6 курс / Кардиология / Справочник_хирурга_Раны_и_раневая_инфекция_Абаев_Ю_К
.pdf1 5 0 |
Инфекция и рана |
адсорбция, т.е. способность одного вещества концентрироваться на поверхности другого. В зависимости от физико-химических свойств взаимодействующих ве ществ этот процесс может быть в определенной степени обратимым.
Газожидкостная хроматография представляет собой один из современных ва риантов описываемого аналитического метода. Его суть состоит в следующем. Ис следуемый образец, представляющий собой смесь различных летучих веществ, в струе какого-либо газа-носителя вводится в хроматографическую колонку. Ко лонка — главная часть хроматографа. Она представляет собой трубку, наполнен ную сорбентом, на который нанесена жидкая неподвижная фаза. Разделяемые ве щества способны обратимо распределяться между потоком газа и жидкой непод вижной фазой.
Разные компоненты исследуемой смеси обладают разной способностью к рас пределению и удержанию жидкостью, следовательно, длительность пребывания в потоке газа-носителя и в неподвижной жидкой фазе колонки для молекул разных веществ будет различной. То есть каждый компонент продуваемой через колонку смеси задержится в ней на неодинаковое время. Таким образом, на выходе из колон ки можно получить последовательно каждый отдельный компонент смеси.
Существует несколько способов регистрации анализируемых веществ на выходе из колонки. В большинстве случаев выход индивидуального вещества тем или иным способом преобразуется детектором в электрический сигнал, который регистриру ется в виде пика на ленте самописца. Такая диагностика напоминает определение болезни по запаху.
Индекс активности антисептиков
Клиническое применение антисептиков в принципе должно проводиться так же, как и антибиотиков, т.е. с учетом приобретенной устойчивости к ним возбудите лей. Однако на практике этого не делают, так как пока доминирует представление, что устойчивые к антисептикам формы бактерий возникают редко и механизмы их селекции малоэффективны. Несостоятельность этого представления опровергается многочисленными работами, свидетельствующими о довольно частом развитии ус тойчивых к антисептикам форм бактерий как в опытах пассирования на субстати ческих концентрациях антисептиков, так и в условиях их обитания во внешней сре де, в том числе в растворах антисептиков.
Внедрение в практику проверки клинических штаммов бактерий на чувстви тельность к антисептикам тормозится также тем, что применяемые методы, вполне пригодные для оценки активности новых антисептических препаратов, трудоемки и недостаточно дискретны в определении чувствительности к антисептикам. В свя зи с этим предложена методика определения чувствительности бактерий к анти септикам на плотных питательных средах, близкая к методике определения чув ствительности бактерий к антибиотикам и критерий клинической устойчивости (А.П. Красильников, А.А. Адарченко, 1989).
•
Глава X. Методы контроля раневого заживления |
1 5 1 |
Внедрение этих предложений может резко повысить эффективность антисептикотерапии, для которой характерны массовость, общедоступность, безопасность и экономичность, но в ряде случаев не вполне объяснимая неэффективность. Показа тель клинической устойчивости представляет собой в основном качественную оценку антисептика (активен, неактивен) или испытуемой популяции бактерий (чувствительная, устойчива), что затрудняет выбор оптимального для терапии ан тисептика. Для количественной оценки активности антисептиков и чувствительно сти к ним бактерий предложен количественный показатель — индекс активности антисептиков (ИАА);
Под ИАА понимается отношение рабочей (рекомендуемой в практике) концен трации антисептика к его минимальной подавляющей концентрации (МПК) для конкретного штамма бактерий или X+2S МПК для популяции, вида или группы близкородственных видов. Взять вместо рабочей терапевтическую концентрацию антисептика в биотопе (как это делают в отношении антибиотиков) не представ ляется возможным, так как она выраженно варьирует в зависимости от биотопа (интактные и поврежденные кожа и слизистые оболочки), в которые вносятся ан тисептики.
В связи с тем, что при внесении в биотоп рабочая концентрация антисептика быстро падает в результате растворения, всасывания, инактивации, нейтрализации, внесен поправочный коэффициент, который для ран и слизистых оболочек равен 4, для интактной кожи — 2. Это означает, что ИАА, равный 4 и менее, т.е. соответству ющий клинической устойчивости штаммов, указывает на устойчивость культуры или неэффективность препарата в случае его использования на поврежденной коже и на поврежденных и интактньис слизистых оболочках. В дальнейшем, чем больше величина ИАА^тем активнее при прочих равных условиях препарат или чувстви тельнее культура бактерий.
