция исходного уровня подготовки студентов.
- •2. Выполнение обучающих заданий.
- •Занятие 14. Патофизиология внешнего дыхания
- •1. Контроль и коррекция исходного уровня подготовки студентов.
- •2. Выполнение обучающих заданий.
- •Занятие 15. Патофизиология почек
- •1. Контроль и коррекция исходного уровня подготовки студентов.
- •2. Выполнение обучающих заданий.
- •Микроскопия осадка:
- •Ситуационные задачи
- •Занятие 16. Качественные и количественные изменения состава эритроцитов. Анемии. Эритроцитозы
- •1. Контроль и коррекция исходного уровня подготовки студентов.
- •2. Выполнение обучающих заданий.
- •Методика подсчета количества эритроцитов
- •Вычисление цветового показателя
- •Метод прижизненной (суправитальной) окраски ретикулоцитов бриллиант-крезилблау
- •Приготовление окрашенного мазка для изучения морфологии эритроцитов
- •Занятие 17. Лейкоцитозы. Лейкопении. Лейкемоидные реакции. Лейкозы
- •1. Контроль и коррекция исходного уровня подготовки студентов.
- •2. Выполнение обучающих заданий
- •Техника подсчета лейкоцитарной формулы
- •Разбор учебных клинических гемограмм
- •Ситуационные задачи
- •Занятие 18. Патофизиология печени
- •1. Контроль и коррекция исходного уровня подготовки студентов.
- •2. Выполнение обучающих заданий.
- •Занятие 19. Патофизиология пищеварения
- •1. Контроль и коррекция исходного уровня подготовки студентов.
- •2. Выполнение обучающих заданий.
- •Занятие 20. Патофизиология эндокринной системы
- •1. Контроль и коррекция исходного уровня подготовки студентов.
- •2. Выполнение обучающих заданий
- •1. Контроль и коррекция исходного уровня подготовки студентов.
- •2. Выполнение обучающих заданий.
- •Список основной литературы
- •Список дополнительной литературы Болезнетворное действие факторов внешней среды.
- •Патофизиология клетки.
- •Лихорадка.
- •Реактивность
- •Патофизиология иммунной системы.
- •Наследственность.
- •Патофизиология обмена веществ.
- •Опухоли.
- •Патофизиология крови.
- •Патофизиология сердечно-сосудистой системы
- •Патофизиология дыхания.
- •Патофизиология пищеварения и печени.
- •Патофизиология почек.
- •Патофизиология эндокринной системы.
- •Патофизиология нервной системы.
2. Выполнение обучающих заданий.
Опыт № 1 Экспериментальная гемолитическая анемия у кролика
За 3-4 дня до опыта в течение 3-х дней под кожу спины кролика вводят 3% раствор солянокислого фенилгидразина из расчета 0,5 мл на 1 кг веса, в результате чего у животного развивается гемолитическая анемия.
В крови, взятой из краевой вены уха, определяют количество эритроцитов в 1 л, содержание гемоглобина, вычисляют цветовой показатель и готовят мазки для изучения морфологии эритроцитов и подсчета ретикулоцитов.
Опыт № 2 Экспериментальная постгеморрагическая анемия у кролика
За 2-3 дня до опыта у кролика вызывают острую постгеморрагическую анемию путем кровопускания 30-40% объема крови.
В крови, взятой из краевой вены уха, изучают те же гематологические показатели, что и в опыте №1.
Методика подсчета количества эритроцитов
А. Кровь из уха кролика набирают в эритроцитарный меланжер до метки 0,5 и разводят в 200 раз 2% раствором поваренной соли (до метки 101). После тщательного встряхивания меланжера заполняют счетную камеру и производят подсчет эритроцитов по известным правилам.
Б. В предварительно высушенную чистую пробирку точно отмеривают пипеткой 4 мл 2% раствора поваренной соли. Осторожно выдувают в неё 0,02 мл крови, взятой из краевой вены уха кролика (кровь забирают пипеткой от гемометра Сали). Взвесь тщательно перемешивают и заполняют ею камеру.
Для вычисления количества эритроцитов в 1 л пользуются формулой:
,
где: А – число сосчитанных эритроцитов,
80 – количество малых квадратов, в которых считали эритроциты,
1/4000 – объем камеры над малым квадратом сетки Горяева в мкл,
200 – разведение крови в смесителе.
Определение концентрации гемоглобина
А. Унифицированный цианметгемоглобиновый метод. В основе метода лежит окисление гемоглобина железосинеродистым калием (красной кровяной солью) в метгемоглобин, который с ацетонциангидрином образует окрашенный цианметгемоглобин. Метод позволяет суммарно определить все разновидности гемоглобина за исключением сульфгемоглобина.
Для исследования в пробирку берут 5,0 мл трансформирующего раствора, содержащего указанные реактивы (железосинеродистый калий и ацетонангидрид) и добавляют 0,02 мл крови. Содержимое пробирки тщательно перемешивают и оставляют на 10 мин. Измерения проводят на спектрофотометре при длине волны 540 нм или фотоэлектрокалориметре при длине волны 520-560 нм (зеленый светофильтр) в кювете с длиной оптического пути 10 мм против холостой пробы (трансформирующий раствор).
Б. Гематиновый метод (метод Сали). Определение проводят в гемометре Сали. Этот прибор состоит из штатива, в котором по бокам располагаются запаянные пробирки с цветной стандартной жидкостью, а в середине находится открытая сверху градуированная стеклянная пробирка, показывающая количество гемоглобина в г/л (норма для человека 166,7 г/л)
Для определения в градуированную пробирку наливают 0,1N раствор соляной кислоты до нижней круговой метки. Затем набирают кровь в капиллярную пипетку до метки, т.е. в объеме 0,02 мл, и осторожно выдувают на дно градуированной пробирки гемометра. Пробирку несколько раз встряхивают и, заметив время, ставят в штатив на 5 минут для полного превращения гемоглобина в хлорид гематина. Через 5 минут гемометр поднимают до уровня глаз и сравнивают цвет испытуемой жидкости с цветом стандартов (обычно он темнее, чем в стандартных пробирках). С помощью пипетки к испытуемому раствору приливают по каплям дистиллированную воду и перемешивают стеклянной палочкой до тех пор, пока цвет испытуемой жидкости полностью не сравняется с цветом стандарта, отмечая при этом, какому делению шкалы соответствует уровень жидкости.
