Конспект - микробиология полости рта

экспозиции их промывают под проточной водой до полного исчезновения запаха дезинфектанта и хранят в специальной емкости;

Для дезинфекции ротационных инструментов используют средства «Гротонат» (фирма «Шульке и Майер») или средство «Деконекс Денталь ББ (фирмы «Борер Хеми АГ»). Инструменты погружают в одно из указанных средств сразу же после применения, не допуская подсушивания, на 30 минут. Одновременно с дезинфекцией обеспечивается и предстерилизационная очистка инструментов. Можно использовать также средства ИД-212-4% в течение 30 минут и ИД-220 - 30 минут. Каменные диски, как правило, используют однократно и затем после дезинфекции утилизируют;

Резиновые чашки, шпатели, ортопедические ножи-шпатели и др. обеззараживают в 3% растворе хлорамина – 60 минут, 4% р-ре средства «Лизетол» – 30 минут, ИД – 212 – 30 минут, 2% растворе средства Дюльбак-ДТБ/л – 45 минут, 5% растворе аламинола – 60 минут.

После дезинфекции все инструменты, за исключением шпателей ортопедических, ортопедических ножей-шпателей, подвергают предстерилизационной очистке и стерилизации;

В ортопедическом кабинете дезинфекции подлежат и зубопротезные изделия – перед направлением в зуботехническую лабораторию и перед внесением в полость рта;

Для дезинфекции оттисков из альгинатных силиконовых материалов, полиэфирной смолы гидроколлоида, зубопротезных заготовок из металла, керамики, пластмасс и других материалов применяют средство МД-520. Оттиски, зубопротезные заготовки предварительно отмывают водой, соблюдая при этом противоэпидемические меры индивидуальной защиты, затем дезинфицируют в неразбавленном растворе средства МД-520 в течение 10 минут под закрытой крышкой и промывают под проточной водой по 30 секунд. Средство МД-520 используют многократно в течение недели, обрабатывая при этом не более 50 оттисков. При изменении внешнего вида раствора его следует заменить;

Обеззараженные зубопротезные изделия помещают в индивидуальную упаковку для хранения и перед внесением в полость рта

98

ополаскивают водопроводной водой;

Обеззараживание ношенных протезов, поступающих от больных на коррекцию, производят в отдельной емкости.

Физиотерапевтический кабинет

В одном из помещений физиотерапевтического кабинета проводят диагностический осмотр врачом-стоматологом, который использует при этом индивидуальный стоматологический набор;

Съемные десневые и точечные электроды подвергаются дезинфекции путем кипячения в специально выделенных емкостях с крышкой в дистиллированнй воде 30 минут от момента закипания;

Используемые для аппликации в полости рта ватно-марлевые тампоны должны быть стерильными;

Тубусы к аппарату КУФ, предназначенные для ультразвукового облучения, обеззараживают кипячением в течение 30 минут;

Световоды для установки лазерного облучения, стеклянные электроды к аппарату дарсонвализации после каждого больного протирают тампоном, смоченным 70%этиловым спиртом и погружают в этот же раствор на 30 минут. Смену спирта осуществляют через 3-е суток;

Корневые иглы, используемые для электрокоагуляции, подвергают предстерилизационной очистке и стерилизации и используют однократно.

Систематизация приборов, процессов обработки и средств для дезинфекции и стерилизации в стоматологии

99

В целях профилактики внутрибольничных инфекций в ООМД осуществляются дезинфекционные и стерилизационные мероприятия, которые включают в себя работы по профилактической и очаговой дезинфекции, дезинсекции, дератизации, обеззараживанию, предстерилизационной очистке и стерилизации изделий медицинского назначения.

Дезинфекционные мероприятия

100

При плановой профилактической дезинфекции в ЛПО проводится обеззараживание:

-всех видов поверхностей внутрибольничной среды,

-изделия медицинского назначения,

-эндоскопы и инструменты к ним, используемые при "нестерильных" эндоскопических манипуляциях (без нарушения целости тканей) - ДВУ (дезинфекция высокого уровня),

-гигиеническая обработка рук медицинского персонала; обработка рук хирургов,

-операционного и инъекционного полей,

-медицинских отходов.

Необходимо иметь отдельные маркированные емкости с рабочими растворами дезинфекционных средств с плотно прилегающими крышками, используемые для обработки различных объектов.

Профилактическая дезинфекция по эпидемиологическим показаниям проводится с учетом эпидемиологических особенностей конкретной внутрибольничной инфекции.

4.4 Предстерилизационная очистка осуществляется в качестве само-

стоятельного процесса после дезинфекции изделий или при совмещении с ней. Ее цель - удаление с изделий медицинского назначения любых неорганических и органических загрязнений (включая белковые, жировые, механические и другие), в том числе остатков лекарственных препаратов, сопровождающееся снижением общей микробной контаминации для облегчения последующей стерилизации этих изделий. Она проводятся в централизованных стерилизационных отделениях (далее - ЦСО), а при их отсутствии - в отделениях ЛПО.