При расчете ИАА следует иметь в виду, что первая величина для того или иного препарата известна — это концентрация, используемая в практике антисептики. Однако, поскольку для многих антисептиков концентрации для терапевтической (на поврежденной коже и слизистых оболочках) и профилактической (на интактной коже) антисептики различны, ИАА рассчитывают раздельно. Вторую величину, не обходимую для характеристики культур бактерий, надо находить титрованием ее на средах со снижающимися (от рабочей) концентрациями препарата. Для характе ристики антисептика в качестве второй величины берут среднюю МПК (X + 2S), оп ределенную на 100-200 культурах того или иного вида, не имевших контакта с ан тисептиком.
Чувствительность к антисептикам исследуется методом разведения препарата в 2% питательном агаре на переваре Хоттингера с установлением для каждого штам ма МПК в ряде Фульда со знаменателем VlO, величины которого колебались от
0,0018 до 99,7 мг/мл. Для каждого вида бактерий избирается ряд, минимальная кон центрация которого не оказывает подавляющего влияния ни на один штамм, а мак-
. |
' |
.•' |
у |
1 5 2 |
|
|
Инфекция и рана |
симальная подавляла бы все без исключения штаммы. На питательные среды с анти септиками штаммом-репликатором засевается одновременно 50 бульонных 18-часо вых культур с концентрацией около 850 млн микробных тел в 1 мл (посевная доза около 1 млн). Результаты учитываются через 1 сут (наличием или отсутствием рос та в зоне отпечатка). •
Цитологическое исследование
Впервые метод цитологического исследования был разработан A. Policard (1916) для определения сроков наложения вторичных швов. В 1942 г. М.П. Покровская и М.С. Макаров предложили методику изучения мазков-отпечатков из ран. Метод от носительно прост и позволяет объективно оценивать динамику заживления ран. Д.М. Штейнберг (1948) предложил способ подсчета в мазках-отпечатках количе ства микрофлоры и встречающихся в ране различных клеток с составлением цитограмм. Цитологическое исследование мазков-отпечатков практически всегда соче тается с бактериоскопией, как нативного материала, так и препаратов, окрашенных по Граму. Метод позволяет легко и быстро дифференцировать палочки от кокков, определить грамположительную и грамотрицательную микрофлору.
Препараты изучают на подвижность микрофлоры методом фазово-контрастной микроскопии. Аспорогенные анаэробные палочковидные формы подвижны. Ана эробные кокки неподвижны.
Наличие в препаратах, окрашенных по Граму, грамотрицательных аспорогенных палочек, расположенных парно, цепочками или в виде нитей, свидетельствует о воз можном присутствии в материале бактероидов или фузобактерий. Для кампилобактера характерны изогнутые палочки S-образной формы. Анаэробные грамположительные кокки имеют форму от сферической до овальной и располагаются пооди ночке, парами, в тетрадах, цепочками и неправильными скоплениями.
Для изготовления препарата необходимо с поверхности раны осторожно уда лить гной с помощью стерильного шарика из ваты или марли. Предметным сте рильным стеклом прикасаются к тому месту раны, которое подлежит мсследованию. После высыхания для фиксации препарат погружают в метиловый спирт на 5 мин или же в денатурированнывй спирт на 20 мин. После фиксации препарат окрашивают по Граму или Романовскому и Гимзе и исследуют методом световой микроскопии.
Ценность цитологического мазка-отпечатка из раны состоит в том, что с его помощью можно «отбирать» на стекло менее зрелые клетки регенерата, не связан ные еще прочно между собой и основным веществом соединительной ткани. Это позволяет изучить самые молодые клетки поверхностных слоев раны, за счет кото рых замещается раневой дефект. В препарат-отпечаток попадают клеточные эле менты из двух верхних слоев раны (лейкоцитарного и сосудистого), которые состо ят в основном из недифференцированных элементов соединительной ткани в раз-
Глава X. Методы контроля раневого заживления |
1 5 3 |
личных переходных формах своего развития, адекватно отражающих динамику репаративной регенерации.
При анализе цитограмм оценка микробной обсемененности раны проводится следующим образом:
•«-» — микрофлора не обнаружена;
•«+-» — единичные микробы в различных местах препарата;
•«+» — немногочисленные разрозненные микробы в большинстве полей зре ния;
•«++» — обильная микрофлора, локализующаяся в виде скоплений или равно мерно покрывающая весь препарат.
