Рис. 96. Влияние инъекций триптофана и пуромпціша па синтез тріштофашшрролазы в печени белых крыс (по А. Немету)
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
1 |
— внутриирюшшшая12инъекция, |
0 , 1 2 |
м г |
пуромицшіа каждый4 |
час; |
2 |
— внутрибрюншн- |
нан инъекция, 150 |
м г ' |
L-триптофана |
в начале опыта; 3 — инъекция, І50мг L-трнпто- |
фапа вначале опыта и |
мг пуромпціша каждый час, начиная с |
час. |
после |
введения трип |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
тофана
Рис. 97. Влияние инъекций кортизона и пуромпціша на синтез глюкозо-6- фосфатазы в печени крыс (по Г, Веберу и сотр.)
1 — ежедневные инъекции кортизона; 2 — инъекция пуролшщша на четвертые сутки контрольной группе животных
и начиналось резкое понижение активности фермента. Контроль ные опыты показали, что в результате введения животным пуромидина совершенно не наблюдалось включения радиоактивного валина в белки печени, т. е. действительно полностью прекращался синтез ферментного белка.
Важно отметить, что, как и в случае рассмотренного нами выше индуцированного синтеза ß-галактозпдазы у кишечной палочки, синтез триптофанпирролазы в печени крыс может быть индуци рован фальшивым сигнальным метаболитом — D-триптофаном, ацетил-Б-триптофаном, индолом, DL-5-окситриптофаном.
Замечательным является тот факт, что индукция и репрессия синтеза ферментов в животном организме осуществляются не только под влиянием соответствующих субстратов и метаболитов, как, ііап])имер, в случае триптофана и триптофанпирролазы, но и под влиянием гормонов. Так, в частности, новообразование фер мента глюкозо-6 -фосфатазы, принимающей участие в синтезе глюкозы в печени, индуцируется гормонами тироксином и кор тизоном, но ингибируется инсулином. Индукция кортизоном синтеза глюкозо-6 -фосфатазы в печени крысы хорошо иллюстри руется рис. 97. Из рисунка очевидно, что произведенная на чет вертый. день одновременно с инъекцией кортизона инъекция пуромицииа, ингибирующего синтез белков, приводит к немедленному резкому падению активности фермента, что является следствием
Ф РАН С УА Ж АКОБ II Ж А К МОНО
прекращения биосинтеза ферментного белка. Нужно отметить, что кортизон индуцирует синтез в печени целого ряда ферментов, теснейшим образо.м связанных с синтезом глюкозы. В данном слу чае регулирующее действие на обмен веществ одного из гормонов, выделяемых корой надпочечииков, сводится к индукции синтеза ферментов, контролирующих новообразование глюкозы (глюконеогенез) в печени животного.
Спрашивается, каким же образом, благодаря каким молеку лярным механизмам осуществляется индукция или репрессия синтеза того или иного фермента? Где, в каких местах, на каких рецепторах клетки происходит связывание индуктора или веще ства, вызывающего репрессию? Установлено, что индукторы и вещества, вызывающие репрессию, в конечном счете действуют на ДНК, содержащуюся в клеточном ядре. Воздействуя на опреде ленный участок молекулы ДНК, в котором заключена наслед ственная информация о синтезе данного фермента, они оказывают влияние на последующий синтез матричной РНК, передающей в рибосомы информацию, необходимую для синтеза этого фермента. Именно через ДНК осуществляется действие индукторов и репрес соров, в результате чего регулируется биосинтез ферментов в ри босоме.
