книги2 / монография 50
.pdf
|
|
|
|
|
|
|
|
Таблица 18 |
|
Ферменты супернатанта бедренных мышц цыплят (на 1 г влажной ткани), |
|
||||||
|
|
ввезенных на птицефабрику из Германии ( n = 5), |
Х± Sx |
|
||||
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
Показатель |
|
Фон(достресса) |
|
Послешуттелирования |
|
||
|
|
|
|
|
|
|
||
|
|
|
|
Сразу |
Через1час |
|
Через4часа |
Через24часа |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
АсАТ,мкмоль/ч·мл |
|
16,83±0,34 |
6,88±0,37*** |
1,72±0,29*** |
|
1,85±0,16*** |
1,97±0,18*** |
111 |
|
|
|
|
|
|
|
|
АлАТ,мкмоль/ч·мл |
|
8,72±0,18 |
1,64±0,21*** |
1,08±0,15*** |
|
1,200,14*** |
1,98±0,13*** |
|
|
|
|
||||||
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
КоэффициентдеРитиса,усл.ед. |
|
1,93±0,02 |
4,19±0,34*** |
1,59±0,41 |
|
1,54±0,21 |
0,99±0,18 |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
ЩФ,Ед/л |
|
814,29±15,67 |
769,18±22,58 |
208,59±8,82*** |
|
173,15±8,64*** |
359,58±18,01*** |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
Примечание.*р <0,05;**р <0,01;***р <0,001посравнениюсвеличиной«фон».
Данный вывод согласуется с результатами, полученными Ю. В. Ка- рагайчева,С. М. Рогачева,С. И. Баулин (2010).Они установили,что при воздействии стресс-факторов (физический, химический) на животных резко возрастает активность фермента креатинкиназы, являющегося маркеромфункциональнойактивностимышечныхклеток.
Через 4 часа после действия стрессора регистрировалось незначи- тельноеповышениеактивностиАсАТиАлАТвсупернатантемышц,что можнорасцениватькакнаступлениефазыреабилитациивходестресс- реакции у курочек (♀CD). Однако и через 24 часа уровень ферментов недостигалфоновойвеличины.Следовательно,ворганизмегибридов, ввезенныхнаптицефабрикуизГермании,былисниженыбелковыере- зервы в мышечных клетках, свидетельствуя о низком адаптационном потенциалескелетныхмышц.
Укурочек (♀CD) латентная фаза с критическим минимумом по ак- тивностиЩФсоставила4часа,таккакименновэтотсрокисследований
всупернатанте мышц был установлен наименьший уровень фермента. Через 24 часа после действия стрессора концентрация фермента повы- шалась, соответствуя фазе реабилитации, но все равно была меньше исходной величины в 2,26 раза (р < 0,001). Следовательно, в организме цыплят, ввезенных из-за рубежа, или ингибировался синтез ЩФ, или его каталитическая активность, что минимизировало использование мышечными клетками органических монофосфоэфиров для покрытия своихэнергозатрат.
Таким образом, мышечные клетки двухлинейных курочек облада- ли низким адаптационным потенциалом, как и клетки печени, сердца ипочек.
Угибридных цыплят, полученных на птицефабрике (II серия), ак- тивностьАсАТиАлАТрезкоснижаласьпринепосредственномдействии стрессоранаорганизмптиц.Поэтомуминимальныйуровеньферментов
всупернатанте бедренных мышц выявлен сразу после окончания шут- телирования.Так, активность АсАТ уменьшилась в 2,48 раза (р < 0,001), АлАТ– в4,14раза(р<0,001),обеспечиваяувеличениезначениякоэффи- циентадеРитисав3,16раза(таблица19).Следовательно,латентнаяфаза с критическим минимумом в мышцах курочек протекала во время их стрессирования.