Количество нейтрофильных гранулоцитов, ответственных за фагоцитоз, обозна чают в цитограмме следующим образом:
•«+» — разрозненные нейтрофильные гранулоциты по 5-10 в поле зрения;
•«++» — отдельные небольшие скопления клеток в различных местах препа рата;
•«+++» — значительные скопления клеток в различных местах препарата;
•«++++» — скопления по всему препарату массы лейкоцитов, рассмотреть их в отдельности не удается.
Цитологическая характеристика раневого процесса включает в себя также оцен ку характера фагоцитоза:
1.Завершенный, когда фагоцитоз "заканчивается полным уничтожением погло щенных микробов, подавляющее большинство которых находится внутриклеточно в различной фазе переваривания. Такой вид фагоцитоза характерен для неосложненного течения заживления.
2.Незавершенный, когда большое количество микробов находится как вне, так и внутриклеточно, но лишь в начальной стадии переваривания. Такая карти на характерна для первых дней заживления первичных гнойных ран.
3.Дегенеративный, когда в нейтрофильных гранулоцитах обнаруживается большое количество микробных тел, высокая вирулентность которых обус ловливает гибель фагоцитов. В отпечатке большое количество микроорганиз мов, располагающихся внеклеточно и множество погибших нейтрофилов. Стойкое отсутствие фагоцитоза при большом количестве микрофлоры свиде тельствует об угнетении защитных механизмов организма-хозяина.
Интенсивность фагоцитоза определяется фагоцитарной активностью (% фаго цитирующих нейтрофильных гранулоцитов), которая при достаточной выраженно сти защитных реакций достигает 30-40% от общего числа нейтрофилов и фагоци тарным индексом — средним количество поглощенных микроорганизмов каждым фагоцитирующим нейтрофилом (норма 2-4).
С учетом указанных критериев анализируются картины раневых отпечатков. Обнаруживаемые при этом изменения определяются стадией раневого процесса и могут бить классифицированы как один из 6 типов цитограмм.
1 5 4 |
Инфекция и рана |
1.Некротический тип. Характеризуется полной клеточной ареактивностью — препарат состоит из детрита и остатков разрушенных нейтрофилов. Обиль ная микрофлора находится внеклеточно.
2.Дегенеративно-воспалительный тип. Отражает незначительные признаки воспалительной реакции. В препарате содержится большое число микробов и нейтрофилов, последние в состоянии дегенерации и деструкции в виде кариопикноза, кариорексиса, цитолиза. Появляются признаки фагоцитарной ак тивности сохраненных нейтрофилов, о чем свидетельствует внутриклеточное расположение части микробов, хотя фагоцитоз по преимуществу незавершен ный или даже извращенный — сохранившиеся микробы находятся среди раз рушенных ими нейтрофилов.
3.Воспалительный тип. Отражает нормально протекающий воспалительный про цесс. Нейтрофилы средней степени сохранности составляют 85-90%, 8-12% клеточного состава приходится на долю макрофагов и полибластов. Микро флора чаще в умеренном количестве и располагается внутриклеточно в со стоянии завершенного фагоцитоза.
Указанные типы цитограмм характеризуют последовательное течение фазы воспаления.
4.Воспалительно-регенераторный тип цитограмм, или
5.Регенераторно-воспалительный — в зависимости от преобладания того или иного компонента. Число нейтрофилов уменьшается до 60-70%. 2530% клеток составляют тканевые недифференцированные полибласты, а также макрофаги, увеличение числа которых характеризует процесс очи щения раны. Микрофлора в небольшом количестве в состоянии активного фагоцитоза.
6.Регенераторный тип. Характеризует течение второй фазы раневого процесса. Значительно преобладают молодые клетки грануляционной ткани — про- и
фибробласты, макрофаги, эндотелий, полибласты. Содержание нейтрофилов снижается до 40-50%. Одновременно идет процесс краевой эпителизации.
Дополнительное диагностическое значение имеет нахождение в раневом экссу дате эозинофилов, что указывает на аллергическую направленность процесса. Уве личение числа лимфоцитов, появление плазматических клеток и клеточных груп пировок по типу иммунологических розеток характерно для развития аутоиммун ного компонента. В центре розетки находится макрофаг, окруженный находящими ся с ним в тесной связи лимфоцитами, плазмоцитами, иногда эозинофилами. При другом типе розеток эпителиальная клетка окружена «прилипшими» к ней нейтрофилами, что чаще наблюдается при отторжении трансплантата или струпа.
