книги2 / монография 39

112

по сравнению с контрольными данными отмечалось у 30-, 60-, 90-, 150-, 180-, 300- и 420-суточных животных 1-й опытной группы на 6,2 %, 6,8, 4,2, 7,4, 8,0, 5,2 и 4,8 % соответственно

(Р<0,05-0,01). Содержание лимфоцитов в крови животных 2-й опытной группы было также достоверно выше по сравнению с контролем в период выращивания телят на 2,4 – 7,0 % и доращивания телок – на 3,6 – 7,2 % (Р<0,05-0,01). Установленный лимфоцитоз в крови животных опытных групп под воздействием испытуемых биопрепаратов свидетельствует о стимуляции как клеточного, так и гуморального звеньев иммунитета.

Динамика моноцитов в крови животных контрольной, 1-й и 2-й опытных групп не имела определенной закономерности и в процессе наблюдения содержание их варьировало в пределах

3,3±0,61 – 7,6±0,41 %, 3,6±0,39 – 5,9±0,67 и 4,0±0,53 – 7,0±0,57 %, а разница между данными подопытных групп животных оказалась недостоверной (Р>0,05).

Анализ лейкоцитарной формулы позволяет заключить, что биопрепараты вызывали физиологический лейкоцитоз, эозинофилию, умеренную нейтропению со сдвигом нейтрофильного ядра вправо и лимфоцитоз, следовательно, активизировали неспецифическую резистентность организма.

2.3.3.5 Биохимический профиль крови

Результаты исследований динамики общего белка и его фракций в сыворотке крови молодняка представлены в табл. 11.

Из представленной таблицы следует, что содержание общего белка в сыворотке крови молодняка контрольной, 1-й и 2-й опытных групп варьировало в период исследований в пределах 60,1±0,71 – 62,5±0,86 г/л, 60,6±0,84 – 65,1±0,79 г/л и

61,1±0,71 – 66,0±1,21 г/л соответственно. Уровень указанного показателя биохимического профиля крови у животных 1-й опытной группы был достоверно выше в период выращивания на 2,3 – 3,0 г/л, доращивания – на 2,7 – 3,0 г/л, чем у контрольных животных (Р<0,05). Достоверная разница между величинами 2-й опытной и контрольной групп установлена через 60, 90, 120, 150, 180, 300 и 420 суток после постановки

114

опытов на 3,1 г/л, 3,7, 3,3, 3,2, 3,4, 3,8 и 3,6 г/л

соответственно (Р<0,05). Следовательно, более выраженный стимулирующий эффект оказывал Salus-PE.

Концентрация альбуминов в сыворотке крови телят возрастала в периоды выращивания с 1 по 180-е сутки и до 300- х суток: в контрольной группе с 25,0±0,63 до 30,1±0,81 г/л, 1-й

опытной – с 26,2±0,63 до 33,4±0,87, во 2-й опытной – с 26,6±0,66

до 34,6±0,89 г/л, к завершению периода доращивания, наоборот,

установлено их снижение до 29,8±0,74 г/л, 33,0±0,98 и 34,5±0,86

г/л соответственно. Следует отметить, что уровень альбуминовой фракции белка в сыворотке крови животных 1-й и 2-й опытных групп превышал таковой контрольных сверстников во все сроки исследований, начиная с 90-суточного возраста: у 90-суточных животных на 2,7 и 4,0 г/л, 120-суточных

– 3,5 и 4,2, 150-суточных – 4,0 и 4,7, 180-суточных – 3,7 и 4,8,

300-суточных – 3,3 и 4,5 и 420-суточных – на 3,2 и 4,7 г/л (Р<0,05-0,01). Следовательно, биопрепараты Prevention-N-B-S и Salus-PE активизировали продукцию альбуминов – пластического материала, необходимого для роста телят в ранние периоды постнатального онтогенеза.

