Добавил:
Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:

книги из ГПНТБ / Кретович В.Л. Введение в энзимологию

.pdf
Скачиваний:
40
Добавлен:
25.10.2023
Размер:
16.58 Mб
Скачать

Этот процесс идет в соответствии с уравнением

Сукцпнпл-КоА -j- СО» + ферредоксші я-кетиглютарат

КоА ферредоксин.

восст.

окпсл.

Таким образом, ферредоксші участвует в реакциях, приводя­ щих к образованию пировиноградной и а-кетоглютаровой кис­ лот,— соединений, играющих важнейшую роль в процессе фикса­ ции молекулярного азота. Новейшие исследования полностью подтвердили правильность идеи С. Н. Виноградского, согласно которой первичным продуктом, образующимся при фиксации молекулярного азота почвенными микроорганизмами, является аммиак.

В процессе образования аммиака из молекулярного азота как раз ферредоксину принадлежит важнейшая роль. Ферментативное превращение молекулярного азота в аммиак требует участия АТФ (как источника энергии) и восстановленного ферредоксина. Пировиноградная кислота (и, вероятно, другие кетокислоты) иг­ рает в данном случае двойную роль. С одной стороны, она является тем материалом, который используется для образования АТФ, а с другой — источником электронов, необходимых для восстанов­ ления ферредоксина. Ферредоксин может быть также восстанов­ лен молекулярным водородом при участии фермента гидрогеназы. Вероятная роль ферредоксина в процессе фиксации молекуляр­ ного азота Clostridium, pasteurianum может быть показана в виде схемы 17.

Схема 17. Участие ферредоксина в процессе фиксации азота у Clostridium pasteurianum (по А. Д ’Эустахио и Р. Гарди)

Рассматривая роль ферредоксина в процессе фиксации молеку" лярного азота, нужно, однако, заметить, что он содержится и у бактерий, неспособных фиксировать азот — у некоторых дру­ гих представителей рода Clostridium и у некоторых микронокков.

Роль ферредоксина в процессе фотосинтеза заключается в том, что ферредоксин подвергается фотовосстановлению, происходя­

109

щему прп участии хлорофилла. Восстановленный ферредоксин под действием особого фермента, представляющего собой флавопротеид, снова окисляется и становится готовым к новому акту фотовосстановленпя. Восстановленпая же форма флавопротеида, вступая во взаимодействие с НАД+ или НАДФ+, восстанавливает пх до НАД-Н пли НАДФ-Н. Таким образом, взаимоотношения ферредоксина, флавопротеида и пиридиновых коферментов в про­ цессе фотосинтеза могут быть показаны на схеме 18.

Ферредоксин ч

, Флавопрогсид

ж НАДФ-Н (НАД-Н)

4 восст. \

/

окнсл.

Ч Г

Свет —>- Хлоропласт —>- е"

 

Флавоііротсн д /АV

' Ферредоксин

V

окнсл.

 

восст.

Х НАДФ (НАДf)

Схема 18. Взаимоотношения ферредоксниа. флавопротеида и пиридиновых коферментов в процессе фотосинтеза (по Д. Арнону)

В состав ряда ферментов входит медь. Она, например, содер­ жится в составе окислительного фермента о-дпфенолоксндазы, катализирующего окисление полпфенолов (см. стр. 205). Второй важный медьсодержащий фермент — аскорбинатоксидаза (окси­ даза аскорбиновой кпслоты), окисляющая витамин С (см. стр. 210). К числу истинных металлоэнзимов относится также содержащая медь диаминоксидаза проростков гороха, окисляющая диамины кислородом воздуха с образованием соответствующих аминоальдегидов, аммиака и перекиси водорода.

Хорошо изученным представителем цинкпротеидов является карбоангидраза. Этот фермент расщепляет угольную кислоту на С02 и воду:

Н2 СО3 СО2 4" Н 2 О.

