- •ИСПОЛЬЗОВАНИЕ ДНК- ТЕХНОЛОГИЙ В МЕДИЦИНЕ: МЕТОДЫ ПЦР И СЕКВЕНИРОВАНИЯ. ГЕННАЯ ТЕРАПИЯ
- •Полимеразная цепная реакция (ПЦР)
- ••Благодаря ПЦР стало возможным быстрое получение участков ДНК в чистом виде и достаточном
- •Классическая ПЦР
- •Праймеры для ПЦР
- •ОСНОВЫ СИНТЕЗА ОЛИГОНУКЛЕОТИДОВ ФОСФОРАМИДИТНЫМ МЕТОДОМ
- •ФОСФОРАМИДИТЫ НУКЛЕОЗИДОВ
- •Стадия 1 – отщепление DMTr
- •Стадия 2 - конденсация
- •Стадия 3 - окисление
- •Стадия 4 – детритилирование 2
- ••Поскольку праймеры должны быть комплементарны к участкам ДНК, ограничивающим амплифицируемый фрагмент, ПЦР можно
- •Состав реакционной смеси ПЦР
- •Схема 1-го цикла ПЦР
- •Амплификация целевых фрагментов ДНК в ходе ПЦР
- •ДНК-полимеразы
- ••Tth-полимераза (эубактерия Thermus thermophilus) - это также высокопроцессивный фермент, амплифицирующий до 3000 п.
- ••Pwo-полимераза (архебактерия Pyrococcus woesei) - молекулярная масса фермента около 90 кДа. Это процессивный
- •Визуализация результатов ПЦР
- •Применение ПЦР
- •Получение геномных (А) и кДНК (Б) копий с помощью ПЦР
- •Использование метода ПЦР для диагностики инфекционных заболеваний
- •ПЦР-анализ одного STR-локуса
- •Анализ трех STR-локусов методом ПЦР
- •Оборудование и материалы для ПЦР
- •Примеры обычного (А) амплификатора С1000 Touch, BioRad (США) и детектирующего амплификатора (Б)
- •Формат пробирок для проведения ПЦР
- •"Горячий старт" (Hot Start)
- •Добавление одного из компонентов реакции при высокой температуре
- •Разделение барьером
- •Ингибирование полимеразы антителами
- •Использование химически модифицированной полимеразы
- •Использование ингибиторов ДНК-полимеразы
- •ПЦР в реальном времени (Real-Time-PCR, qPCR, qRT- PCR)
- •Детекция кинетики ПЦР в реальном времени с помощью флуоресцентных зондов.
- •Амплификация ДНК происходит экспоненциально:
- •Прологарифмировав обе части уравнения (1) получим:
- •Детекция амплификации ДНК в режиме реального времени
- •Правило Стокса
- •Визуализация результатов ПЦР в реальном времени
- •Существует несколько систем детекции амплификации ДНК в режиме реального времени, которые принято подразделять
- •Неспецифические системы детекции
- •Кривая плавления продуктов ПЦР (сплошная линия). Прерывистой линией показан график первой производной. Значения
- •Меченные праймеры с адаптерной последовательностью (амплифлюры)
- •Специфические системы детекции
- •Кспецифическим системам детекции относятся:
- •Праймеры-пробы ("скорпионы")
- •Линейные разрушаемые пробы (TaqMan)
- •Пробы с инвертированными концевыми повторами (ИКП) (молекулярные "маячки", molecular beacons)
- •Метки, работающие на основе метода флуоресцентного резонансного переноса энергии (fluorescent resonance energy transfer,
- •Определение эффективности амплификации
- •Обработка данных ПЦР в реальном времени
- •Метод калибровочного графика
- •Прямое сравнение данных
- •Мостиковая ПЦР
- ••При повторных циклах ПЦР, из точки синтеза первого фрагмента колония фрагментов ДНК будет
- •Эмульсионная ПЦР (emulsion PCR, ePCR)
- •Принцип действия эмульсионной ПЦР
- •Цифровая капельная ПЦР (цПЦР, ddPCR)
- ••Данный метод незаменим для решения таких задач, как:
- •Преимуществами цифровой ПЦР по сравнению с ПЦР в реальном времени являются:
- •Методы секвенирования нуклеиновых кислот
- •Метод химической деградации (Максама- Гилберта)
- ••На первом этапе образец ДНК, обычно представляющий собой сравнительно короткий (100 - 1000
