
МУ Микробиология Лабораторные
.pdfИммунитет обусловлен наличием антитоксинов, действующих против ток-
сических веществ, выделяемых пневмококками. Иммунитет нестерильный, сопро-
вождающийся скрытым диплококконосительством.
Специфическая терапия и профилактика. Вакцину против диплококковой септицемии телят, ягнят и поросят готовят из штаммов Str. pneumoniae, выделен-
ных из указанных видов животных. Культуры выращивают на полужидком агаре,
инактивируют 0,4 % раствором формалина, проверяют на стерильность, безвред-
ность (на морских свинках), активность (на белых мышах).
Ассоциированная (поливалентная) вакцина против паратифа, пастереллеза и диплококковой септицемии поросят включает в себя, кроме Pasteurellamultocida и Salmonellacholerasuis, бактериальную массу Str. pneumoniae.
Сыворотку против диплококковой септицемии телят, ягнят и поросят полу-
чают гипериммунизацией волов убитыми и живыми культурами возбудителя. Ан-
тиген для гипериммунизации волов – продуцентов сыворотки готовят из трех им-
муногенных штаммов, выделенных от телят, ягнят и поросят, путем выращивания их на питательной среде в реакторах с последующим обезвреживанием формали-
ном.
ВОЗБУДИТЕЛЬ ИНФЕКЦИОННОГО МАСТИТА КОРОВ
Streptococcusagalactiae
Мастит у коров вызывают микробы более 80 видов, но основными возбуди-
телями являются маститный стрептококк и патогенные стафилококки.
Морфология. Маститные стрептококки – мелкие чуть сплющенные или овальные кокки (1 мкм), располагающиеся в патологическом материале или с жидких питательных сред длинными цепочками и короткими цепочками в мазках из культур с плотных питательных сред. Грамположительный, хорошо окрашива-
ется всеми анилиновыми красителями, спор и капсул не образуют, неподвижны.
Культуральные свойства.Аэроб. На обычных питательных средах растет слабо, добавляют дефибринированную кровь или сыворотку. На сывороточном МПБ - мелкозернистый осадок, при этом среда прозрачная. На кровяном МПА -
121
мелкие (точечные) блестящие сероватые колонии, окруженные зоной гемолиза.
МПЖ – не разжижает.
Биохимические свойства.Ферментирует с образованием кислоты глюкозу,
лактозу, сахарозу, мальтозу, салицин; не ферментирует сорбит и дульцит. МПЖ и свернутую сыворотку не разжижает, не обесцвечивает метиленовое молоко, лак-
мусовое молоко изменяет частично.
Патогенность. Вирулентность маститного стрептококка непостоянна.
Наиболее вирулентные стрептококки содержаться в гнойном экссудате из вымени коров, больных острым маститом. Выращенные на питательных средах, особенно не содержащих крови, культуры этого микроорганизма слабовирулентны. Культу-
ры, 2-3 раза пересеянные на простые питательные среды, авирулентны.
Патогенез. Обусловлен воздействием на ткани вымени и всего организма стрептококковых токсинов и ферментов. Стрептококки, размножаясь на слизи-
стых оболочках, вызывают катарально-гнойное воспаление. Проникая вглубь тка-
ней, обуславливают нагноительные процессы.
Устойчивость.В высушенном гнойном экссудате – 2-3 мес. 85 °С - 30 мин.
Чувствителен к окситетрациклину, полимиксину. Замораживание консервирует.
Дезсредства: 3 % гидроксид натрия, 1 % формалин.
Лабораторная диагностика.Патологический материал: молоко - первые струйки сдаивают в отдельную посуду и уничтожают. Бактериологическое иссле-
дование проводят не позднее 2 часов после взятия пробы.
Микробиологическими исследованиями при мастите выявляют этиологию болезни и свойства возбудителя. Диагноз субклинического мастита ставят на ос-
новании результатов комплексного исследования: клинического осмотра всех жи-
вотных; физико-химических анализов молока (проба с мастидином); иммунологи-
ческих показателей молока (повышенное фагоцитарное число, положительная кольцевая РА с молоком, повышенное число лейкоцитов); бактериологического исследования.
Проводят микроскопию мазков, для чего готовят тонкие мазки-отпечатки и окрашивают азурэозином (краска Гимза) или синькой Леффлера. В результате
122
можно обнаружить не только стрептококки, но и клеточные элементы в препара-
ты, определить фагоцитарное число. Обнаружение в мазках стрептококков и по-
вышенного количества лейкоцитов указывает на воспаление молочной железы.