Общее количество глобулинов в сыворотке крови животных контрольной, 1-й и 2-й опытных групп не имела указанной выше закономерности, и варьировало в течение всего срока наблюдения с 31,8±1,13 до 37,0±1,13 г/л, с 31,5±1,24 до 35,8±1,08 г/л и с

31,1±1,65 до 35,8±0,92 г/л соответственно. Разница между данными контрольной и опытных групп животных оказалась недостоверной

(Р>0,05).

Динамика α- и β-глобулиновых фракций белка в сыворотке крови животных подопытных групп носила волнообразный характер и разница в соответствующих величинах между сопоставляемыми группами была несущественной (Р>0,05).

Установлено, что концентрация γ-глобулинов в сыворотке крови животных опытных групп во все периоды наблюдения была выше контрольных данных. При этом достоверное различие по указанному иммунокомпетентному показателю организма между животными 1-й опытной и контрольной групп установлено на 90-, 120-, 150-, 180-, 300- и 420-е сутки

115

исследований на 2,7 г/л, 2,5, 3,3, 3,5 и 3,2 г/л соответственно (Р<0,05). Разница между соответствующими данными животных 2-й опытной и контрольной групп оказалась достоверной на 60-, 90-, 120-, 150-, 180-, 300- и 420-е сут. после постановки опытов, т.е. у молодняка 2-й опытной группы они превосходили контрольные соответственно на 2,1 г/л, 3,6, 4,2, 4,3, 3,6, 3,7 и 3,3 г/л (Р<0,05-0,01). Увеличение концентрации γ-глобулиновой фракции белка в сыворотке крови животных опытных групп свидетельствует об активизации гуморального звена резистентности организма под воздействием Prevention-N-B-S и Salus-PE в условиях адаптивной технологии выращивания телят в индивидуальных домиках и павильонах, и традиционной технологии выращивания и доращивания телок в типовых помещениях.

Выявленная динамика белкового спектра сыворотки крови подопытных животных под воздействием биопрепаратов свидетельствует об активизации деятельности гепатоцитов, плазмоцитарных и иммунокомпонентных клеток печени, ответственных за синтез лабильных белков плазмы крови.

2.3.3.6 Гематологический профиль неспецифической резистентности

Гематологические показатели неспецифической резистентности организма молодняка подопытных групп в динамике представлены в табл. 12.

Из данных табл. 12 следует, что фагоцитарная активность нейтрофильных сегментоядерных лейкоцитов по отношению к St. aureus у молодняка контрольной группы варьировала за период исследований в пределах 22,8±1,17 – 55,0±0,71 %. Указанный фактор клеточного звена неспецифической резистентности у животных 1-й опытной группы постепенно нарастал до 150-суточного возраста с 24,0±1,17 до 57,2±0,96 %, затем к завершению периода выращивания (180 сут.) выявлен спад фагоцитарной активности до 56,8±1,07 % и, наконец, отмечен ее рост в период доращивания до 420-суточного возраста до 59,0±0,88 %. У животных 2-й опытной группы анализируемый показатель клеточного звена резистентности

117

постепенно нарастал по мере взросления с 25,0±0,75 до 61,4±1,07 %. Следует отметить, что более выраженная клеточная реакция наблюдалась у животных 1-й и 2-й опытных групп, по сравнению с контролем: через 60 суток после постановки опытов

– на 2,6 и 3,4 %, 90 суток – 4,8 и 6,4 %, 120 суток – 5,6 и 7,4 %, 150 суток – 3,8 и 4,8 %, 180 суток – 4,2 и 5,8 %, 300 суток – 4,0 и 4,6 % и 420 суток – на 4,0 и 6,4 % соответственно (рис. 23;

Р<0,05-0,001).

Рисунок 23 – Динамика фагоцитарной активности лейкоцитов

Фагоцитарный индекс крови животных контрольной группы варьировал в период исследований с 3,9±0,31 до 7,6±0,41. Причем у телят 1-й и 2-й опытных групп он нарастал с 1-го по 120-е сут. исследований с 4,6±0,32 до 7,0±0,42 и с 4,9±0,34 до 7,5±0,23, затем уменьшался и на 150-е сутки составил 6,7±0,39 и 7,4±0,37, а после постепенно увеличивался до завершения исследований и на 420-е сут. равнялся 8,3±0,27 и 8,7±0,26 соответственно. Поглотительная активность лейкоцитов хотя и была выше в опытных группах по сравнению с контролем, но достоверная разница отмечена только между данными контрольной и опытными 1-й и 2-й группами на 420-е сутки наблюдения на 10,6 и 16,0 % (рис. 24; Р<0,05-0,01).