Общая теория индукции и репрессии биосинтеза ферментов дана б». Жакобом и Ж. Моно. Рассмотрим ее па примере синтеза изолсйципа у Escherichia coli, этапы которого показаны ниже:
СПз |
|
СНз |
|
ІТ |
I |
Пиридоксаль- |
ргт |
-т-Ппрув |
ГЛ I— OK |
I |
|
CH— N ib |
у і а т а з а |
Сj = 0 |
Тиампішп- |
I |
Треоиипдегид- |
|
рофосфлт |
|
|
- С 0 3 |
|
соон: |
|
СООН |
|
L -Трешшн |
|
а-Кетомасляі- |
|
|
|
|
нан кислота |
|
|
СНз
О !І
I
С Н з-С Н а —С—ОН I
СООН
а-Л цетооь'сішаслгіпал кислота
|
СНз |
|
|
СНз |
|
1 І ЛДФІ І |
I |
|
- 11,0 |
I |
|
1 |
:.С- -СИ-2 -С -О И |
диоксип ш’лот |
С1-ІЗ—сі-ь—СМс=оI |
— |
|
Н - СI - О Н |
|
|
Дегидратаза |
|
|
|
СООН |
|
|
I |
|
|
|
|
С001-І |
|
|
а. ß-Диоксіі-З-мРТмл- |
|
|
а-Кето-З-метилвале- |
|
пплррмановап кислота |
ИзС |
рилновли кислота |
|
|
|
\ |
СНз |
|
|
Пиридоксальфосфат |
СІ-І |
|
|
2 |
|
|
|
СИ |
|
|
Аминот рансфераза |
\ /I |
|
|
|
|
|
CH—Nib |
|
I
соон
L-ИзолеГщші
При добавке избытка изолейцина к питательной среде синтез его прекращается. В данном случае мы имеем прекрасный пример того, как конечный продукт длинной цепи биосинтетических реак ций по принципу обратной связи регулирует весь процесс био синтеза. Оказалось, что избыток изолейцина действует двояким
образом: |
а) угнетает (ингибирует) а к т и в н о с т ь фермента |
треошгадезаминазы (4.2.1.16) \ |
катализирующего |
первый этап |
биосинтетической цепи, и |
б) |
приостанавливает |
(репрессирует) |
с и и т е з |
в клетках всех |
ферментов, необходимых для биосин |
теза изолейцина (в том числе и треониндегидратазы). Нужно
подчеркнуть, |
что ингибирование активности первого фермента |
в |
этой цепи |
ферментативных реакций осуществляется не по |
принципу конкурентного |
торможения, поскольку |
L-изолейцин |
не |
является |
структурным |
гомологом L-треонина. |
Здесь также |
важно отметить, что эти две стороны действия L-изолейцина иа клетки микроба совершенно независимы друг от друга. Это было показано опытами с мутантами Escherichia coli. Был получен мутантный штамм, у которого не наблюдалось ингибирования
1 По новой номенклатуре ферментов — треониндегидратаза,
трсошпідсгидратазы L-изолсйципом, а у другого мутанта пол ностью отсутствовало репрессирование синтеза всех ферментов биосинтетической цепи под влиянием L-изолейцина.
Исходя из того, что синтез каждого фермента в этой биосин тетической цепи определяется соответствующим геном, т. е. опре деленным участком молекулы ДЫК, мы можем представить себе механизм обратной связи в виде схемы 43.
На этой схеме показано, что L-изолейцин ингибирует актив ность первого фермента биосинтетической цепи — треониндогидратазы (А) и репрессирует синтез всех ферментов, принимающих участие в синтезе L-изолейцина (Б). Согласно теории Жакоба и Mono, соединения, индуцирующие и репрессирующие синтез того или иного фермента, воздействуют не непосредственно на структурные гены, контролирующие образование соответствующих ферментов (схема 43). По соседству с группой структурных генов в полннуклеотидной цепочке ДНК расположен так называемый о п е р а т о р , который контролирует, т. е. включает и выклю чает тот или иной «находящийся в его ведении» структурный геи, от которого зависит синтез соответствующего фермента. Работа оператора, в свою очередь, зависит от вещества, которое названо р е п р е с с о р о м .
Репрессор имеет белковую природу и образуется под влиянием г е н а - р е г у л я т о р а. Выделено несколько репрессоров, в том числе, например, /ас-репрессор Escherichia coli с молекуляр ной массой около 150 000, контролирующий синтез ферментов, участвующих в обмене лактозы.
Схема 43. Механизм обратной сняли при биосинтезе Ь-изолсі'щшіа у Esche richia coli (по Ж. Шаи/кё)
Репрессор может взаимодействовать как с соединениями, ин дуцирующими синтез данного фермента, так и с соединениями, репрессирующими его образование. Если мы имеем дело с репрес сируемой системой, как в случае биосинтеза L-изолейцшга, то последний, связываясь с репрессором, активирует его. Активи рованный репрессор, в свою очередь, как бы блокирует оператор, и этот последний прекращает действие «находящегося в его ве дении» структурного гена, в результате чего не может идти синтез соответствующий матричной РНК, а следовательно, и синтез соответствующего фермента. Если мы имеем дело с индуцируемой системой, как в случае биосинтеза ß-галактозидазы, то соедине ние, индуцирующее ее синтез, инактивирует репрессор, блокиру ющий соответствующий оператор, и этот последний, освободившись от влияния репрессора, пускает, «включает» «подчиненный ему» структурный ген, от которого зависят синтез соответствующей матричной РНК и синтез данного индуцируемого фермента.