Чистую культуру маститного стрептококка получают путем посева секрета на кровяной МПА в чашках Петри, суточного инкубирования при 37 °С и последую-
щего пересева типичной для данного микроба колонии на сывороточный МПБ и кровяной агар. Полученную культуру идентифицируют с учетом морфологиче-
ских, культуральных, биохимических, гемолитических свойств и по антигенной структуре (РДП, МФА со специфическими сыворотками).
Штаммы, обладающие скрытой гемолитической способностью, видимой зо-
ны гемолиза не образуют. Для выявления их потенциальной гемолитической ак-
тивности используют САМР (КАМП-метод), получивший свое название по пер-
воначальным буквам фамилий австралийских исследователей – Кристи, Аткинс и Мунх-Петерсон. Метод заключается в том, что на пластинчатый кровяной агар в чашке Петри по диаметру петлей высевают в виде прямой полоски β-
гемолитический стафилококк. Отступив от нее 2-3 мм и перпендикулярно к ней,
высевают исследуемые штаммы стрептококков (по 3-4). Выдерживают в течение суток при 37 °С. Агалактийный стрептококк проявляет гемолиз в зоне, близкой к полоске выросшего стафилококка.
Биопробу ставят на двух молодых мышах или морских свинках внутрибрю-
шинно в дозе 0,5 мл, после гибели их вскрывают и из крови сердца делают высевы на МПА (для выделения чистой культуры маститного стрептококка).
Иммунитет. Непродолжительный и слабый.
Специфическая терапия отсутствует.
Контрольные вопросы:
1.Что является исследуемым материалом при диагностике стафило- и
стрептококкозов.
2.Что является фактором вирулентности стафилококков.
3.Что относится к культуральным свойствам патогенных стафилококков.
4.Как определить патогенность стафилококков.
123
5.Что является фактором вирулентности стрептококков.
6.Перечислить схему лабораторной диагностики стафилококкозов.
7.Перечислить схему лабораторной диагностики стрептококкозов.
Тема 3.2. Микробиологическая диагностика рожи свиней и листериоза Цель занятия: ознакомить студентов с возбудителями рожи свиней и листе-
риоза, изучить их морфологические особенности, распространение возбудителей в природе и значение патологии сельскохозяйственных животных; методы микро-
биологической диагностики заболеваний, вызванных возбудителями рожи свиней и листериоза.
Содержание:
1.Патологический материал.
2.Микроскопия мазков.
3.Культуральные и биохимические свойства возбудителя.
4.Биологическая проба.
5.Специфическая терапия и профилактика болезни.
6.Некоторые особенности заболевания.
ВОЗБУДИТЕЛЬ РОЖИ СВИНЕЙ Род Erysipelothrix
Вид Erysipelothrixrhusiopathiae
(Erytres - красный, pelor - кожа, thrix – волос; rhusio – красный, patiae – страдание)
Инфекционная болезнь, характеризующаяся при остром течении септицемией и воспалительной эритемой кожи (крапивницей) - на коже спины, боков и живота появляются пятна неправильной ромбовидной формы, от бледно-розового до тем-
но-красного цвета, исчезающие при надавливании; при хроническом течении - эн-
докардитом и артритами. Болеют свиньи преимущественно в возрасте 3-12 мес.
Бактерию открыли Л. Пастер и Л. Тюилье в 1882 г.
124

Рисунок 89 - Возбудитель рожи свиней:
Слева: гладкие S-формы (колонии возбудителя на питательной среде и мазок под микроскопом);
Справа: шероховатые R-формы (колонии возбудителя на питательной среде и мазок под микроскопом).
Морфология. Старое название возбудителя Erysipelothrix insidiosa (опасный,
коварный). Тонкая слегка изогнутая мелкая полиморфная палочка длиной 2-2,5
мкм. В мазках из патологического материала и культур палочки располагаются одиночно, в виде больших скоплений, парами. В мазках из бородавчатых разра-
щений возбудитель располагается в виде тонких переплетающихся, но не ветвя-
щихся нитей. Нитевидные формы могут быть и в старых культурах (т.е. возбуди-
125

тель проявляет полиморфизм). Грамположительный, спор и капсул не образует,
неподвижен.