112
|
|
|
|
|
|
|
Таблица 19 |
|
Ферменты супернатанта бедренных мышц цыплят (на 1 г влажной ткани), |
|
|||||
|
|
полученных на птицефабрике ( |
n = 5), Х± Sx |
|
|
||
|
|
|
|
|
|
|
|
|
Показатель |
Фон(достресса) |
|
|
Послешуттелирования |
|
|
|
|
|
|
|
|
||
|
|
|
Сразу |
|
Через1час |
Через4часа |
Через24часа |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
АсАТ,мкмоль/ч·мл |
38,11±6,53 |
15,53±01,06*** |
|
39,82±2,67 |
126,24±1,42*** |
129,38±6,51*** |
|
|
|
|
|
|
|
|
113 |
АлАТ,мкмоль/ч·мл |
20,34±1,56 |
4,91±0,19*** |
|
124,04±10,10*** |
63,37±0,68*** |
47,82±2,78*** |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
КоэффициентдеРитиса,усл.ед. |
1,87±0,06 |
3,16±0,19*** |
|
0,32±0,01*** |
1,99±0,01 |
2,70±0,31 |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
ЩФ,Ед/л |
40,35±1,16 |
114,48±11,96*** |
|
120,43±10,86*** |
134,86±12,53*** |
121,46±7,66*** |
|
|
|
|
|
|
|
|
Примечание.*р <0,05;**р <0,01;***р <0,001,посравнениюсвеличиной«фон».
Согласно данным П. В. Шумилов, Л. Е. Цыпин, Ю. Г. Мухина (2010), уменьшениеконцентрациикаталитическихбелковвклеткахбедренных мышцпривоздействиистресс-фактораявлялосьрезультатомцентрали- зации кровообращения на фоне стимуляции симпатико-адреналовой системы. При этом спазм артериол вызывал нарушение микроцирку- ляциииишемиюразличныхоргановитканей(T.Sakai,1996;T. Komatsu, T. Kimura,1996),втомчислеимышечнойткани.
Через1часпослешуттелирования(таблица19)вбедренныхмышцах цыплят, полученных на птицефабрике, наблюдалось восстановление активности АсАТ до фонового уровня и прирост концентрации АлАТ
в6,09 раза (р < 0,001), что соответствовало в стресс-реакции фазе или реабилитации, или мобилизации. Поэтому значение коэффициента де Ритиса уменьшалось в 5,84 раза (р < 0,001). Полученные данные сви- детельствовали об интенсификации обмена свободных аминокислот
вмышечных клетках (Т. И. Середа, М. А. Дерхо, 2014). Повышенная ак- тивность ферментов переаминирования сохранялась и через 4, и через 24 часа эксперимента, что было результатом активной мобилизации аминокислотизскелетноймускулатурыподдействиемкатехоламинов, глюкагона и кортизола– мощных катаболических гормонов (П. В. Шу- милов,Л. Е. Цыпин,Ю. Г. Мухина,2010).
РезультатынашихисследованийсогласуютсясданнымиЛ. Н. Каре- лина,Б. Я. Власов,О. П. Ильина(2010):авторынаблюдалипритемновом стрессевгрудныхибедренныхмышцахцыплятвозрастаниеактивности ферментов-метаболоновциклаКребсанафонедеградациисоединитель- нотканныхструктур.
ИзмененияактивностиЩФ,установленныесразупослепрекращения шуттелирования, характеризовались повышением уровня фермента
вмышечномсупернатанте,чтоможнорасцениватькакнаступлениефазы мобилизации в стресс-реакции. Активность ЩФ превышала фоновую величину в 2,84 раза (р < 0,001) (таблица 19), характеризуя активность использованияорганическихмонофосфатоввкачествеэнергетических субстратов в миоцитах. Аналогичные результаты получены нами при исследовании супернатанта печени и почек (С. Ю. Харлап,М. А. Дерхо, 2015;С. Ю. Харлап,М. А. Дерхо,Т. И. Середа,2015).
Следовательно, в клетках бедренных мышц гибридных курочек (♀ABCD),какипечени,сердцаипочек,метаболическийответнастресс имелстереотипныйхарактер.Воздействиестрессовогофакторавызывало развитиекороткойстадиигипометаболизма,отличающейсявременным
114
снижением активности ферментов и, как следствие, метаболических процессов с последующим переходом к стадии гиперметаболизма, ха- рактеризующейся длительной и чрезмерной активацией метаболизма спреимущественнокатаболическойнаправленностью.
