Добавил:
kiopkiopkiop18@yandex.ru Вовсе не секретарь, но почту проверяю Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:

2 курс / Микробиология 1 кафедра / Доп. материалы / Общая_микробиология_Иллюстрированное_учебное_пособие_Н_В_Литусов

.pdf
Скачиваний:
0
Добавлен:
24.03.2024
Размер:
19.49 Mб
Скачать

271

мазки, окрашивают их по Граму и микроскопируют с иммерсией (определение морфологических и тинкториальных свойств возбудителя). Обязательным этапом бактериологического исследования является выделение чистой культуры микробов. С этой целью исследуемый материал высевают на плотную питательную среду и инкубируют в термостате в течение 18-24 часов при температуре 37ОС. Чистой культурой называют популяцию микроорганизмов одного вида, полученную на питательной среде из изолированной микробной колонии. Микробная колония – это видимое невооруженным глазом скопление бактерий на поверхности или в толще плотной питательной среды. Колония представляет собой потомство как правило одной бактериальной клетки. Чистая культура используется для изучения морфологических, культуральных, биохимических, антигенных и других свойств, по совокупности которых проводится идентификация, то есть определяется видовая принадлежность исследуемых бактерий.

Для получения изолированных колоний предложены разные методы разобщения клеток:

-метод Пастера – последовательные разведения исследуемого материала в жидкой питательной среде (представляет исторический интерес);

-метод Коха – последовательные разведения исследуемого материала в расплавленном агаре с последующим переносом агара в чашку Петри (рисунок 9.5);

Разведения

Исследуемый

материал

1:10

1:100

1:1000

1:10000

1:100000

Рисунок 9.5 – Получение изолированных колоний методом Коха.

- метод Дригальского – последовательный перенос исследуемого материала с помощью шпателя из одной чашки в последующие 2-3 чашки с агаром (рисунок

9.6);

Рисунок 9.6 – Получение изолированных колоний по методу Дригальского.

272

- посев штрихами с помощью бактериологической петли (рисунок 9.7).

 

Колонии

а

б

Рисунок 9.7 – Схема посева штрихами (а, цифрами указана последовательность нанесения штрихов) и результат посева (б).

При выделении чистых культур из смешанной популяции бактерий используются различные приемы, позволяющие “обогатить” исследуемый материал патогенными возбудителями. Например, при низкой концентрации патогенных бактерий в исследуемом материале, особенно загрязненном посторонней микрофлорой, применяют биологический метод – выделение культуры после заражения лабораторных животных.

Химический метод (обработка исследуемого материала химическими веществами) применяется для уничтожения сопутствующей микрофлоры (обработка материала кислотой при выделении кислотоустойчивых микобактерий туберкулеза).

Физический метод (прогревание исследуемого материала) используется при выделении спорообразующих бактерий.

Техника посева зависит от характера исследуемого материала и консистенции питательной среды. Жидкий материал для посева берут бактериологической петлей или стерильной пипеткой. Все манипуляции проводят вблизи пламени горелки с соблюдением правил асептики. Бактериологическую петлю перед взятием материала и по окончании посева прокаливают в пламени горелки. Пипетки после посева погружают в дезраствор.

Наибольшее распространение для выделения чистой культуры аэробных и факультативно-анаэробных бактерий получили метод посева штрихом и метод Дригальского. При посеве штрихом стерильной петлей берут каплю исследуемого материала и наносят его параллельными штрихами на поверхность агара в чашке Петри. В начале посева на петле имеется большое количество микробов, поэтому рост будет сплошным. С каждым штрихом на петле остается все меньше микробов, поэтому отмечается рост изолированных колоний. Посев штрихом имеет множество вариантов (рисунок 9.8).

Рекомендовано к изучению разделом по микробиологии сайта https://meduniver.com/

273

Рисунок 9.8 – Варианты посева штрихами. Цифрами обозначена последовательность нанесения штрихов.

Шпателем по методу Дригальского исследуемый материал распределяется по поверхности среды в нескольких чашках Петри. При этом вначале материал распределяют по поверхности агара в первой чашке Петри, затем этим же шпателем материал переносят на последующие чашки. На первой чашке отмечается сплошной рост культуры, а на последующих выявляются изолированные колонии.

