
6 курс / Клинические и лабораторные анализы / Группы крови человека
.pdf––гелевые технологии имеют объективную, независимую от оператора, автоматизированную систему учета результатов, в то время как пробирочные тесты, в том числе непрямая проба Кумбса с LISS, оценивают субъективно, и результат во многом зависит от навыков оператора.
Имеются указания на то, что чрезмерное встряхивание реагирующей смеси может искажать результаты. Исследования, проведенные в рамках совместной программы «Международного комитета стандартов в гематологии» и «Международного общества переливания крови» показали, что чрезмерное встряхивание при ресуспендировании взвеси эритроцитов является причиной ложноотрицательных результатов (Holburn [352], Voak и соавт. [684]).
Причиной искажения результатов может быть также недостаточное отмывание эритроцитов (Voak и соавт. [683]).
В 1981 г. Voak и соавт. [684] провели серию экспериментов для изучения проблем, связанных с отмыванием эритроцитов при постановке непрямой антиглобулиновой реакции. Авторы исследовали эритроциты, сенсибилизированные слабыми анти-D-антителами IgG, реагирующими с авидностью от + до ++. Для отмывания эритроцитов применяли разные солевые растворы и различные режимы центрифугирования. Установлено, что даже при использовании хорошо зарекомендовавших себя отмывающих растворов регистрируют ложные результаты.
Применение слепого метода для оценки работы персонала подтвердило, что примерно 20 % кадровых сотрудников ошибались в 5 % случаев при использовании эритроцитов, сенсибилизированных анти-D-антителами IgG, которые реагировали, как указывалось выше, с авидностью от + до ++ (Voak и соавт. [683]).
Причиной ошибочных результатов при выполнении непрямой реакции Кумбса может служить примесь антикомплементарных антител в поликлональных тестовых антиглобулиновых сыворотках. Чаще всего встречаются антитела к С3-компоненту комплемента. При инкубации свежей сыворотки, смешанной с эритроцитами, на последних может адсорбироваться комплемент, что создает видимость положительного результата.
Проблема специфичности поликлональных антиглобулиновых сывороток была в значительной мере решена, когда Международный комитет стандартов в гематологии [370] утвердил стандартные процедуры, необходимые для контроля примеси анти-С3d-антител в этих тестовых реагентах.
С целью предупреждения ошибок при учете результатов непрямой реакции Кумбса в программу обучения специалистов службы крови Англии включен слепой тест на выявление слабых антител, позволяющий проводить быстрое обучение и коррекцию любых ошибок, сопровождающих скрининг антител. Этот тест может быть использован для оценки результатов работы каждого работника. С 1987 г. он рекомендован Британским комитетом по стандартам в гематологии для специалистов-иммуносерологов госпитальных банков крови [325].
301
Рекомендовано к покупке и изучению сайтом МедУнивер - https://meduniver.com/
В 1993 г. в Англии введен национальный референтный реагент анти-D IgG для контроля методов и мастерства операторов в отношении слабой, выявляемой нередко только под микроскопом агглютинации (Phillips и соавт. [523]).
Важным этапом в стандартизации методов выявления антиэритроцитарных антител и повышения их чувствительности явилось использование автоматических ридеров для плат (Poole и соавт. [533]), а также разработка гелевых мето-
дов DiaMed (Швейцария),Auto Bio Vue (Англия), Scan Gel (Франция, США).
Гелевые методы весьма перспективны. По оценкам специалистов, набор оборудования для гелевого метода может заменить 3-4 работников, что в экономически развитых странах покрывает расходы достаточно быстро. Однако использование такого оборудования, стоимостью 150–160 тыс. долларов США, в отечественной службе крови представляется в настоящее время нерентабельным, поскольку в сравнении с отечественными методами определения групповой и резус-принадлежности крови оно на порядок дороже. Кроме того, иммуносерологам хорошо известно, что ни одна из автоматизированных систем не может выявить все существующие антитела в их многообразии.
Например, Cummins и соавт. [240] нашли, что гелевые методы DiaMed, Auto Bio Vue в ряде случаев не выявляют слабую несовместимость по системе АВО, которую выявляет простая пробирочная проба. Гелевые тесты в ряде случаев не выявляют слабые антитела анти-Fy a, анти-Jk a, анти-S, анти-K (Voak и соавт. [681], Phillips и соавт. [522, 524]).