Появление в экссудате гигантских многоядерных клеток рассматривается как реакция на инородное тело в ране или ее раздражение сильнодействующими лекар ственными средствами (В.И. Стручков с соавт., 1975).
В фазе регенерации материал для цитологического исследования более удобно получать путем его соскоба с поверхности раны. Методика разработана М.Ф. Камае-
Глава X. Методы контроля раневого заживления |
1 55 |
вым (1954), который определил ее как метод «поверхностной биопсий». Забор ма териала осуществляется путем соскоба поверхностного слоя раны с помощью шпа теля или скальпеля. Полученный материал распределяется тонким слоем на пред метном стекле, высушивается, фиксируется и окрашивается по Гимзе или Грамму, как и раневые отпечатки. М.Ф. Камаев выделяет 5 типов цитограмм, соответствую щих различным стадиям течения раневого процесса:
I тип (ранняя стадия). Отсутствуют какие-либо специфические особенности. Преобладают форменные элементы крови — лейкоциты и эритроциты, а также нити фибрина, что является следствием нанесенной травмы и началом воспалительной реакции.
II тип (дегенеративно-некротическая стадия) наблюдается при трофических расстройствах и пониженной реактивности организма. В ране наблюдается маловыраженная лейкоцитарная реакция, преобладают некротические процессы. В' не больших количествах обнаруживаются полиморфно-ядерные лейкоциты, моноцитарные клетки с выраженными дегенеративными изменениями. В препаратах оби лие некротических масс на фоне грубо-волокнистого межуточного вещества.
III тип (дегенеративно-воспалительная реакция). Клеточные элементы пред ставлены большим количеством полиморфно-ядерных лейкоцитов с признаками де генерации, встречаются одноядерные клетки, напоминающие лимфоциты и моноци ты. Промежуточное вещество имеет аморфный или зернистый вид, встречаются эле менты некротических тканей.
IV тип> I фаза (регенеративная стадия). Наблюдается в период стихания воспа лительной реакции. Уменьшается количество полиморфно-ядерных лейкоцитов. Увеличивается число одноядерных клеток с тенденцией к дальнейшей дифференци ации. Встречаются гигантские многоядерные и тучные клетки. Промежуточное ве щество имеет мелкозернистый вид.
V тип, II и III фаза (регенеративная стадия). Характеризуется преобладанием репаративных процессов и исчезновением воспалительных явлений. Полиморфноядерные лейкоциты почти полностью исчезают. Отмечается почти полная их транс формация в фибробласты или профибробласты, которые располагаются среди не жно-волокнистых структур межуточного вещества.
Дальнейшим развитием метода «поверхностной биопсии» ран является предло жение использовать люминесцентную микроскопию, для выявления не только структурного, но и функционального состояния клеточных элементов и характера биохимических изменений в ране.
ИНСТРУМЕНТАЛЬНЫЕ ЖТОДЫ
Возможности инструментального контроля различных показателей течения ра невого процесса эффективно дополняют клинико-лабораторные методы оценки гнойных ран.
1 5 Б |
Инфекция и рана |
Капиллярометрия
Состояние микроциркуляции в области раны оценивается при помощи индекса капиллярной асимметрии (ИКА), предложенного Ю.Г. Шапошниковым с соавт. (1984). Метод основан на вычислении соотношений между количеством капилля ров в области раны и в симметричных участках тела по формуле
где В — количество капилляров в симметричных зонах тела; С — их количество в области раны.
Для подсчета капилляров используется капилляроскоп М-70А, позволяющий проводить наблюдение в отраженном свете. В норме ИКА = 1,0 ±0,1. В фазе воспа ления индекс снижается до 0,45 + 0,05; а в фазе ренерации повышается до 0,7 + 0,05; в случаях неосложненного заживления раны ИКА составляет 0,9 ± 0,05.
Лазерная допплеровская флоуметрия
Метод основан на эффекте Допплера. Монохромный лазерный луч по каналу фиб роскопа передается на поверхность кожи, где отражается от тканей и форменных эле ментов крови. Затем по другому каналу фиброскопа отраженный луч попадает на фотодиод и по изменению спектр возвращенного сигнала определяется характер кро вотока на глубине 1,6 мм при зондирующем луче с длиной волны 0,63 мкм. Получае мые в ходе исследования данные могут быть представлены как в графическом, так и в цифровом виде.