- •Принцип метода Максама-Гилберта
- ••Псевдоу́зел— элемент вторичной структуры нуклеиновых кислот (в основном РНК), состоящий из двух шпилек,
- •Метод Сэнгера (остановка синтеза ДНК ферментом на дидезоксинуклеотидах (ddNTP))
- •Структурные формулы нуклеотидов,
- ••Фрагмент ДНК, последовательность которого требуется определить, добавляется в реакцию аналогичную ПЦР: реакционная смесь
- •Принцип метода Сэнгера
- ••Удлинение цепи ДНК ферментом происходит до момента включения ddNTP. Разделение полученных фрагментов методом
- •Капиллярный автоматический секвенатор ABI
- •Спектрограмма, полученная в результате секвенирования по методу Сэнгера на автоматическом секвенаторе
- •Метод гибридизации на твердой фазе
- •Принцип метода секвенирования на чипе
- ••Однако, невозможно подобрать условия, при которых с олигонуклеотидами будут гибридизоваться только полностью комплементарные
- •Секвенирование с помощью масс-спектрометрии MALDI-TOF (Matrix-assisted laser desorption/ionization- time-of-flight) (определение нуклеотида по массе
- •Принцип секвенирования ДНК на основе метода MALDI-TOF
- •Секвенирование лигированием (принцип комплементарности цепей ДНК)
- •Секвенирование методом лигирования
- •Пиросеквенирование (регистрация акта присоединения нуклеотида по образующемуся пирофосфату)
- •Принцип метода пиросеквенирования
- •Метод обратимых терминирующих нуклеотидов (регистрация каждого присоединенного нуклеотида по отщепляемой метке)
- ••Сначала любым методом создают иммобилизованную на твердой фазе клональную библиотеку одноцепочечных фрагментов ДНК
- •Метод обратимых терминирующих нуклеотидов
- •Полупроводниковое секвенирование (регистрация акта присоединения нуклеотида по образующимся ионам водорода)
- •Полупроводниковое секвенирование
- ••Как и в случае пиросеквенирования, у полупроводникового секвенирования есть трудности с детекцией гомополимерных
- •Нанопоровое секвенирование
- •Принцип нанопорового секвенирования
- ••В настоящее время, технологии Nanopore позволяют осуществлять:
- •Проект «Геном человека» Human Genome Project (HGP) 1990 - 2004
- ••Проект начался в 1990 году, под руководством Джеймса Уотсона под эгидой Национальной организации
- •Принцип секвенирования методом "дробовика"
- •Повторяющиеся участки затрудняют правильную сборку последовательности
- •Метод «клон за клоном» (clone-by-clone)
- •Расположение индивидуальных клонов фрагментов генома, содержащихся в BAC, на физической карте генома определяется
- ••Знание расположения сайтов рестрикции в каждом из клонов позволило определить их местоположение на
- •Генная терапия
- ••Генная терапия, в широком смысле, означает лечение путем введения в ткани или клетки
- •Генная терапия ex vivo
- •Генная терапия in vivo
- •Методы генетической трансфекции в генной терапии
- •Векторные системы на основе вирусов
- •Ретровирусные векторы
- •Конструкции ретровирусных векторов
- •Пакующая клеточная линия
- •Аденовирусные векторы
- •Векторы на основе аденоассоциированных вирусов (ААВ)
- •Векторы на основе вируса простого герпеса (HSV)
- •Образование HSV-вектора с помощью рекомбинации
- •Невирусные системы трансфекции
- •Антисмысловые нуклеиновые кислоты
- •Расщепление мРНК под действием рибозимов
- •Коррекция сплайсинга РНК с помощью антисмысловых олигонуклеотидов
- •мкРНК-интерференция
- •Рекомендуемая литература
- •Благодарю за внимание!