Причиной этого является все то же центрифугирование, которое разрывает слабые агглютинаты в процессе принудительного продавливания их через плотный гель. При исследовании 100 образцов плазмы группы В(III) с эрит роцитами А2В(IV) гелевым тестом DiaMed не выявлено 68 случаев несов местимости, тестомAuto Bio Vue – 76 случаев, а 5-минутный пробирочный тест с 0,9 % NaCl –8 случаев (Phillips и соавт. [522]).
Важным компонентом при определении антител наряду с методикой являются используемые стандартные эритроциты. Результативность скрининга во многом зависит от качества эритроцитов, присутствия в них тех или иных антигенов.
Какие эритроциты рекомендуется использовать для скрининга антител? В ответе на этот вопрос нет единого мнения. Для повседневного скрининга антител используют одно-, двух- и трехклеточные панели стандартных эритроцитов, содержащие максимальное количество трансфузионно опасных антигенов: D, С, Е, c, e, K, k, Fy a, Jk a, M, N, S, s, Le a, Lu a и др.
Для идентификации антиэритроцитарных антител используют многоклеточные панели, включающие C W и Kp a (Penny) и др., в том числе редкие антигены в гомо- и гетерозиготном варианте. Такие панели требуют лаборатории с большим набором реагентов,хранилищемжидкогоазота(VoakиScott[685]).Некоторыеисследователи полагают, что в высокочувствительных методах (СканГель, DiaMed и др.) можно использовать пулированные эритроциты, полученные смешиванием нескольких гомозиготных образцов. Так, Lillevang и соавт. [442] считают, что смесь из двух образцов
302
эритроцитов не менее надежна в серологических реакциях, чем те же образцы эритроцитов, взятые раздельно. Смесь должна содержать эритроциты двух доноров, каждыйизкоторыхгомозиготенпоразнымтрансфузионноопаснымантигенам.
Eggington и соавт. [270] считают, что применение пулов эритроцитов снижает чувствительность метода, затрудняет интерпретацию результатов, уменьшает процент выявления антител. К такому же выводу пришли Bombail-Girard и со-
авт. [177], Phillips и Voak [521].
Возможность создания принципиально отличающейся системы, не связанной с прямым выявлением агглютинации эритроцитов, обсуждается в работе Narayanan и соавт. [503]. Авторы предложили новый способ учета реакции агглютинации в обычном и ультрафиолетовом свете. Эта система получила положительную оценку Министерства здравоохранения США (Poole и соавт. [533]).
Метод дает возможность объективно оценить результаты непрямой реакции Кумбса, однако ряд технических особенностей не позволяет использовать его в конвейерной работе.
Предложены 6 приемов оценки иммуносерологических методов (Voak [679], Poole и соавт. [533]).
1.Тест на чувствительность, при котором применяют заведомо слабые антитела. Применение сильных антител сглаживает картину, так как они имеют высокую авидность, поэтому их легко обнаруживают даже в больших разведениях.
2.Тест на воспроизводимость метода с использованием гетерозиготных образцов эритроцитов,сенсибилизированныхслабымиреферентныманти-D-антителами IgG.
3.Титрование антител, относящихся к разным антигенным системам эритроцитов: анти-K, анти-Fy a, анти-Jk a и др. – для установления уровня чувствительности в отношении антигенов каждой системы.
4.Пробный подбор совместимых пар донор – реципиент с применением свежих образцов сыворотки и эритроцитов. Такой подбор позволяет выявить ложноположительные результаты, обусловленные комплементом исследуемой сыворотки и антикомплементарными антителами, в основном анти-C3d, присутствующими в тестовых антиглобулиновых реагентах.
5.Сравнительные испытания (не менее 3000 тестов) в разных лечебных учреждениях. Такие испытания хорошо выявляют недостатки и слабости любых тестовых систем, обладающих разной степенью чувствительности к тем или иным антигенам и антителам.
6.Тесты с гомо- и гетерозиготной формой различных антигенов для отобра методики, которая будет хорошо работать с гетерозиготными эритроцитами.
Например, микроплатовые системы Solid Screen (Biotest) и Capture (Immuno)
не требуют использования эритроцитов, гомозиготных по данным антигенам, и лучше выявляют слабые антитела, чем системы микрокапиллярных гелевых колонок или классическая непрямая проба Кумбса (Poole и соавт. [533]).