На место патологического процесса накладывается датчик лазерного допплеровского флоуометра. После 2-минутной регистрации данных лазерной допплеровской флоуметрии датчик аппарата фиксируется с симметричной стороны тела боль ного, и снимаются показатели субкутанного капиллярного кровотока на здоровой стороне. При изменении показателей среднеарифметического параметра микроцир куляции на 0,3, а коэффициента асимметрии на 0,03 определяли границу патологи ческого состояния биологической ткани.
Таким образом, можно фиксировать неопределяемые визуально границы пато логического состояния ткани. При разнице показателей среднеарифметического параметра микроциркуляции больше 1,6, а коэффициента асимметрии больше 0,2 можно говорить о наличии острого гнойного воспаления тканей. Если исследуемые показатели меньше указанных величин, то вероятно наличие воспалительного ин фильтрата.
Таким образом, реакция микроциркуляторного русла, изученная с помощью ла зерной допплеровской флоуметрии, позволяет диагностировать угрозу развития воспаления или уже развившийся гнойно-воспалительный процесс в местных тка нях, объективно измерять границу воспаления.
Глава X. Методы контроля раневого заживления |
1 5 "7 |
Определение жизнеспособности тканей раны
Определение жизнеспособности тканей имеет большое значение, так как при пер вичной хирургической обработке необходимо иметь четкое представление о гра ницах некроза. На практике обычно для этой цели используют клинические крите рии — внешний вид тканей, степень их кровоточивости, характер отделяемого и др.
Для объективизации этого показателя разработан метод прижизненного окра шивания тканей путем внутривенного введения красителя димифен-голубого. Пре парат окрашивает живые ткани в различные оттенки синего и зеленого цвета, при этом участки некроза остаются неокрашенными. Препарат вводится внутривенно в виде 10% раствора из расчета 20 мг на 1 кг массы тела.
Использование жидких кристаллов. Метод позволяет в течение 3-5 мин оп ределить жизнеспособность тканей. Сущность метода заключается в идентифика ции сохраняющих кровообращение участков тела. В качестве цветного термоинди катора используются холестерические жидкие кристаллы в составе различных сме сей, способных изменять цвет от красного — при температуре 34,1-34,3°С до фио летового, при температуре тканей от 35,9°С до 37,5°С. При температуре ниже 31,4°С и выше 37,5°С смесь остается бесцветной.
Участок тела, подлежащий исследованию, обрабатывается эфиром и покрывает ся черной полимерной пленкой толщиной 5-10 мкм. На пленку наносится термо графическая смесь в чистом виде или в виде 30%-ного раствора в хлороформе.
Термография '" .
Термография позволяет судить о совокупности метаболических сдвигов на раз личных этапах заживления раны.
Инфракрасная термография
Для исследования инфракрасного излучения ран применяется термовизуальная система — термограф, работающий по принципу телевизионной установки. В меди цинской практике используются различные тепловизоры — «Рубин», «Янтарь», БТВ-1 и др. Термографическая картина ран в ранние сроки заживления характери зуется повышением яркости свечения в зоне раны. По мере развития соединитель ной ткани в области раны тепловая зона становится более диффузной, а термогра фическая картина приближается к нормальной. При нагноении ран отмечается рез кое увеличение яркости свечения всей пораженной области, зоны некроза при этом определяются в виде темных участков.
Электротермометрия
Принцип электротермии основан на разнице температур нормальных и повреж денных тканей в соответствии со степенью нарушения кровообращения и интен сивности воспалительного процесса. Исследование проводится с помощью меди-
1 5 8 |
Инфекция и рана |
цинского электротермометра ТЭМП-60 или ЭТМ-Зб со стержневым точечным датчи ком, измеряющим температуру с точностью до 0,05°С. Температурный градиент меж ду зоной гнойной раны и симметричной ей областью достигает 2+3°С, а при зажив лении раны первичным натяжением — 0,3±0,8°С. Температура вялогранулирующих ран на 1,0-1,5° С выше температуры здоровых тканей симметричной области.
Тепловизионное исследование
Метод медицинской термографии (тепловидение) основан на исследовании рас пределения температуры на поверхности тела пациента. Тепловая картина поверх ности кожи отражает анатомическое строение исследуемой области, кровоснабже ние и кожи и подлежащих тканей, интенсивность метаболизма в них, а также тепло вую резистентность тканей (способность передавать тепло) и особенности тепло обмена кожи с окружающей средой. Исследование проводится с помощью специ альных оптикоэлектронных приборов (тепловизоров) на основе компьютерных комплексов «Рубин», «Радуга», «ТВ-03» и др.