Карбоангидраза широко распространена в животном и рас­ тительном мире. Цинк содержат и рассмотренная нами ранее глютаматдегидрогѳназа, и недиссоциирующий металлоэнзим алкогольдегидрогѳназа. Содержащим цинк металлоэнзимом является также упоминавшаяся нами ранее карбоксипептидаза А, специ­ фически расщепляющая пептидную связь, соседнюю с концевой карбоксильной группой полипептидной цепочки. Карбоксипепти­ даза А представляет собой фермент, обладающий двумя катали­ тическими активностями. Она катализирует гидролиз пептидных связей, т. е. обладает пептидазным действием, и вместе с тем, как и некоторые другие протеолитические ферменты, является эсте­ разой, Ч> е. катализирует гидролиз сложноэфирных связей. Если в карббксипептидазе заменить цинк кобальтом или кадмием, то происходит глубокое изменение специфичности действия фермента.

При замене цинка Со2+ резко повышается пептидазная активность,

но

заметно снижается эстеразная; если же

цинк заменен Сс12+,

то

очень сильно увеличивается эстеразная

активность, но пол­

ностью исчезает пептидазная. Таким образом, карбоксипепти­ даза А может служить примером того, что металл, содержащийся в ферменте, оказывает большое влияние не только на его актив­ ность, но и на специфичность его действия.

Для многих ферментов необходимым кофактором является магний. В качестве таких Mg2+-3aBiicHMbix ферментов можно на­

звать ф о с

ф о п и р у в а т - г и д р а т а з у (ранее называлась

еиолаза) и

р и б у л о з о д и ф о с ф а т к а р б о к с и л а з у .

Фосфопируват-гидратаза, участвующая в процессах дьтх'аиия,

брожения и гликолиза,

катализирует

реакцию превращения

D-2-фосфоглицерата в фосфоенолпируват и воду:

СН2ОН

 

 

 

I

1

АЛ

Н20

сн—о—(р)

С—0 - 0

соон

соон

 

 

Рибулозодифосфаткарбоксилаза играет важнейшую роль в процессе фотосинтеза, катализируя реакцию присоединения угле­ кислоты к D-рибулозо-1,5-дифосфату:

СШ -О-РО-Д

СО

 

СОСГ

 

I

Mg:+

I

+ Н+

Н—С-ОН

І-ІСО" (или С02)-------'2 Н—С—ОН

С—

РОд-

C H -2 -0 -P 0 2-

 

Н— ОН

 

3

 

I

 

 

СПз—О

 

 

 

Магний является также необходимым кофактором для целого ряда ферментных систем, катализирующих при участии АТФ ре­ акции переноса остатков фосфорной кислоты.

Прочность связи металла с ферментом зависит от природы металла и от того, с какими функциональными группами он свя­ зан. Металлы, входящие в состав ферментов, образуют комплекс­ ные соединения с различными функциональными группами анофермента и коэнзима, содержащими атомы с неподеленньши парами электронов — S, N и О. Так, например, атом железа, вхо­ дящий в состав гема, который представляет собой простетическую группу ферментов пероксидазы и каталазы, а также цито-

хромов, соединен ковалентными и

координационными

связями

с атомами азота, входящими в состав

гема (см. стр. 99),

и коорди­

национными связями с имидазольнои группой гистидина и е-ами- ногруппой лизина, входящими в состав апофермента.

Атом цинка, содержащийся в составе молекулы карбоксипеп­ тидазы А, соединен координационными связями со свободной

111

аминной группой N-концевого остатка аспарагина и с сульфгидрильными группами апофермента. В молекуле глицеральдегидфосфатдегндрогеназы цинк, по-видимому, связывается с кисло­ родом фосфорной кислоты коэнзима и субстрата, а также с серой сульфгидрилы-юй группы и азотом гистидина в апоферменте. В медьпротеидах, подобных о-дифенолоксидазе и аскорбинатоксидазе, атом меди, видимо, соединен координационными связями с атомами серы и азота в апоферменте. С серой связано также железо, содержащееся в ферредоксинах. Немаловажную роль в связывании металлов играют, по-видимому, также карбоксиль­ ные группы ферментов.

Каков механизм участия металла в действии фермента? Во-первых, металл может способствовать образованию проме­

жуточного соединения между ферментом и субстратом. Именно такой случай наблюдается при действии помещенной нами в табл. 1 лейцинаминопептпдазы и карбоксипептидазы А — присоедине­ ние фермента к субстрату осуществляется благодаря образова­ нию координационных связей через атом марганца (или магния) и атом цинка (схема 19).