Эта теория генетического контроля синтеза ферментов пред ставлена на схеме 44. Как видно на схеме, геи-регулятор «управ ляет» синтезом репрессора, который связывается с соответствую щим метаболитом, играющим роль регулирующего сигнала. В результате этого связывания репрессор активируется или ин активируется (в зависимости от того, является ли данная система ферментативных реакций индуцируемой или репрессируемой). Будучи активирован, репрессор блокирует геи-оператор, что приводит к «выключению» соответствующего структурного гена, от которого зависит синтез данного фермента.
Таким образом, теория Жакоба и Моно рассматривает репрес сию и индукцию синтеза ферментов как две неразрывные стороны
одного и того же процесса. В репрессируемой системе связыва ние регулирующего сигнального метаболита с репрессором а к т и- в и р у е т этот последний, и он блокирует синтез фермента. В индуцируемой системе, напротив, сигнальный метаболит, свя зываясь с репрессором, и и а к т и в и р у е т его. В результате происходит дерепрессия определенного участка ДЫК, с него как бы снимается тормоз и вслед за этим начинается синтез соответст вующей матричной РНК, начинает работать весь описанный нами механизм синтеза данного индуцируемого фермента. Можно ска зать, что различные репрессоры являются в клетке специализи рованными рецепторами, каждый из которых «настроен» на сигнал определенного метаболита, индуцирующего или репрессирующего синтез того или иного фермента. Иными словами, в полипуклеотидных цепочках ДНК заключены «инструкции» для синтеза самых разнообразных ферментов, причем образование каждого из них может быть вызвано воздействием сигнального метаболита (индуктора) на соответствующий репрессор.
Э в о л ю ц и я ф е р м е н т о в . В процессе эволюционного развития живого мира происходило не только изменение генетиче ских факторов, определяющих набор различных ферментов, свой ственных данному организму, но и обусловленное генетическими факторами изменение свойств одного и того же фермента, катали зирующего определенную ферментативную реакцию у разных организмов. Как известно, различные белки, обладающие одной и той же биологической функцией, например инсулин, у разных организмов несколько различаются между собой. Как показали работы Ф. Сенгера, инсулнны, образуемые различными живот ными, хотя и обладают одной и той же гормональной функцией, связанной с регулированием углеводного обмена, однако разли чаются по аминокислотному составу н структуре. На участке между дисульфидной связью, как бы сжимающей короткую полипептидную цепочку инсулина (см. схему 1 ), у разных животных содержатся разные аминокислотные остатки и в разной последо вательности, что можно проиллюстрировать следующим образом:
Животное |
Последовательность |
|
аминокислот |
|
|
|
Бык |
Цис — Ала — Сер |
— Вал |
Свинья |
Цис — Тре — Сер |
— Изол |
Баран |
Цис — Ала — Гли |
— Вал |
Лошадь |
Цис — Тре — Глп |
— И зол |
Кашалот |
Цис -- Тре — Сор |
— Изол |
Сельдяной иолосатпк |
Цис — Ала — Сер |
- Тре |
(китообразное) |
|
|
Было установлено также, что белковая часть разных гемоглобипов несколько различается по своему аминокислотному составу. Так, гемоглобин нормальных людей отличается от гемогло бина людей, пораженных заболеванием, называемым серповид ноклеточной анемией, всего лишь да одну аминокислоту. Выяс нилось далее, что у разных организмов некоторые ферменты одного и того же наименования различаются по своему аминокис лотному составу и по структуре. Это хорошо изучено па примере ос-амилаз различного происхождения. Представление об этом дает табл. 9.
Видно, что различные а-амилазы сильно различаются по со держанию в них целого ряда аминокислот, например, лизина, се рина, лейцина, цистеина, аргинина, фенилаланина и некоторых других. Эти различия в аминокислотном составе приводят к тому,
Т а б л и ц а 9
Аминокислотный состав сс-ашілаз различного происхождения (содержание аминокислот выражено в количестве остатков аминокислоты на 11)0 тыс. г белка)
|
|
Источник |
а амилазы |
|
Аминокислота |
Aspergillus |
Jlacillus |
|
поджелудоч |
слюна |
|
oryzac |
sublilis |
|
ная железа |
человека |
|
|
|
|
свиньи |
|
Лизин |
33 |
51 |
|
34 |
13 |
Аргпшш |
17 |
35 |
|
33 |
50 |
Гистидин |
12 |
25 |
|
25 |
21 |
Аспарагиновая кислота -\~ |
171 |
197 |
|
180 |
210 |
-р глютаминовая кислота |
|
|
|
|
|
(в том числе аспарагин и |
99 |
103 |
|
94 |
16 |
глютамин) |
|
|
|
|
|
Алании |
66 |
60 |
|
77 |
50 |
Цистеин |
17 |
— |
|
19 |
?6 |
Глицин |
75 |
80 |
|
89 |
91 |
Изолеііцшг |
48 |
35 |
|
— |
14 |
Лейцин |
5S |
17 |
|
88 |
41 |
Метионин |
11 |
10 |
|
11 |
16 |
Фенил алашш |
25 |
37 |
|
61 |
11 |
Пролпи |
37 |
29 |
|
31 |
37 |
Сории |
58 |
19 |
|
ЗУ |
71 |
Треошш |
71 |
17 |
■ |
33 |
СО CQ |
Тирозин |
60 |
19 |
|
29 |
£0 |
Валин |
52 |
51 |
|
67 |
5У |
|
836 |
833 |
|
852 |
916 |
что а-амплазы из разных источников довольно значительно от личаются по некоторым свойствам, например, по поведению при электрофорезе, по тер.мостабплыіостн. Так, а-амплаза из Asper gillus oryzae несколько более термолабилыіа, чем а-амилаза из проросшего зерна ячменя.