Метод позволяет тонко улавливать даже начальные стадии воспалительного процесса. В зависимости от повышения или понижения местной температуры уси ливается или, напротив, ослабевает яркость свечения в области патологии. С помо щью тепловизионного исследования можно определить локализацию и распростра нение воспалительного процесса до развития выраженных клинических симптомов. В послеоперационном периоде метод можно использовать для наблюдения за за живлением раны и выявления возможных осложнений.
Тепловизор может использоваться для оценки скорости перестройки и регене рации тканей в зоне операции, прогнозирования течения процесса раневого зажив ления, объективизации контроля противовоспалительного лечения; определение локализации очага воспаления и активности патологического процесса, в том чис ле степени распространенности его по лимфатическим коллекторам.
Введение в термографическое исследование двух изотерм, применение цветной термографии и графической записи температуры в симметрично расположенных областях значительно расширяет диагностические возможности метода и повыша ет его информативность. Тепловизионный метод исследования не имеет возрастных ограничений, не инвазивен, бесконтактен, экономичен, абсолютно безвреден, не имеет побочных эффектов и противопоказаний, имеется возможность документи рования результатов.
Исследование электропотенциалов раны
Исследование электропотенциалов в области раны производят с помощью сис темы специальных электродов и милливольтметра по методике Б.М. Костючонка и В.А. Карлова (1981). Метод информативен при изучении заживления ран первич ным натяжением. При неосложненном течении раневого процесса отмечается дос товерное снижение раневого потенциала. Локальное повышение его свидетельству ет о прогрессировании воспалительного процесса и угрозе нагноения.
Глава X. Методы контроля раневого заживления |
1 5 3 |
Электроимпедансометрия
Исследование проводится с помощью высокочастотного серийного импедансометра «ТИГРАН-Д» в различные сроки процесса раневого заживления (А.П. Хачатрян и соавт., 1990). Измерения импеданса секрета выполняются в цилиндрической ячейке измерительного датчика, емкостью 0,25 мл, а импеданс раны определяется путем введения в ткань игольчатых электродов датчика после предварительного обезболивания места введения раствором хлорэтила.
При благоприятном течении процесса раневого заживления, отсутствии гной ных затеков отмечается достоверное повышение электрического сопротивления секрета через 30-40 мин, а раны — на 2 сут после операции по сравнению с исход ными значениями. При развитии гнойно-воспалительного процесса в ране наблю дается снижение импеданса раневого секрета и тканей в области раны.
Исследование напряжения газов
Исследование напряжения газов в области раны основано на факте, что в усло виях локальной гипоксии резко замедляются процессы заживления, так как сниже ние р02 в тканях до 1,3-2,7 кПа ведет к нарушению тканевого дыхания (Т. Hunt et al., 1971). Показано, что в течение первых 5 сут после травмы рС02 в инфицированной ране значительно выше, чем в асептичной. В репаративной ста дии раневого процесса эти показатели выравниваются, а р02 возрастает до 3,9 кПа. Создание адекватных технических условий, возможно, в ближайшие годы сделает этот метод доступным для широкого применения в клинике.
Ранотензиометрия
Механическая прочность раны является объективным критерием оценки про цесса заживления (J. Viljanto, 1964). Ценность этого метода определяется возмож ностью изучения не только самого раневого процесса, но и влияния на него различ ных факторов.
Л.С. Журавская и М.Б. Мишина (1957) предложили метод измерения прочности заживления ран с помощью вживления между швами прямоугольной петли из тон кой проволоки с последующим ее извлечением при помощи пружинных весов, на которых регистрируется сила натяжения в граммах.
К.М. Фенчин (1979) предложил измерять прочность консолидации краев раны с помощью ранотензиометра РТМ-2. Прибор закрепляется фиксатором к коже в 2,мм от края раны. Подкачиванием воздуха с помощью резиновой груши постепенно на ращивается сила, раздвигающая края раны, которая измеряется включенным в сис тему манометром. Момент микроразрыва отражает механическую прочность сраще ния краев раны. Необходимо отметить, что вследствие сложности технических ус ловий определения силы натяжения оно возможно, в основном, в эксперименте.