Однако дальнейшие исследования показали, что примерно 50 % образцов эритроцитов Kk низкоавидны при выявлении антител Келл-Челлано. Это дает
303
Рекомендовано к покупке и изучению сайтом МедУнивер - https://meduniver.com/
основание беспокоиться о качестве скрининга антител, так как невозможно обеспечить гомозиготными по антигену K эритроцитами все панели для скрининга антител из-за относительной редкости гомозигот KK: 2–3 образца на 1 тыс. (Phillips, Voak [521]).
В литературе имеются сведения о создании иммуносерологических методов нового поколения, основанных на использовании антигенов эритроцитов, выделенных в чистом виде. Возможно, самая лучшая система, которая будет разработана в ближайшем обозримом будущем, позволит проводить скрининг антител с помощью биологического микрочипа, на который нанесены все известные трансфузионно опасные антигены. Над созданием подобных методов работает несколько групп ученых: одна - под руководством M. Scott в Международной референс-лаборатории групп крови (Бристоль, Англия), другая - под руководством M. Read в Центре крови Нью-Йорка. Не исключено, что уже в ближайшие годы мы можем стать свидетелями новых автоматизированных иммуноферментных методов определения клинически наиболее значимых эритроцитарных антител без использования эритроцитов (Ekins [271], Ekins, Chu [272]). Попытки создания биочипов предпринимаются и в нашей стране.
Проанализированные нами данные литературы убеждают в том, что, несмотря на большой выбор автоматизированных методик, наилучшей до настоящего времени остается непрямая проба Кумбса.
По нашему мнению, упомянутое выше малогабаритное оборудование Н.И. Васильева, специально предназначенное для проведения этой пробы, позволяет обеспечить высокое качество подбора совместимой крови для переливания реципиенту.
ДНК-типирование Rh-антигенов
Идентификация резус-принадлежности по ДНК более сложная процедура, чем ДНК-типирование групповых антигенов АВО, Lewis и др. Это можно объяснить тем, что большинство антигенных систем эритроцитов человека кодируется простыми, часто одиночными нуклеотидными заменами, встречающимися
сбольшим постоянством. Различия антигенов Rh обусловлены множественными нуклеотидными заменами и сложными перестройками в генах RHD и RHCE, поэтому, несмотря на высокую степень гомологии этих генов, трудно найти для амплификации соответствующие участки, которые отличались бы друг от друга
сдостаточным постоянством.
Наиболее контрастные отличительные признаки генов D и CE отмечены в 3'-концевом участке экзона 7 [441, 721], интроне 4 [138, 194, 615, 616], экзонах
3–7 и 9 [298, 381, 420, 452].
Определение резус-принадлежности индивида по его ДНК сводится к установлению последовательности аминокислот в указанных выше участках генов RH с помощью ПЦР. Сравнивая результаты ПЦР, полученные с испытуемым образцом ДНК и контрольными образцами, можно сделать заключение о том,
304
какому типу (D + или D −) соответствует аминокислотная последовательность исследуемого субстрата.
Генотип, определяемый по ДНК, не всегда совпадает с серологически выявляемым фенотипом. Так, D u или парциальный D-антиген, диагностированный с помощью ПЦР, может не соответствовать результатам серологических исследований, в которых они проявляют себя как обычный D. Нередко ПЦР выявляет фрагменты гена D у лиц D −, на основании чего делают вывод, что данные лица генетически являются резус-положительными, но имеют неэкспрессирующий ген D, вследствие чего серологически их идентифицируют как резус-отрицательные.
Avent и соавт. [146], Rouillac и соавт. [582] указывают, что более точные результаты удается получить с помощью двух ПЦР, направленных к разным участкам гена. Еще более точные результаты получили Gassener и соавт. [298], Legler и соавт. [420], Maaskant-van Wijk и соавт. [452] при использовании комплексной ПЦР, фокусированной на несколько экзонов, например: 3–7, 9.
Bennet и соавт. [162] выявили с помощью соответствующих олигонуклеотидных праймеров продукт из 186 пн от 3'-концевого некодирующего участка экзона 10 гена D, в то время как ген СЕ не давал продукта от этого участка экзона 10.