Структурные формулы нуклеотидов,
используемых для обычного синтеза (А) и остановки синтеза ДНК (В)
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
NH2 |
||||
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
N |
|
|
|
|
N |
||||
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
||||||
|
|
|
O |
|
|
O |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
N |
|
|
|
|
|||||||||||||||||||
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|||||||||||||||||||||||||
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|||||||||||||||||||
|
|
|
|
|
|
|
|
O |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
N |
|||||||||||||||||||||||||||||||
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
||||||||||||||||||||||||||||||
HO |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
O |
|
|
|
|
|
|
(S) |
O |
|
|
|
|
|
|
|
(R) |
O |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
||||||
P |
P |
|
|
P |
|
|
|
|
|
|
|
O |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
||||||||||||||||||||||||||||||||
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
(R) |
|
|
|
|
|
|
|
(R) |
|
|
|
|
|
|
|
|||||||||||||||||||||||||||
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|||||
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
H |
H |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
||||||
|
|
|
OH |
|
|
OH |
|
|
|
OH |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
||||||||||||||||||||||||||||||||
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|||||||||||||||||||||||||||||||
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|||||||||||||||||||||||||
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
H |
|
|
|
|
|
|
H |
|
|
|
|
|
|
A |
||||
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
OH |
H |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
||||
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
NH2 |
|||
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
N |
|
|
|
|
|
N |
||
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
||||
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
N |
|
|
|
|
|
|||
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
||||
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
||
|
|
|
|
|
|
O |
|
|
|
|
O |
|
|
|
|
|
|
|
O |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
N |
||||||||||||||||||
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
||||||||||||||||||||
HO |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
O |
|
|
|
|
|
|
|
(S) |
|
O |
|
|
|
|
|
|
|
|
(R) |
|
O |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|||
|
|
|
P |
|
|
|
P |
|
|
|
|
P |
|
|
|
|
|
|
|
O |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
||||||||||||||||||||||||
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
(S) |
|
|
|
|
|
|
(R) |
|
|
|
|
|
|
|
|||||||||||||||||||||||
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
||||||
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
H |
|
H |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|||||
|
|
|
|
|
|
OH |
|
|
|
|
OH |
|
|
|
|
|
|
|
OH |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
||||||||||||||||||||
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
||||||||||||||||||||
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
||||||||||||||||
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
H |
|
|
|
|
|
|
|
H |
|
|
|
|
|
|
B |
||
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
H |
|
H |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|||
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
||||
•Фрагмент ДНК, последовательность которого требуется определить, добавляется в реакцию аналогичную ПЦР: реакционная смесь включает термостабильную ДНК-полимеразу, dNTP всех четырех типов и праймеры, выступающие в качестве затравок для синтеза дочерних цепей ДНК.
Принцип метода Сэнгера
•Удлинение цепи ДНК ферментом происходит до момента включения ddNTP. Разделение полученных фрагментов методом электрофореза в геле позволяет определить последовательность нуклеотидов.
Капиллярный автоматический секвенатор ABI
3130xl Applied Biosystems (США)
Спектрограмма, полученная в результате секвенирования по методу Сэнгера на автоматическом секвенаторе
В настоящее время, с использованием современных автоматических секвенаторов, длина одного прочтения по методу Сэнгера составляет 800- 1000 нуклеотидов.
Метод гибридизации на твердой фазе
•В конце 1980-х был предложен подход к определению последовательностей ДНК, получивший название "секвенирование путем гибридизации" (sequencing by hybridization, SBH) или секвенирования на чипе.
•Метод основан на гибридизации меченных флуоресцентными метками одноцепочечных фрагментов ДНК с синтетическими олигонуклеотидами известной структуры и длины, которые точечно расположены на твердой основе.
•На подложке присутствуют все возможные варианты последовательности олигонуклеотида заданной длины. Например, для олигонуклеотида длиной в 8 оснований будут возможны 48=65 536 вариантов последовательностей.
•Условия гибридизации подбирают таким образом, чтобы только полностью комплементарные фрагменты ДНК взаимодействовали с олигонуклеотидом на подложке.
•После удаления несвязавшихся молекул ДНК можно зарегистрировать сигнал флуоресценции в тех участках чипа, где находится олигонуклеотид, комплементарная последовательность которого есть в секвенируемом образце ДНК.
•Полученный гибридизационный паттерн можно использовать для восстановления исходной последовательности путем сборки перекрывающихся участков сработавших проб.
Принцип метода секвенирования на чипе
•Однако, невозможно подобрать условия, при которых с олигонуклеотидами будут гибридизоваться только полностью комплементарные фрагменты. Всегда находятся GC-богатые участки, которые будут гибридизоваться и при наличии одного или даже нескольких неспаренных оснований. В связи с этим, метод SBH пока не нашел широкого практического применения. Тем не менее, алгоритмы, разработанные на основе SBH для сборки коротких прочтений в более длинные фрагменты, стали основой для последующих алгоритмов высокоскоростной сборки и выравнивания, используемых в технологиях секвенирования нового поколения (new generation sequencing, NGS).
Секвенирование с помощью масс-спектрометрии MALDI-TOF (Matrix-assisted laser desorption/ionization- time-of-flight) (определение нуклеотида по массе и заряду)
•Масс-спектрометрия позволяет идентифицировать компоненты гетерогенной смеси биомолекул по разнице их молекулярных масс.
•Образец для анализа помещают на поглощающую УФ- излучение подложку и подвергают воздействию короткого лазерного импульса.
•Ионизированные молекулы летят в электрическом поле в направлении детектора.
•Время, за которое частица достигает детектора обратно пропорционально отношению масса/заряд.
•На основании полученных данных может быть вычислена масса анализируемой молекулы и расшифрована последовательность сравнительно короткого гомогенного фрагмента .