Исходяизвышесказанного,можноутверждать,чтостадиягипомета- болизмавмиоцитахцыплят,полученныхнаптицефабрике,ограничива- ласьвременемвоздействиястресс-фактора(шуттелирования).Ужечерез 1 час после стресса появлялись признаки гиперметаболизма. В то же времяуптиц,ввезенныхизГерманиинаптицефабрику,стадиягипомета- болизмарегистрироваласьивконцеэксперимента(таблица18),чтобыло следствием низкого адаптационного потенциала организма цыплят.
Хотелось бы обратить внимание на то, что цыплята в 40 суточном возрастеотличаютсябольшейпотребностьювэнергииибелке,чемвзрос- лые куры, с целью обеспечения темпов роста, поэтому потенциально более чувствительны к стресс-опосредованным гиперкатаболическим процессамиз-заболеенизкихрезервовдепоиболеевысокойпотребно- сти в энергии и пластическом материале.Поэтому наличие в анамнезе транспортногострессав1 суточномвозрасте(Iсерия)снижаетадаптаци- онныевозможностиорганизмаивболеепоздниесрокипостнатального развития.
Такимобразом,результатынашихисследованийпоказали,чтоадапта- ционныеспособностимышечныхклетоккурочек,ввезенныхиз-зарубежа иполученныхнаптицефабрике,оцениваемыепоактивностиферментов, существенноразличаются.Ворганизмечетырехлинейныхгибридовмио- цитыобладалиболеевысокимадаптационнымпотенциалом,чтоотража- лосьнаихметаболическойифункциональнойактивности.Удвухлиней- ныхгибридовдинамикаизмененийаминотрансферазсвидетельствовала онарушениинормальногоформированияадаптивнойреакцииорганизма, чтоотражалонизкиеадаптационныевозможноститкани.
Установлено, что адаптивный или повреждающий эффект любого фактора, а тем более комплекса факторов, как стресс, реализуется в ус- ловиях целостного организма опосредованно– через мембранные си- стемы клеток.Состояние мембраны во многом определяет протекание физиологических и биохимических процессов и тем самым является исходнымзвеномвсложнойцепиприспособительныхмодификацийна всех уровнях (А. В. Дерюгина, 2012). Поэтому для оценки функциональ- ногосостояниямембранныхструктурмышечныхклетоквходеразвития стресс-реакциимырассчитализначениякоэффициентовцитолитической
115
реакции(проницаемости)мембран(КЦР)посоотношениюмеждуактив- ностьюферментоввплазмекровиимышечномсупернатанте.
Установили, что в организме цыплят, полученных на птицефабри- ке, проницаемость мембран миоцитов, оцениваемая по соотношению каталитической активности и АсАТ, и АлАТ резко возрастала в период непосредственноговоздействиястресс-фактора,очемсвидетельствовало увеличениевеличиныКЦР(рис.8).Следовательно,вэтотпериодразви- тия стресс-реакции под действиием стрессовых гормонов изменялось состояниемембраннетолькосамихмышечныхклеток,ноиихорганелл.
Результаты исследований согласуются с данными И. Н. Тодоров, Г. И. Тодоров (2003).Авторы установили,что под действием стресс-фак- тороввклеткахпроисходитразобщениедыханияиокислительногофос- форилированиянафонеувеличенияпроницаемостимембрансбыстро- той,пропорциональнойстепенистресса,атакжепотеринатрия,калия, фосфатов, лактата, каталазы и других ферментов. Эти биохимические проявлениясочетаютсясхарактернымиморфологическимиизменени- ями: уменьшением количества митохондрий,их набуханием,просвет- лениемматрикса:кристывмитохондрияхстановятсяменеевидимыми, появляютсяразрывымитохондриальноймембраны.
а |
б |
Рис. 8. Динамика КЦР (усл. ед.) в ходе развития стресс- реакции у курочек, полученных на птицефабрике: а) для АсАТ; б) для АлАТ
Однако уже через 1 час после шуттелирования в миоцитах гибрид- ных курочек (♀ABCD) ограничивался вытек аминотрансфераз, так как величина КЦР снижалась (рис. 8). Данная тенденция сохранялась до
116
концаэксперимента,способствуяувеличениюактивностиАсАТиАлАТ в супернатанте мышц. Возможно, это являлось механизмом, позволя- ющим клеткам активизировать процессы внутриклеточного обмена аминокислот.