Volter и соавт. [721] предложили метод, основанный на установлении различий, имеющихся в экзоне 7 генов D и СЕ. Авторы сравнили продукт из 155 пн гена D и 146 пн гена СЕ. Применяя этот метод с соответствующими контролями, можно определить, является ли человек гетероили гомозиготным по гену D.
Метод, предложенный Simsek и соавт. [615], включает амплификацию интрона 4 генов D и СЕ. Продукт ПЦР, полученный от гена СЕ, составляет 1200 пн, а продукт гена D – 600 пн, так как интрон 4 гена D имеет делецию 650 пн.
Когда эти различные методы были опробованы на большом числе образцов ДНК, полученных от людей с известным фенотипом D, стало очевидно, что не все люди D − имеют делецию гена D.
Simsek и соавт. [615] выявили 3 человека с фенотипом Cde, которые типированы как D +, и 2 человека с фенотипом СсDe, типированных как D −. Авторы идентифицировали ген D по экзону 10, что дало несовпадающие результаты. Многие исследователи признают, что такие расхождения при использовании ПЦР встречаются, и что типирование антигена D по ДНК должно производиться как минимум двумя различными тестами и по разным районам гена D [146, 441, 616].
Hyland и соавт. [368] сообщили о 2 донорах с фенотипом Cde, один из которых имел фрагменты гена D, присутствующие выше 5'-участка экзона 1 и внутри 3'-некодирующего участка. Последовательности гена D, обычно расположенные между экзонами 7 и 10, у этого донора отсутствовали. У другого донора был нормальный ген D в обследованных участках.
Blunt и соавт. [174], Carritt и соавт. [194] обнаружили у 8 неродственных доноров негров с фенотипом Cde S делецию гена D, однако экзоны 8–10 присутствовали. В методе идентификации гена D с помощью ПЦР по экзону 10 такие индивиды типируются как D +.
305
Рекомендовано к покупке и изучению сайтом МедУнивер - https://meduniver.com/
Carritt и соавт. [194] обратили внимание на высокую частоту лиц монголоидной расы, которые имели нормальный ген D, но настолько слабый антиген D, что его можно было выявить только с помощью адсорбции – элюции.
Qun и соавт. [541] исследовали ДНК 74 резус-отрицательных китайцев народности хан. У 46 из них специфические для гена D экзоны отсутствовали. У 22 обнаружена мутация G 1227 A, характерная для фенотипа Del. У 5 человек имелся гибридный ген RHD(1-2)-CE(3-9)-D(10). Один исследованный имел экзон 6 гена RHD с необычной мутацией C 93 A. Авторы выделяют 3 возможные, по их мнению, механизма, приводящие к формированию резус-отрицательного фенотипа: делеция гена RHD, гибридный ген RHD-CE-D и мутация C 93 A. Причем 2 последних механизма вносят определенные разногласия в результаты гено- и фенотипирования. При генотипировании обследуемый человек идентифицируется как D +, а при фенотипировании – как D −.
Аллель-специфическая ПЦР разработана для генотипирования антигенов hr' (с) и rh″ (Е) [417], rh″ (Е) и hr" (е) [280], D, C и с [536], а также для установ-
ления гомо- и гетерозиготности индивида по генам RH [519].
Определенные успехи достигнуты в идентификации антигена D на ранних стадиях развития эмбриона по ДНК, экстрагированной из амниоцитов, присутствующих в амниотической жидкости.
Следует отметить, что из-за сложности ДНК-типирования антигена D методы молекулярной диагностики, включая полимеразную цепную реакцию, редко применяют взамен серологического типирования. Исключение составляют случаи судебно-медицинских экспертиз, имеющих целью установить или исключить родственные отношения между обследуемыми. В этих случаях ДНКтипирование, в том числе по системе резус, практически не дает сбоев.
С целью проверки достоверности результатов определения групповой принадлежности крови молекулярно-биологическими методами проведено I Международное рабочее совещание по генотипированию групп крови в рамках Международного общества трансфузиологов и Международного комитета по стандартизации в гематологии.
Работа сводилась к следующему: в 30 профильных лабораторий направлены контрольные образцы ДНК взрослых людей и новорожденных с закодированным фенотипом. Как следует из отчетного доклада, представленного Daniels и соавт. [249], после сравнения полученных результатов выяснилось, что ошибки идентификации молекулярными методами составили от 0 до 11 %. С тем, чтобы предупредить возможные ошибки, рабочее совещание решено проводить раз в два года.
