Добавил:
Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:

Лабы Гульнову / Абсорбция

.docx
Скачиваний:
0
Добавлен:
13.03.2025
Размер:
85.42 Кб
Скачать

Абсорбционная спектроскопия макромолекул: белки

АННОТАЦИЯ

Были сняты и проанализированы спектры поглощения растворов БСА, триптофана и тирозина, растворённых в фосфатном буфере и растворе гидроксида натрия. Установлено, что абсорбционные свойства БСА схожи с триптофаном. При денатурации белка мочевиной наблюдается уменьшение коэффициента экстинкции.

ВВЕДЕНИЕ

Молекулы поглощают свет. Длины волн, при которых происходит поглощение, и степень поглощения зависят от структуры и окружения молекулы, поэтому абсорбционная спектроскопия является полезным инструментом для характеристики макромолекул различного размера.

Первичная структура белка – последовательность аминокислот в полипептидной цепи.

Вторичная структура белка – локальное упорядочивание фрагмента полипептидной цепи, стабилизированное водородными связями. α-спирали – плотные витки вокруг длинной оси молекулы, один виток составляют 3,6 аминокислотных остатка, и шаг спирали составляет 0,54 нм, спираль стабилизирована водородными связями между H и O пептидных групп, отстоящих друг от друга на 4 звена. β-листы (складчатые слои) – несколько зигзагообразных полипептидных цепей, в которых водородные связи образуются между относительно удалёнными друг от друга (0,347 нм на аминокислотный остаток) в первичной структуре аминокислотами или разными цепями белка.

Третичная структура — пространственное строение полипептидной цепи. Структурно состоит из элементов вторичной структуры, стабилизированных различными типами взаимодействий, в которых гидрофобные взаимодействия играют важнейшую роль. В стабилизации третичной структуры принимают участие: ковалентные связи (между двумя остатками цистеина — дисульфидные мостики); ионные связи между противоположно заряженными боковыми группами аминокислотных остатков; водородные связи; гидрофильно-гидрофобные взаимодействия при взаимодействии с окружающими молекулами воды белковая молекула

«стремится» свернуться так, чтобы неполярные боковые группы аминокислот оказались изолированы от водного раствора; на поверхности молекулы оказываются полярные гидрофильные боковые группы.

Четвертичная структура – взаимное расположение нескольких полипептидных цепей в составе единого белкового комплекса.

Оптическая плотность в спектроскопии – это мера ослабления света прозрачными объектами.

𝐷 = lg 𝐼0

𝐼

(1)

Закон Бугера — Ламберта — Бера — физический закон, определяющий ослабление параллельного монохроматического пучка света при распространении его в поглощающей среде:

𝐷 = 𝐶𝑙𝜀 (2)

где D - оптическая плотность раствора, l - длина пути, которую прошёл пучок света в растворе, ɛ - коэффициент молярной экстинкции. Коэффициент молярной экстинкции показывает насколько сильно химическое вещество поглощает свет при определенной длине волны. Зависимость вероятности поглощения от длины волны называют спектром поглощения.

МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ

  1. Приготовление растворов для исследования:

Получите порошок белка (БСА). Рассчитайте, навеску какой массы вы должны сделать, чтобы получить 2 мл раствора концентрации 1*10-5 М (учитывая, что молекулярная масса БСА около 67000 Да). Проверьте свои расчеты у преподавателя. Приготовьте навеску белка и растворите её в 2 мл фосфатного буфера (рН 7). Дайте раствору постоять не менее 20 мин в темном прохладном месте. Растворы тирозина и триптофана в двух средах получите у преподавателя.

Приготовьте (или получите у преподавателя) растворы аминокислот тирозина и триптофана. Молекулярная масса триптофана 204, тирозина – 181, требуемая концентрация – не менее 5*10-4 М.

  1. Измерение спектров поглощения белка и аминокислот:

А) Измерьте спектры поглощения раствора белка (концентрация 1*10-5 М) в буфере, а триптофана (5*10-5 М) и тирозина (5*10-4 М) в двух средах – растворе NaOH и фосфатном буфере.

Условия измерения: диапазон 260 – 400 нм, шаг 2 нм (medium), объем жидкости в кювете – не менее 2 мл.