Схема 19. Роль металла в присоединении субстрата к ферменту

Во-вторых, металл может сам участвовать в реакции, например в переносе электронов, т. е. в окислительно-восстановительных реакциях. Это происходит при действии нитратредуктазы. Входя­ щий в состав данного фермента молибден сам взаимодействует с нитратом и затем с флавиновым ферментом, который, в свою оче­ редь, реагирует с содержащей НАД+ или НАДФ+ дегидрогеназой. Это ясно из схемы 20.

В-третьих, металл может обеспечивать сохранение вторичной, третичной и четвертичной структуры ферментного белка. В этом отношении прекрасным примером является а-амилаза. Все виды

а-амилазы— панкреатическая, солодовая,

плесневая,

бактери­

альная и слюнная — содержат кальций,

который

необходим

112

Схема 20. Участие молибдена в действии нптратредуктазы

именно для поддержания вторичной и третичной структуры фер­ мента.

Лишенная кальция а-амилаза имеет такую же активность, как и нативный, содержащий кальций фермент. Это ясно видно из рис. 29. Этот же рисунок показывает, что фермент, лишенный кальция, крайне неустойчив, чрезвычайно легко денатурируется и теряет активность в результате двухчасовой инкубации при pH, отклоняющемся от оптимального.

Таким образом, при оптимальном pH вторичная и третичная структура фермента поддерживается благодаря водородным и другим дополнительным связям; при более кислой и более щелоч­ ной реакции среды на первый план в качестве фактора, стабили­ зирующего структуру фермента, выступает кальций.

Стабилизация структуры фермента под влиянием кальция про­ является также в том, что фермент, лишенный кальция, очень легко расщепляется протеолитическими фер,ментами. Это видно на рис. 30, показывающем активность а-амилазы, обработанной трип­ сином и этилендиаминтетраацетатом (ЭДТА), который связывает

Время инкубации, часы

Рис. 29. Стабильность а-амнлазы Bacillus subiilis при инкубации в течение

двух часов при 25° и разных pH (по Э. Фишеру и сотр.)

1 — без Са2+; 2 — с Са2+

Рис. 30. Влияние ЭДТА и трипсина на а-амилазу Bacillus subiilis

(по Э. Фишеру)

1 — инкубация с трипсином; 2 — инкубация с ЭДТА; 3 — инкубация с ЭДТА и трипси­ ном (pH 7,5; 25°)

113

кальций, образуя с ним прочное внутрикомплексное соединение (хелат). Из рисунка также видно, что трипсин практически не расщепляет и-амнлазу;, однако если а-амилаза предварительно обработана ЭДТА, то она быстро расщепляется трипсином. Таким образом, кальций в данном случае играет роль фактора, предо­ храняющего а-амнлазу от расщепления протеолитическими фер­ ментами.

Что касается роли металла в поддержании четвертичной структуры ферментного белка, то в этом отношении хорошим при­ мером является дрожжевая алкогольдегндрогеназа. Этот фермент имеет молекулярную массу 151 тыс., содержит четыре атома цинка в молекуле и четыре молекулы НАД1'. Удаление цинка из мо­ лекулы алкогольдегидрогеназы вызывает не только её инакти­ вацию, но и диссоциацию ферментного белка на четыре неактив­ ные субъединицы с молекулярной массой 36 тыс. каждая.

Наконец, четвертый возможный способ действия металла — когда металл способствует соединению апофермента с коферментом. Подобное действие металла наблюдается в случае алкогольдегидрогеназы (см. схему 29) и глицеральдегидфосфатдегидрогеназы.

Заканчивая раздел, посвященный роли металлов в фермента­ тивном катализе, нужно подчеркнуть, что за последние годы все чаще выявляется, что тот или иной металл в незначительных коли­ чествах играет важную роль в ферментативных реакциях. Роль так называемых микроэлементов в обмене веществ растений и животных как раз и заключается в том, что они необходимы для построения и нормального функционирования целого ряда фер­ ментов .