Список литературы
1.Абдина А.С. Группы крови у хакасов (гемотрансфузионные и этногенетические вопросы): автореф. дис. … канд. мед. наук. – М., 2000. – 19 с.
2.Абелев Г.И. Дифференцировка и опухолевый фенотип в клетках лейкозов и лимфом: Клиническая онкогематология. – М.: Медицина, 2001. – С. 116–123.
306
3.Авдеева Р.А. К вопросу о толерантности матери к резус-фактору // Пробл. гематол. – 1961. – № 11. – С. 24.
4.Авдеева Р.А., Дивович Г.М., Егоров В.М. и др. Наш опыт применения автоматической системы «Групаматик МЖ-50» для проведения серологических исследований // Пробл. гематол. – 1980. – № 1. – С. 53–56.
5.Авдеева Р.А., Лаврова Л.П. Автоматизированные методы серологического исследования крови доноров // Иммунологическое типирование тканей: сб. науч. трудов. – М., 1982. – С. 63.
6.Аграненко В.А., Скачилова Н.Н. Гемотрансфузионные реакции и осложнения. – М.: едицина, 1986. – 235 с.
7.Алипов А.Н., Завьялов Э.Н., Войхонский В.Л. и др. Первый отечественный анализатор групп крови АГК-01: Иммунологический мониторинг патологических состояний и иммунореабилитация//Всероссийскаяконференция23–24ноября1995г.:тез.докл.– М., 1995. – С. 42–43.
8.Андреев В.С. Кондуктометрические методы и приборы в биологии и медицине. – М.: Медицина, 1973.
9.АшкеназиА.Я.Омассовомопределениирезус-фактора(получениебольшихколичеств универсальной сыворотки антирезус и экспресс-метод определения резус-фактора): автореф. дис. … канд. мед. наук. – Мурманск, Ленинград, 1964. – 20 с.
10.Ашкенази А.Я. Опыт получения больших количеств универсальной сыворотки антирезус // Пробл. гематол. –1960. – № 5. – С. 52.
11.Ашкенази А.Я. Получение больших количеств универсальной сыворотки антирезус путем применения различных коллоидных разводителей (сообщение 2) // Пробл. гематол. – 1965. – № 3. – С. 24.
12.Ашкенази А.Я. Применение поливинилпирролидона для изготовления стандартных сывороток антирезус // Пробл. гематол. – 1968. – № 12. – С. 49.
13.АшкеназиА.Я.Экспресс-методопределениярезус-фактора//Пробл.гематол.–1962.–
№59. – С. 59.
14.Башлай А.Г. Изготовление сывороток для идентификации изоантигенов эритроцитов крови человека и методы их использования: автореф. дис. … канд. мед. наук. – М., 1978. – 19 с.
15.БашлайА.Г.Обускоренномметодеопределениярезус-фактораиизоиммунныхрезус- антителметодомконглютинациисжелатиной//Пробл .гематол.–1960.–№7.–С. 56.
16.Башлай А.Г., Донсков С.И., Мусатова В.С и др. Частота аллоиммунизации к трансфузионно опасным антигенам эритроцитов // Трансфузиол. и служба крови: тез. конф. 17–19 ноября 1998 г. – М., 1998. – С. 61.
17.Белкина Е.В. Гетерогибридомы, секретирующие моноклональные IgM антитела к D-антигену системы резус: автореф. дис. … канд. мед. наук. – М., 1994. – 24 с.
18.Белкина Е.В., Дерюгина Е.И., Митерев Г.Ю. и др. Гетерогибридомы – продуценты моноклональных антител IgM к D антигену системы резус // Биотехнология. – 1993. –
№8. – С. 2–4.
19.Бирюкова Л.С. Острая почечная недостаточность в гематологической клинике: автореф. дис. … докт. мед. наук. – М., 2002. – 46 с.
20.Бирюкова Л.С., Казаринова А.А., Тимохов В.С., Фетисова Е.В. Гемотрансфузионное осложнение и острая почечная недостаточность при изосенсибилизации к фактору hr' (c) // Проблемы гематологии. – 1996. – № 4. – С. 39–41.
21.Блинов Н.И., Дробышева Н.С. Фактор Rh эритроцитов человека, его серологические свойства и клиническое значение // Сб. трудов Ленингр. ин-та перелив. крови. – 1947. – Т. VII. – С. 98.