Укурочек,ввезенныхизГермании,проницаемостьмембранмышеч- ных клеток возрастала постепенно, достигая максимальной величины через1часпослеокончанияшуттелирования(рис.9).Приэтомикконцу экспериментавеличинаКЦРаминотрансферазмногократнопревосхо- дила фоновый уровень. Следовательно, миоциты в организме курочек (♀CD)обладалиограниченнымадаптационнымпотенциалом.Возможно, одной из причин являлись различия в фоновой активности ферментов и,какследствие,взапасемышечныхбелковкакисточникааминокислот.
а |
б |
Рис. 9. Динамика КЦР (усл. ед.) в ходе развития стресс- реакции у курочек, ввезенных на птицефабрику из Германии: а) АсАТ; б) АлАТ
Мыустановили,чтокакорганизмптицвцелом,такиклеткимышц поддерживают сложное и тонкое внутреннее равновесие (гомеостаз), чтовесьмасущественнодляихнормальногофункционирования.Когда воздействиестресс-факторанарушаетгомеостаз,клеткастремитсяснова восстановитьегозасчетрегулированияпроницаемостимембран.
Так,однимизпроявленийспособностимиоцитоврегулироватьвели- чинувнутриклеточныхгомеостатическихпараметровявляетсяподдер- жание концентрации ЩФ,активность которой эквивалентна скорости гидролизафосфомоноэфировразличнойприродыприщелочныхзначе- нияхрН(Т. И. Середа,М. А. Дерхо,Л. М. Разумовская,2012).Ворганизме цыплят,полученныхнаптицефабрике,проницаемостьмембранклеток
117
мышц,оцениваемаяповеличинеКЦР(ЩФ),снижаласьсразупослешут- телирования и к концу эксперимента не достигала фоновой величины (рис.10,б).Соднойстороны,этобылооднойизпричинповышенияфер- ментативнойактивностивмышечномсупернатанте.Сдругойстороны, позволяломиоцитамрегулироватьэнергетическийгомеостаз,используя дляэтихцелейорганическиемонофосфаты.
а |
б |
Рис. 10. Динамика КЦР(ЩФ) (усл. ед.) в ходе развития стресс- реакции:
а) в I серии эксперимента; б) во II серии эксперимента
Ворганизме цыплят, ввезенных из Германии, мышечные клетки об- ладалиспособностьюсохранятьуровеньактивностиЩФтолькововремя воздействиястресс-фактора.Затемпроницаемостьмембранклетокмышц дляЩФвозрастала,особенночерез1и4часапослешуттелирования.Поэ- томууровеньЩФвсупернатантемышцуменьшался(таблица18,рис.10,а).
Следовательно,действиестресс-фактораотражалосьнаэнергетическом состоянииклетокскелетныхмышцворганизмептиц.Приэтомуцыплят, полученныхнаптицефабрике,миоцитыактивнопокрывалисвоиэнерго- затраты за счет монофосфатов на фоне ограничения их вытека из клеток
вкровь;уввезенныхиз-зарубежаптиц,наоборот,ингибировалсягидролиз фосфорныхэфировнафонеактивноговысвобожденияферментавкровь.
Такимобразом,результатынашихисследованийпоказали,чтофунк- циональнаяактивностьклетокскелетныхмышцявляетсяоднимизпо- казателей,характеризующихадаптационныйпотенциалорганизма.Это обусловленотем,чтомышечныебелкипристрессеявляютсяисточником свободных аминокислот и, соответственно, скорость их мобилизации эквивалентнаадаптационнымвозможностяморганизма.
118
2.9.Эффективностьвыращивания молоднякакур-несушек
привлияниитранспортногостресса
Направлениевыращиванияремонтногомолоднякародительскогоипра- родительского стада подразумевает введение молодняка в яйцекладку воптимальном,дляданногокросса,возрастесвысокойоднородностью стада,безотклоненияотнормативнойдинамикиростаиразвитиявте- чение периода выращивания с целью достижения в будущем высокой, генетическиобусловленнойпродуктивности,сбольшимсрокомпродук- тивногоиспользования.Выращиваниеремонтногомолоднякаусловно можноразделитьнатрипериода:первый– ссуточногодо8 недельного возраста,второй– с 8 до 13 недель,третий– с 13 до 20 недель.В первый периодпроисходятростиразвитиевсехвнутреннихорганов,сердечно- сосудистойсистемы,мышечнойикостнойткани,формированиескелета
иоперения, становление ферментной и иммунной систем; во второй развиваются жировая ткань (абдоминальный, подкожный, межкле- точный и внутриклеточный жир), сухожилия, связки; в третий бурно развиваются воспроизводительные органы (репродуктивная система)
изатрагиваютвсестороныобменавеществ.