На втором этапе исследования изолированные колонии описывают по форме (правильная, неправильная, округлая, розеткообразная и т.д.), величине (крупные, средние, мелкие), прозрачности (непрозрачная, полупрозрачная, прозрачная), цвету (бесцветные, пигментированные), характеру поверхности (гладкая, блестящая, влажная и др.), рельефу (выпуклые, погруженные, с валиком по краю и т.д.).

Из отдельных колоний готовят мазки, окрашивают их по Граму и микроскопируют с иммерсией. Для приготовления мазка используют часть колонии. При однородной микроскопической картине остаток колонии пересевают на скошенный агар в пробирку для накопления чистой культуры. Посевы инкубируют в термостате как правило при температуре 37ОС в течение суток.

На третьем этапе исследования отмечают характер роста культуры на скошенном агаре, готовят мазки, окрашивают их по Граму, микроскопируют с иммерсией. По однородности роста культуры на агаре, микроскопической картине (однородность формы, размеров и окраски) судят о чистоте выделенной культуры. Затем проводят идентификацию чистой культуры путем изучения морфологических, тинкториальных, культуральных, биохимических и антигенных свойств. При необходимости изучают дополнительные свойства, характеризующие видовую принадлежность выделенного микроба.

Морфологические (размер и форма микробных клеток) и тинкториальные

(отношение к окраске по Граму) свойства изучают при микроскопии окрашенных по Граму мазков.

Культуральные свойства изучают по характеру роста культуры на плотной и в жидкой питательной среде. При этом описывают признаки колоний, образующихся на плотной питательной среде, и особенности роста культуры в жидкой питательной среде.

Для идентификации чистой культуры изучают различные биохимические свойства.

274

Ферментация углеводов (сахаролитические свойства) определяется на средах Гисса, содержащих один из моно-, дисахаров (глюкозу, лактозу, сахарозу и др.), полисахаридов (крахмал, гликоген и др.), высших спиртов (глицерин, манит и др.) и индикатор. В пробирку со средой помещают поплавок для улавливания газа. При ферментации углеводов образуется либо кислота, либо кислота и газ (углекислый газ, водород, метан). Образование кислоты выявляется изменением цвета среды, а образование газа – появлением пузырька в поплавке.

Ферментацию белков определяют путем посева культуры в столбик питательного желатина, на свернутую сыворотку крови, на молочный агар. При посеве в столбик желатина при положительной реакции отмечается его разжижение. На свернутой сыворотке вокруг колоний в положительном случае образуется углубление, а на молочном агаре вокруг колоний формируется зона просветления.

Расщепление белков в некоторых случаях сопровождается образованием индола (продукт расщепления триптофана), аммиака (продукт расщепления фенилаланина) или сероводорода (продукт расщепления цистина, цистеина или метионина). Для выявления этих газообразных веществ используют индикаторные бумажки или специальные реактивы. Более подробно изучение ферментативной активности бактерий представлено в разделе 8.

Для определения пути расщепления глюкозы (окислительный или бродильный) используют ОФ-тест (тест окисления – ферментации, окислительнобродильная проба). Для этого исследуемую культуру засевают уколом в две пробирки, содержащие полужидкую питательную среду, глюкозу и индикатор бромтимоловый синий. В одну из пробирок вносят слой вазелинового масла для создания анаэробных условий. Разложение глюкозы сопровождается образованием кислоты и изменением цвета среды на желтый. Образование кислоты в обеих пробирках свидетельствует о ферментативном пути расщепления глюкозы. Образование кислоты только в пробирке без вазелинового масла свидетельствует об окислительном пути расщепления глюкозы. Отсутствие кислотообразования в обеих пробирках свидетельствует об отсутствии утилизации глюкозы (рисунок 9.8).

Рисунок 9.8 – Окислительный путь расщепления глюкозы (опыт - пробирка слева, контроль – пробирка справа).