22.Буренкова Л.В. Получение больших количеств стандартных сывороток антирезус из утильной крови // Пробл. гематол. – 1959. – № 4. – С. 58.
307
Рекомендовано к покупке и изучению сайтом МедУнивер - https://meduniver.com/
23.Вартапетов Б.А. К производству групповых стандартных сывороток. // Труды Всеукр. ин-та неотложной хир. – 1934. – Вып. 1. – С. 95.
24.Васильев Н.И. Модернизированная двухэтапная проба на индивидуальную совместимость при переливании эритроцитов: автореф. дис. … канд. мед. наук. – М., 2002. – 24 с.
25.ГавриловО.К.,ДонсковС.И.,ЛавроваЛ.П.идр.Оборганизацииавтоматизированного исследования крови на аппаратах «Групаматик» в условиях СПК // 51-я науч. сессия Центрального НИИ гематологии и переливания крови: материалы. – М., 1979. – С. 17–18.
26.Генофонд и геногеография народонаселения / под ред. Ю.Г. Рычкова: Т. 1. Генофонд населения России и сопредельных стран. – СПб.: Наука, 2000. – 611 с.
27.Генофонд и геногеография народонаселения / под ред. Ю.Г. Рычкова: Т. 2. Геногеографический атлас населения России и сопредельных стран. – СПб.: Наука, 2003. – 670 с.
28.Герасимова Н.Д. Распределение эритроцитарных антигенов и антител у онкологических больных: автореф. дис. … канд. мед. наук. – М., 2003. – 16 с.
29.Герасимова Н.Д., Мороков В.А. Донсков С.И и др. Частота аллоиммунизации гематологических и онкологических больных // I Съезд гематологов России: материалы. – М., 2002. – С. 17.
30.Герасимова Н.Д., Мороков В.А., Донсков С.И. Особенности распределения антигенов системы Rh у онкологических больных // Вестник службы крови России. – 2003. – № 4. – С. 36–41.
31.Дерюгина Е.И., Белкина Е.В., Оловникова Н.И. и др. (Deryugina E.I., Belkina E.V., Olovnikova N.I. et al.) Human monoclonal IgM anti-D antibodies produced by novel heterohybridoma cell lines // II Intern. Conf. Hum.Anyibod. Hybridom. – Cambridge, UK, 1992. – Р. 55.
32.Донсков С.И. Приостановить выдачу Келл-положительной крови в больницы – лучший способ предупреждения посттрансфузионных осложнений по фактору Келл // Информ. бюлл. «Новое в трансфузиологии». – 1993. – Вып. 2. – С. 21–23.
33.Донсков С.И. Значение минорных антигенов Келл и hr' (c) при переливании эритроцитноймассы//Трансфузиология:научныйреферативныйжурнал:приложение к журналу «Вестник службы крови России». – 1996. – № 2. – С. 8–9.
34.Донсков С.И. Опыт определения разновидностей резус-фактора экспресс-методом на плоскости без подогрева // Лаб. дело. – 1974. – № 3. – С. 171–172.
35.Донсков С.И. Предупреждение посттрансфузионных осложнений, обусловленных фактором Келл и hr' (c) // Информ. бюлл. «Новое в трансфузиологии». – 1996. – Вып. 13. – С. 65–67.
36.Донсков С.И. Разработка экспресс-методов определения резус-фактора на плоскости при комнатной температуре: автореф. дис. … канд. мед. наук. – М., 1969. – 19 с.
37.Донсков С.И. Специализированная служба иммунологического типирования доноров кровиикостногомозга:автореф.дис.…докт.мед.наук.–М.,1987//Вестникслужбы крови России. – 2003. – № 1. – С. 44–59.
38.Донсков С.И., Башлай А.Г., Кравчук О.А и др. К вопросу о пересмотре концепции иммунологической совместимости эритроцитов // Информационный бюллетень
«Новое в трансфузиологии». – 2002. – Вып. 31. – С. 58–59.
39. Донсков С.И., Башлай А.Г., Мусатова В.С. и др. Показатели аллоиммунизации к антигенам эритроцитов у жителей г. Москвы за 1999 г // Актуальные вопросы гематологии и трансфузиологии: материалы научно-практической конференции 6–8 июня 2000 г. – СПб., 2000. – С.242.