Культуральные свойства. Аэробы или факультативные анаэробы, мик-
роаэрофилы. Возбудитель неприхотлив к питатель- |
|
ным средам. Для культивирования используют |
|
МПА, МПБ. Для оптимальных условий роста нуж- |
|
ны среды, содержащие 1-2 % глюкозы или кровя- |
|
ную сыворотку. Элективная среда –Сент-Иваньи |
|
(МПА + 0,1% кристаллвиолет + 1% азид Na). Рост |
|
через 1-2 суток. МПБ - легкое помутнение, на дне |
|
небольшой осадок - при встряхивании в виде тон- |
|
чайшей ниточки (муаровая ткань – лента, опалес- |
|
ценция). МПА – нежный рост, мелкие, прозрачные, |
Рисунок 90 - Рост возбу- |
|
|
росинчатые колонии. Типичной является гладкая |
дителя на жидкой пита- |
колония с ровными краями, но встречаются изме- |
тельной среде в виде "ко- |
сички" (слева) и на МПЖ |
|
ненные О- и R-формы, особенно при хроническом |
(справа). |
течении. Для патогенных штаммов характернаS-форма колоний. МПЖ – в виде ершика без разжижения среды (рисунки 89, 90).
Биохимические свойства выражены слабо. Ферментирует лактозу, молоко свертывает, образует сероводород, не изменяет салицин. Гемолиза не дает. Ката-
лазу не образует. Не обесцвечивает индикаторные среды с красками: нейтраль-
рот, конго-рот, метил-рот.
Антигенная структура. Рожистая бактерия содержит два антигена: термо-
лабильный групповой и термостабильный видовой. Два серовара: серовар А более вирулентен для свиней, выделяется в культурах от больных свиней в 95 % случа-
ев, а серовар В – менее вирулентен. Общим видовым антигеном является антиген
N.
Устойчивость высокая.Запаянная бульонная культура – до 35 лет.В трупах –
3-4 мес. В засоленной свинине - до 6 мес., в копченых продуктах - до 3 мес. Жаре-
ние и тушение не стерилизует мясо от рожистой бактерии. Прямые солнечные лу-
126

чи – 2 недели, 50 °C - 15 мин, 70 °С – 5 мин. Дезсредства: 2-3 % гидроксид натрия, 20 % взвесь свежегашеной извести, 2 % формальдегид, 5 % кальцинированная со-
да.
Патогенность.Восприимчивы свиньи, особенно в возрасте 3 – 12 мес. Спо-
радические (единичные) случаи болезни отмечены у лошадей, КРС, МРС, оленей,
собак. Восприимчивы дельфины, человек, многие виды грызунов и птицы. Носи-
телями являются морские и пресноводные рыбы. У человека это заболевание называется эризипелоид, поражения в основном на ладонях. Также у человека встречается рожистое воспаление кожи, но здесь возбудителем являются гемоли-
тические стрептококки. Через поврежденную кожу они могут также проникнуть в кровь и инфицировать любой орган или же вызвать генерализованную инфекцию
– сепсис. Самые чувствительные лабораторные животные: белые мыши, голуби.
Сроки гибели от 2-х до 4-х суток. Морские свинки не чувствительны!
Рисунок 91 - Клинические признаки рожи свиней.
127

Патогенез.Заражение в основном алиментарно, возможно трансмиссивно и через поврежденную кожу. Бактерии, размножаясь в месте первичной локализа-
ции (миндалины и солитарные фолликулы), выделяют токсины, обусловливающие сенсибилизацию организма, которая проявляется в виде различных поражений кожи. Через несколько дней микробы преодолевают защитные барьеры, проника-
ют в кровь и лимфу, размножаются в ней и разносятся по организму. Возникает сепсис, лихорадка, дистрофические и некротические изменения в паренхиматоз-
ных органах и сердечно-сосудистой системе, появляются тромбы, отеки, животное гибнет.
При хорошо выраженной реактивности животного организм оказывает дей-
ственную защиту против возбудителя, действие токсинов блокируется, но лизиса бактерий полностью не происходит (незавершенный фагоцитоз). Проявляется ал-
лергическая реакция в виде эритем.
Факторами вирулентности являются эндотоксины и агрессины.
Клинические признаки. Инкубационный период 2-5 дней, иногда 2 недели.
Болезнь может протекать в острой и хронической формах. При острой форме отмечают лихорадку,
угнетение, слабость задних конечностей, свиньи много лежат, стараются зарыться в подстилку.
Конъюнктивит, гастроэнтерит, на коже эритемы,
позднее они приобретают темно-багровый цвет.
Слабость сердца, одышка, кожа живота, под- |
Рисунок 92–Фибринозные |
|
грудка, конечностей цианотична. При отсутствии отложения на клапанах серд-
ца при роже свиней.