В последние годы биохимические свойства бактерий изучают с использованием специальных тест-систем и микробиологических анализаторов, позволяющих не только расширить спектр изучаемых показателей, но и значительно

Рекомендовано к изучению разделом по микробиологии сайта https://meduniver.com/

275

сократить объем проводимых исследований. Например, автоматический микробиологический анализатор Vitec II Compact (рисунок 9.9) позволяет не только идентифицировать бактерии и дрожжи, но и определять их чувствительность к антибиотикам.

Рисунок 9.9 – Автоматический микробиологический анализатор Vitec II Compact.

Видовую принадлежность выделенных культур устанавливают путем сравнения полученных результатов со свойствами бактерий известных видов.

На четвертом этапе учитывают результаты всех проведенных исследований

ивыдают заключение о возбудителе заболевания.

9.3.Посев материала на питательные среды и выделение чистой культуры

анаэробных бактерий

При культивировании анаэробных бактерий требуется создание условий с пониженным содержанием кислорода или его отсутствием. Для создания анаэробных условий используют различные методы.

1. Выращивание бактерий в средах под слоем вазелинового масла (среда Китта-Тароцци). Перед применением для удаления растворенного кислорода среду кипятят в течение 15-20 минут на водяной бане, затем охлаждают (рисунок 9.10);

Рисунок 9.10 – Рост анаэробных бактерий в среде Китта-Тароцци (правая пробирка

контроль).

2.Выращивание культуры в высоком столбике агара. Питательный агар разливают в пробирки по 10 мл, прогревают на кипящей водяной бане для удаления кислорода, после чего охлаждают до температуры 45°С, вносят исследуемый

276

материал и тщательно перемешивают (рисунок 9.11).

Рисунок 9.11 – Рост анаэробных бактерий в высоком столбике агара.

3. Инкубирование посевов в герметически закрытых емкостях – эксикаторах, анаэростатах, системах GasPak (рисунок 9.12).

а б в Рисунок 9.12 – Системы для выращивания анаэробных бактерий: а – эксикатор, б –

анаэростат, в – система GasPak.

Для инкубирования разных микроорганизмов применяют разные типы пакетов - разные системы GasPak (таблица 9.1)

Таблица 9.1 – Атмосфера, создаваемая с помощью разных систем GasPak

Тип атмосферы

Тип пакета

Финальная

Культивируемые

 

 

концентрация газа

микроорганизмы

Капнофильная

GasPak

17-19% О2

Аэробные

 

 

5-10% СО2

капнофилы

Микроаэрофильная

CampyPak

5-8% О2

Микроаэрофилы

 

 

5-10% СО2

 

Анаэробная

GasPak H2/CO2

<1,2% О2

Строгие анаэробы

 

 

5-10% СО2

 

Для поглощения кислорода в замкнутой воздушной среде используют растворы пирогаллола, гидросульфит натрия, для получения углекислого газа применяют смесь лимонной кислоты с бикарбонатом натрия. Для выращивания анаэробов используют также инкубаторы, в которых создается атмосфера углекислого газа - СО2 – инкубаторы (рисунок 9.13).

Рекомендовано к изучению разделом по микробиологии сайта https://meduniver.com/

277

Рисунок 9.13 - СО2 – инкубатор.

Для выращивания анаэробов существует также метод Фортнера – совместное выращивание на одной чашке аэробных и анаэробных бактерий. Для этого пластинку питательного агара в чашке Петри разделяют канавкой на 2 части. На одной половине высевают штрихом аэробные бактерии, а на другой – анаэробные бактерии. Между крышкой и дном чашки заливают парафин. Вначале вырастают аэробы, которые используют кислород, а затем начинают размножаться анаэробные бактерии (рисунок 9.14).

Рисунок 9.14 – Рост аэробных и анаэробных бактерий на одной чашке.

На первом этапе исследуемый материал высевают в жидкую среду КиттаТароцци с вазелиновым маслом (среда накопления).