40.Донсков С.И., Башлай А.Г., Судейкина Н.Н., Зингерман Б.В. Современный взгляд на концепцию совместимой крови // Вестник службы крови России. – 2004. – № 1. – С. 15–20.
308
41.Донсков С.И., Башлай А.Г., Червяков В.И и др. Сенсибилизация населения к трансфузионно опасным антигенам эритроцитов // Трансфузиология и служба крови: материалы конф. 17–19 ноября 1998 г. – М., 1998. – С. 69.
42.Донсков С.И., Дубинкин И.В., Кравчук О.А. и др. Распределение антигена С W
среди доноров крови Москвы и Дзержинска // Проблемы гематологии. – 2005. –
№1. – С. 31.
43.ДонсковС.И.,КаландаровР.С.,КнязьковН.Н.идр.Изучениефеноменаседиментации эритроцитов под действием ультразвука // Иммунологический мониторинг патологических состояний и иммунореабилитация / Всероссийская конференция 23–24 ноября 1995 г.: тез. докл. – М., 1995. – С. 94–95.
44.Донсков С.И., Липатова И.С. Аллоиммунизация антигенами эритроцитов – глобальный популяционный процесс // Вестник службы крови России. – 2001. –
№3. – С. 18–24.
45.Донсков С.И., Манишкина Р.П., Красавцева Т.К. и др. О неодинаковой способности резус-положительных и резус-отрицательных людей образовывать антитела к аллоантигенам // 57-я научная сессия ЦНИИГПК: материалы – М., 1985. – С. 24–26.
46.Донсков С.И., Оточева Л.В., Манишкина Р.П. Связь антигенов резус с геном иммунного ответа // Новое в трансфузиологии и гематологии: материалы конф. – Ташкент, 1980. – С. 172.
47.Донсков С.И., Пискунова Т.М., Липатова И.С., Червяков В.И. Случай спонтанного антителообразования к антигенам системы резус (возможный механизм феномена) // Вестник службы крови России. – 1998. – № 4. – С. 27–29.
48.ДонсковС.И.,ПорешинаЛ.П.,ЛипатоваИ.С.идр.Выявлениепротивоэритроцитарных антител у лиц, не имевших антигенной стимуляции // Актуальные вопросы гематологии и трансфузиологии: материалы конф. – СПб., 2000. – С. 242–243.
49.ДонсковС.И.,УринсонР.М.,ЗотиковЕ.А.Экспресс-методопределениярезус-фактора
//Лаб. дело. – 1968. – № 10. – С. 607.
50.Доссе Ж. (Dausset J). Иммуногематология / пер. с фр. Ю.И. Лорие / под ред. П.Н. Косякова. – М.: Медгиз, 1959. – 638 с.
51.Дубинкин И.В., Донсков С.И. Моноклональные антитела для определения антигена hr' (c) системы резус // Актуальные вопросы гематологии и трансфузиологии / Российская научно-практическая конференция 8–10 июня 2004 г.: материалы. – СПб., 2004.–С. 142–143.
52.Дубинкин И.В., Донсков С.И., Пискунова Т.М. и др. Серологическая характеристика моноклональных антител к антигенам Rh-Hr, Kell // Актуальные вопросы транс фузиологии и клинической медицины: материалы конференции. – Киров, 2005. – С. 156–157.
53.Дубинкин И.В., Донсков С.И., Пискунова Т.М., Горшкова Т.В. Перекрестно реагирующие несепарируемые анти-Ce-антитела у аллоиммунизированного донора
//Вестник службы крови России. – 2006. – № 3. – С. 5–6.
54.Забалуева И.И. Приготовление сывороток антирезус с использованием полиглюкина в качестве разводителя // Пробл. гематол. – 1964. – № 4. – С. 49.
55.Зарецкая Ю.М. Клиническая иммуногенетика. – М.: Медицина, 1983. – 208 с.
56.Зарецкая Ю.М., Донсков С.И. Принципы обеспечения иммунологической безопасности гемокомпонентной терапии в 21-ом веке // Проблемы гематологии. – 1998. – № 3. – С. 7–12.
57.ЗборовскаяИ.Б.Супрессорыопухолевогороста(антионкогены),механизмыдействия, участие в развитии гемобластозов: Клиническая онкогематология. – М.: Медицина, 2001. – С. 29–35.