Б) Измерьте спектр поглощения денатурированного белка. Для этого доливайте маленькими дозами в измерительную кювету с белком и в кювету сравнения денатурирующий агент, указанный преподавателем, или проведите термоденатурацию. После каждой добавки агента регистрируйте спектр поглощения до тех пор, пока спектр не перестанет изменяться.

РЕЗУЛЬТАТЫ

Образец

Максимум поглощения

, нм

D

, M-1 см-1

1.

Trp + NaOH

279

0,055

1100

2.

Trp + buf

279

0,043

860

3.

Tyr + NaOH

292

0,215

430

4.

Tyr + buf

275

0,051

102

5.

Альбумин + вода

279

0,215

21500

6.

Альбумин + вода + 0,1 мл мочевины

278

0,204

21429

7.

Альбумин + вода + 0,2 мл мочевины

278

0,203

22332

8.

Альбумин + вода + 0,3 мл мочевины

279

0,177

20344

9.

Альбумин + вода + 0,4 мл мочевины

278

0,203

24340

10.

Альбумин + вода + 0,5 мл мочевины

278

0,165

20471

11.

Альбумин + вода + 0,6 мл мочевины

278

0,165

21456

12.

Альбумин + вода+ 0,7 мл мочевины

279

0,158

21322

13.

Альбумин + вода + 0,8 мл мочевины

278

0,154

21568

14.

Альбумин + вода+ 0,9 мл мочевины

278

0,147

21304

15.

Альбумин + вода+ 1,0 мл мочевины

278

0,142

21289

16.

Альбумин + вода+ 1,1 мл мочевины

279

0,129

20000

17.

Альбумин + вода+ 1,2 мл мочевины

279

0,12

19200

18.

Альбумин + вода+ 1,3 мл мочевины

278

0,139

22937

19.

Альбумин + вода+ 1,4 мл мочевины

279

0,125

20593

20.

Альбумин + вода+ 1,5 мл мочевины

278

0,119

20135

21.

Альбумин + вода+ 1,6 мл мочевины

278

0,116

20173

22.

Альбумин + вода+ 1,7 мл мочевины

278

0.114

20357

23.

Альбумин + вода+ 1,8 мл мочевины

278

0,109

16873

24.

Альбумин + вода+ 1,9 мл мочевины

279

0,109

20488

25.

Альбумин + вода+ 2,0 мл мочевины

278

0.108

20789

26.

Альбумин + вода+ 2,1 мл мочевины

278

0,104

20512

27.

Альбумин + вода+ 2,2 мл мочевины

278

0,097

19635

28.

Альбумин + вода+ 2,3 мл мочевины

278

0.09

18595

29

Альбумин + вода+ 2,4 мл мочевины

278

0,091

19238

Таблица 1. Максимумы поглощения растворов триптофана (С = 5·10-5 М), тирозина (С = 5·10-4 М) и бычьего сывороточного альбумина (С = 1·10-5 М).

Рис.1. Спектры поглощения триптофана в Буфере и в NaOH

Рис. 2. Спектры поглощения тирозина в Буфере и в NaOH

Рис.3. Спектры поглощения БСА в воде

Рис.4. Спектры поглощения БСА при добавлении мочевин

ВЫВОДЫ

Абсорбционные свойства белка схожи со свойствами триптофана. Максимальная длина волны и у БСА, и у триптофана равна 279нм.

Повышение рН сдвигает спектр в длинноволновую область спектра

С повышением концентрации мочевины увеличивается коэффициент экстинкции, что свидетельствует о том, что при денатурации белка количество поглощающего света им уменьшается

При денатурации БСА мочевиной спектр белка не изменял форму спектра. Наблюдается увеличение коэффициента молярной экстинкции, что связано с изменением структуры белка в результате денатурации, а оптическая плотность варьируется от 278 до 279 нм, так как допущена ошибка в разведении аминокислот.

Из-за неправильного разведения аминокислот (тирозина и триптофана) невозможно корректно оценить коэффициент молярной экстинкции.

Спектры поглощение уходят в отрицательные значения по причине неправильного вычета фона, что можно исправить при повторном измерении поглощения фона отдельно.

В нашей работе не наблюдается светорассеяние.

Соседние файлы в папке Лабы Гульнову