На втором этапе исследования в случае помутнения среды готовят мазки, окрашивают их по Граму и микроскопируют с иммерсией. С целью получения изолированных колоний производят посев штрихом или по Дригальскому из среды накопления на плотную питательную среду для анаэробов (например, на кровяной агар). Посевы инкубируют в анаэростате при температуре 37ОС в течение 24-72 часов. Рассев культуры штрихом по поверхности плотной питательной среды и выращивание в анаэробных условиях называется методом Цейсслера. Существуют и другие методы получения изолированных колоний анаэробов, которые используются значительно реже. Например, метод Вейнберга представляет собой последовательные разведения материала в сахарном агаре (рисунок 9.15).

278

Рисунок 9.15 – Получение изолированных колоний анаэробов по методу Вейнберга.

Метод Вейона-Виньяля предусматривает выращивание культуры в 0,5% агаре в капиллярах пастеровских пипеток. Метод Перетца состоит в том, что культуру выращивают в 0,5% расплавленном агаре в чашке Петри под стеклянной пластинкой, расположенной на двух стеклянных или деревянных палочках (рисунок

9.16).

Рисунок 9.16 – Получение изолированных колоний анаэробов по методу Перетца.

Метод “перевернутых чашек” представляет собой выращивание культуры на поверхности толстого слоя агара, разлитого в крышку чашки Петри. Сверху в крышку помещают донышко чашки и вдавливают его в агар. Щель между краями крышки и дном чашки Петри заливают расплавленным парафином.

На третьем этапе изучают изолированные колонии, готовят из них мазки, окрашивают и микроскопируют. Для накопления чистой культуры производят посев в среду Китта-Тароцци и инкубирование при температуре 37ОС.

На четвертом этапе выросшую чистую культуру идентифицируют по морфологическим, тинкториальным, культуральным, биохимическим, антигенным и другим свойствам. По результатам изучения свойств чистой культуры выдают заключение о ее видовой принадлежности.

9.4.Вопросы для контроля усвоения материала

1.Расскажите о правилах взятия проб для микробиологического исследования.

Рекомендовано к изучению разделом по микробиологии сайта https://meduniver.com/

279

2.Какие методы выделения чистых культур аэробов Вы знаете?

3.Охарактеризуйте методы выделения чистых культур анаэробов.

4.Какие свойства изучают у чистых культур бактерий для их идентификации?

9.5.Тренировочные тесты

1.Бактериоскопическим методом изучают:

+морфологические свойства

+тинкториальные свойства - культуральные свойства - биохимические свойства - антигенные свойства

2.Бактериологическим методом изучают: - морфологические свойства - тинкториальные свойства + культуральные свойства - антигенные свойства - вирулентность

3.Цель бактериологического метода:

+ идентификация бактерий

-установление антигенной структуры

-определение тинкториальных свойств

-выявление капсулы у бактерий

-определение подвижности бактерий

4.На первом этапе бактериологического исследования: - отбирают пробу на анализ - проводят идентификацию бактерий

+ производят посев исследуемого материала - выделяют чистую культуру бактерий - выдают заключение

5.На втором этапе бактериологического исследования: - отбирают пробу на анализ - проводят идентификацию бактерий

- производят посев исследуемого материала + выделяют чистую культуру бактерий - выдают заключение

6.На третьем этапе бактериологического исследования: - отбирают пробу на анализ + проводят идентификацию бактерий

280

-производят посев исследуемого материала

-выделяют чистую культуру бактерий

-выдают заключение

7.На четвертом этапе бактериологического исследования: - отбирают пробу на анализ - проводят идентификацию бактерий

- производят посев исследуемого материала - выделяют чистую культуру бактерий + выдают заключение

8.Культивирование анаэробных бактерий проводят на среде: - Эндо - Плоскирева

+ Китта-Тароцци - Левина

- висмут-сульфитном агаре

9.Чистую культуру анаэробов выделяют методом:

-Грама

-диффузионным + Перетца

+ штрихов с инкубированием посевов в анаэростате

-штрихов с инкубированием в обычных условиях

10. Для культивирования анаэробов используют среду:

+Китта-Тароцци

+высокий столбик МПА - Эндо - Левина

- Плоскирева

Примечание: знаком + отмечены правильные ответы.

Рекомендовано к изучению разделом по микробиологии сайта https://meduniver.com/