лечебной помощи через 2-4 дня животное поги-
бает. При хронической форме – бородавчатый эндокардит (на клапанах сердца бо-
родавчатые разращения в виде цветной капусты), артриты. Иногда некротизиру-
ются небольшие участки кожи (рисунки 91,92).
Лабораторная диагностика. Патологический материал: труп целиком, па-
ренхиматозные органы, трубчатая кость, кусочки кожи; при подозрении на хрони-
ческую форму - обязательно сердце с кровью, при наличии артритов - суставную
128
жидкость. Материал консервируют 30-40 % глицерином на стерильным физиоло-
гическом растворе или в насыщенном растворе поваренной соли. Трубчатую кость, очищенную от мягких тканей, обертывают марлей, пропитанной 2-3 % рас-
твором фенола.
Проводят микроскопию мазков-отпечатков по Граму; ставят МФА (из парен-
химатозных органов готовят суспензию тканей на солевом растворе и окрашивают флуоресцирующей сывороткой).
Делают посевы на простые питательные среды и инкубируют при 37 °С сут-
ки. Выросшую бульонную культуру идентифицируют по биохимическим свой-
ствам. Смыв агаровой культуры применяют в качестве антигена для РА. Ставят РДП и МФА, для чего биологическая промышленность выпускает сухие рожистые люминесцентные сыворотки для прямого РИФ.
Биопробу проводят на белых мышах (подкожно 0,1-0,2 мл) и голубях (внут-
римышечно в грудную мышцу 0,2-0,3 мл). Заражают суспензией из тканей орга-
нов. Наблюдение ведут до 7 дней. Мыши и голуби погибают через 2-4 дней. Их вскрывают и из органов делают посевы для выделения чистой культуры возбуди-
теля. При заражении белых мышей следует исключить Erysipelothrix murisepticum
– возбудителя септицемии мышей, по морфо-культуральным свойствам сходного с бактериями рожи свиней. E. murisepticum непатогенна для голубей.
При бактериологических исследованиях на рожу свиней следует учитывать возможность обнаружения возбудителя листериоза, схожего по тинкториальным,
морфо-культурально- и биохимическим свойствам с бактерией рожи свиней.
Иммунитет стойкий и длительный.
Специфическая профилактика и терапия. Первую вакцину против рожи-
стой бактерии создали Пастер и Тюилье в 1883 г путем аттенуации рожистой бак-
терии. На основе этой вакцины в России Конев получил собственную вакцину.
Первая вакцин Конева была ослаблена пассированием вирулентной рожистой бак-
терии через семь кроликов. Она не убивала голубей, но была вирулентна для мы-
шей. Вторая вакцина Конева была ослаблена пассированием через четырех кроли-
ков. Она убивала молодых мышей и голубей. Вакцины применялись более 30 лет.
129
Затем они были модифицированы в связи со снижением вирулентности и иммуно-
генности.
1. Депонированная живая вакцина против рожи свиней (матрикс второй вак-
цины Конева). Адъювант стимулирует иммуногенез и создает депо. Используют матриксный штамм 2-ой вакцины Конева.
2. Вакцина живая из слабовирулентного штамма VR-2. Вакцинный штамм
VR-2 был выделен из трупа свиньи в 1931 г румынским исследователем В. Вино-
градником. В процессе многократных пересевов на питательных средах штамм постепенно ослабил свои первоначальные вирулентные свойства, стал авирулент-
ным для свиней и кроликов и слабовирулентным для белых мышей и голубей.
Иммунитет сохраняется до 6 мес.
3.Сухая вакцина ССВР – слабовирулентная культура вакцинного штамма рожистой бактерии VR-2, концентрированная буферной взвесью гидрата окиси алюминия. При разведении опалесцирует.
4.Концентрированная гидроокисьалюминиевая (ГОА) фармолвакцина – ад-
сорбированная на гидроксиде алюминия и инактивированная формалином культу-
ра возбудителя рожи свиней серовара В.
5. Сыворотка против рожи свиней – получают путем гипериммунизации свиней, лошадей, волов или овец культурой возбудителя рожи – применяют с профилактической и лечебной целью. Иммунитет 14-30 дней.
ВОЗБУДИТЕЛЬ ЛИСТЕРИОЗА РодListeria
1.Listeria monocytogenes – основнойвид;
2.Listeria Jvanovi – септицемияуягнят.
Это острое инфекционное заболевание животных и птиц, характеризующиеся поражением центральной нервной системы, сепсисом, абортами, маститами. Бо-
леют грызуны, свиньи, жвачные, лошади, некоторые виды пушных зверей, птицы.
Восприимчив и человек.
130