Мы уже указывали ранее (с.м. стр. 137), что яркие примеры различий в физико-химических свойствах, а следовательно, и в молекулярной структуре одного и того же фермента у разных организмов были обнаружены при изучении ферментов термофиль ных бактерий.
Так, весьма термостабилытая глнцерал ьдегидфосфатдсгидрогеназа термофильной бактерии Bacillus stearothermophilus отли чается от того же фермента из других источников первичной структурой своей полипептидной цепи. Если обычно в глицеральдегидфосфатдегидрогеназе в положении 17 находится лейцин (а в ферменте из мышц омара — валпп), то в ферменте Bacillus stearothermophilus это место занимает фенилаланин. Кроме того, фермент Bacilus stearothermophilus отличается от ферментов из других источников также тем, что в положении 2 и 3 в нем рядом располагаются два остатка гистидина.
При исследовании первичной структуры рибонуклеазы круп ного рогатого скота и овцы были установлены специфические от личия фермента у этих животных. Остаток лизина, который в рибонуклеазе крупного рогатого скота находится в положении 37 (см. схему 2 ), заменен у овцы глютаминовой кислотой, а остаток треонина в положении 3 заменен в рибонуклеазе овцы серином. Детально изучены особенности альдолазы — чрезвычайно широ ко распространенного фермента, играющего важнейшую роль в углеводном обмене (см. стр. 239). Оказалось, что все исследован ные высокоочищенные и кристаллические препараты альдолазы самых разнообразных организмов могут быть разделены на два класса, весьма существенно различающихся по физико-химиче ским и каталитическим свойствам. Типичным представителем первого класса является мышечная альдолаза кролика, а вто рого — альдолаза дрожжей и бактерий. Различия в свойствах альдолаз этих двух типов показаны в табл. 1 0 .
Весьма детально исследована также первичная структура бел кового компонента цитохрома с у различных организмов. Было показано, что, наряду с определенным единством структуры этого важнейшего кофактора, имеются существенные различия в амино кислотном составе и последовательности аминокислот в полипеп тидной цепочке.
Таким образом, при одной и той же каталитической функции ферменты различных организмов различаются по аминокислот ному составу, по последовательности аминокислот и физико химическим свойствам.
Более того, в последние годы было показано, что некоторые ферменты в одном и том же организме, а иногда и в одной и той же
Т а б л и ц а 10
Каталитические и молекулярные свойства двух классов альдолаз
(по В. |
Руттеру) |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
Класс I |
Класс II |
■ |
Показатель |
|
мышца |
дрожжи |
бактерия |
|
|
|
|
кролпка |
(Saccharomy |
(Clostridium |
|
|
|
|
|
ces cerevisiae) |
perfringens) |
Ингпбпрованне |
реактивами, образу- |
0 |
100% |
100% |
юшпмп внутренипе комплексы |
(хе- |
|
|
|
латы) |
|
|
|
Нет |
Zn^ |
Co2+ или |
Связанный металл |
|
Fe2T |
Актпвацтш К+ (во сколько раз) |
0 |
35 |
4,7 |
Кт (для фруктозодпфосфата), М |
1,5 -ІО-5 |
3,7 -IO--1 |
3-Ю-' |
Ѵтах (число молей фруктозодифос- |
3100 |
6900 |
5000 |
фата, |
расщепленного за 1 |
мин. ■ |
|
|
|
1 молем фермента) |
|
146000 |
70000 |
|
Молекулярная |
масса |
|
|
его ткани представлены различными молекулярными формами. Такие разнообразные молекулярные формы фермента у данного организма, катализирующие одну и ту же реакцию, но различаю щиеся по некоторым физическим, химическим и иммунохи-
мическим свойствам, называют и з о |
э н з и м а м и (и з о ф е р- |
м е н т а м и). Эти формы фермента |
могут быть отделены друг от |
друга при помощи различных вариантов электрофореза, ионного обмена, адсорбции, гельфильтрации, фракционирования солями и т. д.