Всеперечисленныепериодыважны,однакоглавнымявляетсяпервый период,особеннов4–5недельжизни.Чтовэтотпериодбудетзаложено, такой и будет отдача в дальнейшем, поскольку известно, что чем выше показателиростаиразвития,темвышепикяйценоскостиипродолжи- тельностьпродуктивногоиспользования.Еслибудетупущениевкакой то изназванныхпериодов,что тоизменитьбудетневозможно.
Стартовыйпериодвразвитиимолодняка– основополагающийвдаль- нейшей продуктивности кур-несушек как родительского, так и про- дуктивного стада– часто недооценивается на практике. Установлено, чтопоказательживоймассыумолоднякав5 недельномвозрастеимеет высокодостоверную связь с последующей продуктивностью кур-несу- шек,устойчивостьюяйцекладки,сохранностипоголовья(коэффициент корреляции0,94;0,82;0,71соответственно).
Такимобразом,чембольшеживаямассамолодкив5 недельномвоз- расте,темвышепродуктивность,устойчивостькстрессам.
Объясняетсяэтотем,чтовпервые5недельпроисходитинтенсивное развитиевнутреннихоргановцыпленка(кишечноготракта,сердца,пе-
119
чени,почек) и формирование репродуктивных органов,гормональной системы,которыевпоследующемопределяютпродуктивность.
Крометого,нужнопомнить,чтопривыращиванииремонтногомо- лодняка кур самый критический период с точки зрения сохранности– первыймесяц,особеннопервые4–6дней,посколькунаблюдаетсянаи- большийотходптицы.
Следует отметить, что на рост цыплят большое влияние оказывают и стрессы, присущие интенсивному промышленному птицеводству. Это прежде всего вакцинация,транспортировка,сортировка и др.Они вызываютворганизмептицыглубокиебиохимическиеизменения,со- провождающиесяфункциональнымииморфологическимиизменениями ворганахитканяхживотных,следствиемчегоявляетсяснижениеихпро- дуктивностиижизнеспособности.Поэтомуизучениевопросаовлиянии генотипаипроисхожденияцыплятнаихроствусловияхтранспортного стресса в первый период жизни (выращивание до 40 дней) имеет боль- шое значение для дальнейшего развития птицеводства и повышения продуктивности кур-несушек родительского и продуктивного стада.
Нами были изучены весовые показатели роста цыплят для ремонта родительского стада,которые в суточном возрасте были доставлены на ЕманжелинскуюптицефабрикуизГерманииспомощьюавиатранспорта (двухлинейные), и цыплят, выращиваемых для продуктивного стада, полученных в условиях птицефабрики (четырехлинейные). Данные об изменениях живой массы цыплят с возрастом, их среднесуточном, аб- солютномиотносительномприростепредставленывтаблице20.
|
|
|
Таблица 20 |
Показатели роста ремонтного молодняка ( |
n = 5), Х± Sx |
||
|
|
|
|
Показатель |
Серия(группа) |
||
|
|
|
|
|
Двухлинейные |
|
Четырехлинейные |
|
|
|
|
Живаямассацыпленка,г |
|
|
|
суточного |
36±1,04 |
|
36±1,42 |
в40дней |
438±12,38 |
|
523±10,51** |
|
|
|
|
Абсолютныйприрост,г |
402±9,26 |
|
487±11,13** |
|
|
|
|
Среднесуточныйприрост,г |
10,1±0,05 |
|
11,9±0,07** |
|
|
|
|
Относительныйприрост, % |
169,62 |
|
174,23 |
|
|
|
|
Кратностьроста,раз |
12,2 |
|
14,5 |
|
|
|
|
Сохранность, % |
66,7 |
|
86,4 |
|
|
|
|
120