Перечень дезинфицирующих средств и средств для предстерилизационной очистки, рекомендуемых для применения в стоматологических учреждениях

(по материалам нормативно-правовых актов и документов)

для дезинфекции боров:

-«Гротонат», фирма «Шульке и Майер» ГмбХ, Германия.

для дезинфекции отсасывающих установок:

-«Оротол Ультра», Германия.

-«Шульке и Маейр МАТИК», Германия.

для дезинфекции оттисков:

101

-«МД – 520», Германия.

для дезинфекции прочего инструментария:

-«Дюльбак ДТБ/Л» («Дюльбак макси»), фирма «Петтенс- Франс-Химия», Франция.

-«Лизетол АФ», фирма «Шульке и Майер ГмбХ», Германия.

-«ГШК», Россия.

-«Секусепт-пульвер», фирма «Хенкель-ЭколабАБ», Финляндия.

-«Септодор-Форте», фирма «Дорвет Лтд», Израиль.

-«Деконекс денталь ББ», фирма «Бодер Хеми АГ», Швейцария.

-«ИД – 212», «ИД – 220», фирма Дюрер Денталь-Ораким», Германия.

-Перекись водорода 3% р-р, Россия.

-«Сайдекс», фирма «Серджикос Лтд», Великобритания, компания Джонсон и Джонсон, США.

-«Клорселт», фирма «Медентек Лтд», Ирландия.

-«Клиндезин-специаль», «Клиндезин-форте», «Клиндезинокси».

-«Мистраль»

-«Авантсепт»

-«Пресепт», фирма «Джонсон и Джонсон Медикал», США.

-«Хлорамин Б, ХБ».

Для гигиенической обработки рук медицинского персонала:

-НД – 410, Германия.

-Триклогель Хендгард (фирма Н:Media), АХД 2000 экспресс и др.

4.5. Современные стерилизационные технологии, применяемые в стоматологии

Для стерилизации применяют физические и химические методы. Выбор метода зависит от вида стерилизуемого материала, который,

102

после воздействия на него должен сохранить свои основные свойства (форму, эластичность, активность).

I. Физические методы стерилизации.

Наиболее распространенными в стоматологической практике остаются тепловые методы:

-прокаливание над спиртовкой или газовой горелкой;

-сухим жаром в воздушном стерилизаторе;

-паром под давлением в автоклаве;

-щадящее прогревание на водяной бане с терморегулятором.

Одним из самых надежных методов считают автоклавирование. В настоящее время в стоматологической практике получил распространение один из видов тепловой стерилизации в среде горячих стеклянных шариков в глассперленовом стерилизаторе при температуре до 2500С. Этим методом стерилизуют зубные боры, рабочие части зондов, гладилок.

Воздействие электромагнитного поля.Воздействие ультразвука.

Лазерное, световое и гамма-облучение.

II.Физико-химический метод стерилизации

Стерилизацию в ионизированной плазме следует считать комбинированным методом. Плазменная стерилизация – это принципиально новый метод обработки стоматологического инструментария и слепков, который имеет ряд преимуществ:

высокую эффективность деконтаминации микроорганизмов, в том числе анаэробных бактерий и спорообразующих бацилл, грибов, вирусов гепатита В, С, D;

малые габариты аппарата, удобные для обработки инструментов;

компьютерное программирование режима стерилизации;оборудование (плазменный стерилизатор) не требует нали-

чия вакуумной системы;является экологически безопасным, так как в качестве ра-

бочего газа используется аргон.

103

III. Химические методы стерилизации

Предполагают погружение стоматологических инструментов в растворы химических веществ с высокой бактерицидной активностью в сочетании с моющим эффектом и щадящим воздействием на материалы, например: «Клиндезин-форте», «Клиндезин-окси».

4.6. Микробиологический контроль за качеством проведения противоэпидемических мероприятий в лечебнопрофилактических учреждениях стоматологического профиля

Бактериологический контроль в стоматологических учреждениях проводят:

-в плановом порядке (1 раз в квартал),

-по эпидпоказаниям.

Объектами исследования являются:

воздушная среда;

объекты и предметы окружающей среды;

медицинский инструментарий;

перевязочный материал, белье;

кожа операционного поля, руки хирургов (на стерильность);

лекарственные средства (на стерильность).

Проводится плановое (2 раза в год) бактериологическое обследование медицинского персонала с целью выявления носителей золотистого стафилококка (исследованию подвергают слизь передних отделов носа).

Критериями оценки качества проведения дезинфекционных и стерилизационных мероприятий в ЛПО являются:

1. отрицательные результаты посевов проб со всех объектов внутрибольничной среды (в том числе контроль стерильности);

2. показатели обсемененности воздуха, не превышающие установ-

104

ленные нормативы

4.6.1. Контроль эффективности дезинфекции

Для контроля работы дезинфекционных камер используют эталонные культуры, например, стафилококк – при обработке вещей из очагов инфекций, вызванных неспорообразующими микроорганизмами, споры антракоидной палочки – при дезинфекции вещей из очагов инфекций, вызванных спорообразующими микробами.