Необходимо подчеркнутъ, что окончательное заключение о мо лекулярной гетерогенности фермента можно сделать только на основании изучения ряда свойств полученных фракций.
Впервые изоферменты были обнаружены при исследовании электрофоретических свойств лактатдегидрогеназы различных тканей животных. Этот фермент делится, как правило, на пять компонентов, один из которых движется к аноду, другой — к катоду, а три остальных занимают промежуточное положение (схема 45).
Форма лактатдегидрогеназы, которая двигалась к аноду, пре обладала в сердечной мышце. В скелетной мускулатуре в основном содержался компонент, который мигрировал к катоду. Все пять компонентов лактатдегидрогеназы состояли из четырех субъединиц и имели довольно близкие значения молекулярных масс. Амери канский биохимик Н. Каплан высказал предположение, что клетки ряда организмов могут вырабатывать субъединицы лактат дегидрогеназы двух типов. Они были обозначены буквами Н (сердечный тип, от английского слова «heart») и (мышечный
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
+ |
|
«muscle»). Как |
показало па |
схеме 45, |
|
|
только две резко отличные по электро |
|
нннн |
|
форетическим свойствам |
формы лактат- |
|
|
|
дегидрогеназы |
состоят |
из |
одинаковых |
|
|
|
субъединиц Н- и М-типа, |
а |
промежу |
|
нннм |
|
точные формы представляют собой |
раз |
|
|
личные |
возможные комбинации |
этих |
|
|
|
субъединиц. |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
Каждая из форм лактатдегндрогена- |
|
ннмм |
|
зы была выделена в кристаллическом |
|
Место |
виде. Оказалось, что они отличаются |
|
|
нанесения |
по ряду кинетических, иммунохимичес- |
|
|
бета |
ких, |
физико-химических |
свойств, а |
|
|
|
также |
по |
аминокислотному |
составу. |
|
Н М М М |
|
В табл. |
|
11 |
приведены |
некоторые |
из |
|
|
|
этих |
данных. |
|
|
|
состоящая |
из |
|
|
|
Лактатдегидрогеназа, |
|
|
|
четырех |
субъединиц Н-тнпа, |
имеет вы |
|
М М М М |
|
сокое сродство |
к |
ппровиноградной |
ки |
|
|
|
слоте, |
избыток |
которой |
значительно |
|
|
|
подавляет |
ее |
|
активность. |
М.,-лактат- |
|
|
|
дегидрогеназа |
активнее |
при |
более |
|
вы |
Схема 45. Разделенно нзо- |
соких концентрациях пировиноградпои |
кислоты. Щавелевая кислота в концен |
эпзимов лактатдсгидрогепа- |
трации 3•1 0 _ 1 |
|
М очень |
сильно |
подав |
зы |
при электрофорезе па |
ляет активность [1 .,-формы. |
а |
М.гфор- |
крахмале {по Н. Каплану) |
Я и М — суПъедимпцы фермен |
мы —только па одну треть. Пзоэнзимы |
та |
двух различных |
типов |
лактатдегндрогепазьт очень сильно |
раз |
|
|
|
личаются |
по |
содержанию |
гистидина и |
|
|
|
треонина. |
Все это лишний раз |
подчер |
кивает, что изоферменты лактатдегидрогеназы состоят из субъ единиц с разной первичной структурой, которая в конечном
счете и определяет различия их кинетических, |
иммупохимических |
и других |
свойств. |
|
|
|
|
|
Т а б л и ц а 11 |
|
|
|
|
|
Некоторые свойства кристаллических препаратов нзоэнзнмов |
|
лактатдегидрогеназы (но |
Н. |
Каплану) |
|
|
|
|
|
|
|
|
Содержание, моли |
Изоэнзим |
Значения К |
|
Молекулярная |
Ингибирова |
|
для пирувата, |
М |
масса |
ние 3-10-4 |
А7 |
|
|
|
|
|
оксалатом, |
% |
треонина |
|
|
|
|
|
гистидина |
Н .І |
8,9-10-5 |
|
151000 |
84 |
30 |
75 |
І-ЬМз |
5,2 .10 -‘ |
|
154000 |
01 |
45 |
64 |
м , |
3 ,2 -ІО-3 |
|
140000 |
33 |
63 |
51 |