58.Зотиков Е.А., Бабаева А.Г., Порешина Л.П. Клеточный химеризм и химеризм клетки при трансплантации костного мозга. – М., 2003. – 112 с.
309
Рекомендовано к покупке и изучению сайтом МедУнивер - https://meduniver.com/
59.Зотиков Е.А., Уголев А.М. Изменение типовых антигенных свойств эритроцитов человека под воздействием некоторых протеолитических ферментов // Бюлл. экспер. биол. и мед. – 1961. – № 2. – С. 69.
60.Зотиков Е.А., Уринсон Р.М. Изменение антигенных свойств эритроцитов под влиянием воздействия некоторых химических агентов // Бюлл. экспер. биол. и мед. – 1965. – № 7. – С. 83.
61.Иммуносерология (нормативные документы) / составит. А.Г. Башлай, С.И. Донсков. – М.: ВНИИТИ, 1998. – 196 с.
62.Ичаловская Т.А. Материалы к учению о резус-факторе: автореф. дис. … канд. мед. наук. – М., 1950. – 11 с.
63.Каландаров Р.С. Разработка автоматизированного метода определения группы крови и резус-фактора с применением ультразвука: автореф. дис. … канд. мед. наук. – М., 1999. – 23 с.
64.Каландаров Р.С., Князьков Н.Н., Донсков С.И. Оптико-акустический способ регистрации реакции гемагглютинации и его применение для определения группы крови(предварительноесообщение)//Проблемы.гематологии.–1997.–№2.–С. 5–8.
65.Князьков Н.Н. Методы и технические средства экспресс фракционирования и концентрирования биологических микроструктур: автореф. дис. … канд. биол. наук. – Л., 1982. – 19 с.
66.Кобзев Ю.Н., Флейшман Е.В. Хромосомные изменения при гемобластозах: Клиническая онкогематология. – М.: Медицина, 2001. – С. 92–115.
67.Копосов Е.С. Некоторые изменения и упрощения в методике определения резусфактора при переливании крови (предварительное сообщение): труды Ленингр. санитарно-гигиен. мед. ин-та. – 1960. – Т. 59. – С. 36.
68.Копосов Е.С. Упрощенная методика определения резус-фактора крови в организации работы хирургической клиники: труды Ленингр. санитарно-гигиен. мед. ин-та. –
1961. – Т. 73. – С. 65.
69. Косяков П.Н. Изоантигены и изоантитела человека в норме и патологии. – М.: Медицина, 1974. – 360 с.
70.Косяков П.Н. Иммунология изоантигенов и изоантител. – М, 1965. – 312 с.
71.Косяков П.Н., Муравьева Л.Н. Антигены групп крови в онтогенезе // Бюлл. экспер. биол. – 1962. – № 6. – С. 52.
72.Краинская-Игнатова В.Н. Пути к изучению совместимости крови при переливании: труды Ин-та неотлож. хир. и перелив. крови. – 1934. – Вып. 1. – С. 83.
73.Лаврова Л.П., Авдеева Р.А., Федорова Л.И. и др. Автоматизированный метод серологического исследования крови, заготовленной на стабилизаторе ЭДТА-Nа // 54-я науч. сессия Центрального НИИ гематологии и переливания крови: матералы. – М, 1982. – С. 82.
74.Лаврова Л.П., Каплун А.Г., Авдеева Р.А. и др. Отечественный иммунодиагностикум для автоматизированного исследования крови на сифилис // 55-я науч. сессия Центрального НИИ гематологии и переливания крови: материалы – М, 1983. – С. 103–106.
75.Липатова И.С., Червяков В.И. Редкий случай аллосенсибилизации к антигену E (rh") системы Rhesus // Проблемы гематологии. – 1998. – № 2. – С.34.
76.Любимова Л.С. Трансплантация костного мозга у больных острыми лейкозами и апластической анeмией: автореф. дис. … докт. мед. наук. – М., 1982. – 37 с.
77.Меркулова Н.Н. Распространенность, физиологические и иммуносерологические особенности естественных и иммунных групповых антител системы АВО у жителей Среднего Приобья: автореф. дис. … канд. мед. наук. – М., 1999. – 35 с.
78.Минеева Н.В. Группы крови человека (основы иммуногематологии). – СПб., 2004. – 185 с.
310