118

Рисунок 24 – Динамика фагоцитарного индекса

Следовательно, апробируемые биопрепараты Prevention- N-B-S и Salus-PE активизировали клеточные факторы неспецифической защиты организма, при более выраженном эффекте последнего.

Лизоцимная активность плазмы крови телят контрольной и 1-й опытной групп последовательно возрастала в период выращивания с 5,1±0,35 до 19,9±0,51 % и с 5,4±0,37 до 22,2±0,47 %, а в процессе доращивания уменьшалась и на 300-е сут. равнялась 19,4±0,54 % и 22,1±0,62 % и, наконец, к завершению периода доращивания выявлено повышение активности лизоцима плазмы крови до 22,1±0,39 и 23,9±0,49 % соответственно. Лизоцимная активность плазмы крови животных 2-й опытной группы неуклонно возрастала в периоды выращивания и доращивания с 6,0±0,43 до 24,9±0,36 %. Указанная активность гуморального звена неспецифической защиты организма животных 1-й и 2-й опытных групп оказалась выше, нежели в контроле: в период выращивания – на 1,5 – 3,1

% и 2,0 – 4,1 % (Р<0,05-0,001), доращивания – на 1,8 – 2,7 % и

2,8 –4,0 1,8 % (рис. 25; Р<0,05-0,001).

Бактерицидная активность сыворотки крови подопытных животных по мере их взросления имела тенденцию к нарастанию от начала опыта к его завершению: в контрольной

119

группе от 30,0±0,95 до 54,5±0,40 %, в 1-й опытной – от 30,1±0,97 до 56,5±0,63 %, во 2-й опытной – от 30,8±0,99 до 57,0±0,61 %.

Рисунок 25 – Динамика лизоцимной активности плазмы

Рисунок 26 – Динамика бактерицидной активности сыворотки

Следует отметить, что бактерицидная активность сыворотки крови животных 1-й и 2-й опытных групп была

120

достоверно выше, чем в контроле: в возрасте 30 суток на 4,6 и 5,4 %, 60 суток – на 2,8 и 4,8 %, 90 суток – на 5,0 и 6,8 %, 120 суток – на 3,7 и 6,0 %, 150 суток – на 3,3 и 5,1 %, 180 суток – на 3,4 и 5,6%, 300 суток – на 2,6 и 2,8 % и 420 суток – на 2,0 и 2,5 % (рис. 26; Р<0,05-0,001).

Рисунок 27 – Динамика концентрации иммуноглобулинов

Установлено, что концентрация иммуноглобулинов в сыворотке крови контрольных и опытных телок также последовательно возрастала в течение всего срока наблюдения с

10,8±0,59 до 26,9±0,63 мг/мл, с 11,6±0,72 до 29,1±0,63 и с

12,0±0,62 до 29,6±0,78 мг/мл соответственно. При этом концентрация указанного иммунокомпетентного фактора в сыворотке крови животных 1-й опытной группы после инъекции Prevention-N-B-S и 2-й опытной группы после внутримышечного введения Salus-PE оказалась достоверно выше на 2,0 и 2,4 мг/мл; 2,3 и 2,8; 3,6 и 5,7; 3,4 и 5,1; 3,0 и 4,4; 2,6 и 3,6; 3,7 и 3,7; 2,2 и 2,7 мг/мл через 30, 60, 90, 90, 120, 150, 180, 300 и 420 суток после постановки опытов, нежели в контроле (P<0,05-0,01; рис. 27).

Повышение лизоцимной активности плазмы и бактерицидной активности сыворотки, а также уровня