Исследования микробной обсемененности объектов внешней среды

О качестве дезинфекции объектов окружающей среды в учреждениях, осуществляющих медицинскую деятельность, судят по отсутствию на них после обработки:

3.золотистого стафилококка,

4.синегнойной палочки,

5.сальмонелл

6.бактерий группы кишечной палочки.

По эпидемиологическим показаниям номенклатура исследований микробной обсемененности объектов внешней среды может быть расширена.

Ориентировочный перечень объектов, подлежащих санитарнобактериологическому контролю методом смывов:

-оборудование операционного блока, рабочие и операционные столы, стойки, руки персонала, участвующего в операции;

-оборудование и руки персонала послеоперационных палат, отделений, палат реанимации и интенсивной терапии, перевязочных, процедурных;

-медицинские изделия многоразового использования;

-полотенца и приспособления для обработки рук персонала;

-внутренняя поверхность шкафов и холодильников для хранения лекарственных препаратов и изделий медицинского назначения;

-внутренняя и наружная поверхности бактерицидных камер для хранения простерилизованных изделий медицинского назначения.

Отбор проб производят методом смывов с помощью стерильных ват-

105

ных тампонов в пробирку с 2 мл 0,1% пептонной воды с добавлением 1% тиосульфата натрия (для нейтрализации хлорсодержащих дезинфицирующих растворов) или марлевой салфетки (5x5см). При контроле мелких предметов смывы отбирают с поверхности всего предмета, при контроле предметов с большой поверхностью смывы проводят с площади не менее 100 см2, тщательно протирая поверхность. Необходимо обращать внимание на места, труднодоступные для мытья и дезинфекции. Одним тампоном можно производить смыв с нескольких однородных предметов.

Выделение стафилококков

Первый день: делают высев 0,2 - 0,3 мл смывной жидкости в пробирку с 5,0 мл 6,5% солевого бульона. Засеянные пробирки инкубируют при 37 °С в течение (24 +/- 2) ч, после чего делают высев на желточно-солевые среды на основе сред: элективно-солевой агар, стафилококк-агар, маннитол-агар или среда N 10 по ГФ XII, агар Байд-Паркер.

Второй день: на вышеуказанных средах стафилококк растет в виде круглых, блестящих, маслянистых, выпуклых, пигментированных колоний. Следует учитывать, что стафилококки, выделенные от человека, дают положительную лецитовителлазную реакцию в 60 - 70% случаев. Отвивка на скошенный агар для дальнейшего исследования не менее 2 колоний, подозрительных на стафилококк. Для исследования отвивают прежде всего колонии, дающие положительную лецитовителлазную реакцию (образование радужного венчика). При отсутствии на чашках таких колоний дальнейшему исследованию подвергаются пигментированные колонии, схожие по морфологии со стафилококком. При одновременном наличии на чашках колоний стафилококка, отличающихся по пигменту, следует отвивать не менее двух колоний различного вида. Пробирки с посевом помещают в термостат при 37 °С на (24 +/- 2) ч.

Третий день (идентификация по общепринятой схеме):

после инкубации у выделенных штаммов проверяют морфологию, тинкториальные свойства (окраска по Граму) и наличие плазмокоагулирующей активности в реакции плазмокоагуляции (РПК).

106

Окраску по Граму проводят общепринятым методом. Под микроскопом окрашенные по Граму стафилококки имеют вид фиолетовосиних кокков, располагающихся гроздьями или небольшими кучками ("кружево").

Если культура обладает только плазмокоагулирующей или только лецитовителлазной активностью, то для окончательного ответа требуется учитывать другие признаки, позволяющие определить принадлежность штамма к виду S.aureus (ферментация маннита, гемолитическая активность).

Четвертый день: учет результатов дополнительных тестов. При выделении культуры S.aureus ее фаготипируют по требованию эпидемиологов. Окончательная выдача ответа.

Выделение УПЭ

Для обнаружения бактерий группы кишечных палочек делают высев 0,2 - 0,3 мл смывной жидкости в пробирку с 5,0 мл среды Кесслера. Засеянные пробирки инкубируют при 37 °С в течение (24 +/- 2) ч и делают пересев на среду Эндо. Выросшие колонии на среде Эндо подвергают дальнейшему изучению для установления их возможной принадлежности к патогенным энтеробактериям (схемы для идентификации энтеробактерий описаны в разделе: «Возбудители острых кишечных инфекций»).

Выделение сальмонелл

Для обнаружения сальмонелл делают высев 0,2 - 0,3 мл смывной жидкости в пробирку с 5,0 мл одной из сред обогащения (магниевая, селенитовая или среда Раппапорта-Вассилиадиса). Засеянные пробирки инкубируют при 37 °С в течение 18 - 20 ч, делают пересев на среду Эндо и висмут-сульфит агар с последующим отбором подозрительных колоний и их идентификацией по стандартной схеме.

Выделение Pseudomonas aeruginosa

Для обнаружения синегнойной палочки делают высев на среду N 8 (бульон для накопления стафилококков и синегнойной палочки) и

107