Все это еще раз свидетельствует о том, что различные стороны обмена веществ неразрывно связаны между собой — недостаток или нарушение обмена какого-либо металла в растительном или животном организме сразу же сказывается на действии того или иного фермента, вызывая соответствующее заболевание.

Л и т е р а т у р а

Коферменты. Под ред. нроф. В. А. Яковлева. М., «Медицина», 1973. Любимов В. И. Ферредоксины н их биохимическая роль.— В сб. «Успехи

биологической химии» т. 7. Под ред. Б. И. Степаненко. М., «Наука», |1965, стр. 176.

Лейве Я . В. Роль металлов микроэлементов в биохимических процессах,

катализируемых ферментами.— Известия АН СССР, серия биол., 1967,

1, 11.1

Пейве Я . В. Микроэлементы и биологическая фиксация азота. XXXI Тими­

рязевское чтение. М., «Наука», 1971.

Химия и биология пиридоксалевого катализа. Труды II Международного симпозиума. М., «Наука», 1968.

Anion D. I. Ferredoxin and photosynthesis.— Science, 1965, 149, 1460. Buchanan В. B., Arnon D. Ferredoxins: Chemistry and function in photosyn­

thesis, nitrogen fixation and fermentative metabolism.— Advances Enzymol., 1970, 33, 119.

'114

Dickerson R. E. The structure and history of an ancient protein (cytochrome c).—

Scient. Amer., 1972, 226, N 4, 58.

Elljolk N. Crystalline leghemoglobin. II. The molecular weights and shapes of the two main components.— Acta chem. scand., 1960, 14, 1819.

Elljolk N. Crystalline leghemoglobin. III. Amino acid composition of the two main components.— Acta chem. scand., 1961, 15, 545.

Hogenkamp II. P. C. Structure and chemical reactions of the cobamide coenzy­ mes.— Ann. N. Y. Acad. Sei., 1964, 112, 552.

Hutchinson D. W. Nucleotides and coenzymes. London, Methuen and C°, 1964. Leloir L. F. Zwei Jahrzehnte Forschung über die Biosynthese von Sacchariden

(Nobel-Vortrag). Angew. Chemie, 1971, 83, 813.

Lynen F. The biotin enzymes.— Bull. Soc. chim. biol., 1964, 40, 1775. Malkin R., Malmström G. The state and function of copper in biological sys­

tems.— Advances Enzymol., 1970, 33, 177.

Morton R. A. Quinones as biological catalysts.— Endeavour, 1965, 24, 81. Moss J., Lane M. D. The biotin-dependent enzymes.— Advances Enzymol.,

1971, 35, 321.

Quiocho F. A., Lipscomb W ■N. Carboxypeptidase A: A protein and an enzyme.—

Advances Protein Chem., 1971, 25, 1.

Wagner A . F., Folkers K. Vitamins and coenzymes. N. Y., Intersci. Publ.,

1964.

Г л а в а 5

КИНЕТИКА ФЕРМЕНТАТИВНЫХ РЕАКЦИИ

Как известно, химическая кинетика является учением о ско­ ростях химических реакций. Скорость химической реакции опре­ деляется количеством веществ, прореагировавших за единицу времени. Ферментативная кинетика занимается изучением зако­ номерностей влияния химической природы реагирующих веществ и условий их взаимодействия иа скорость ферментативных реак­ ций. Количественные соотношения, характеризующие влияние раз­ личных факторов на кинетику ферментативной реакции, позво­ ляют высказать гипотезы относительно механизма действия дан­ ного фермента и исключить из рассмотрения гипотезы, не соот­ ветствующие установленным закономерностям.

Скорость химических реакций, в том числе и ферментативных реакций, зависит прежде всего от химической природы реагирую­ щих веществ.

Так, например, расщепление каким-нибудь протеолити­ ческим ферментом разных белков происходит с разной ско­ ростью, поскольку скорость этой реакции зависит от химической природы расщепляемых белков.

Далее, скорость ферментативной реакции зависит от концен­ трации самого фермента и от концентрации реагирующих ве­ ществ .

Важным фактором, определяющим скорость ферментативной реакции, является температура. Скорость ферментативной реакции увеличивается с повышением температуры. Однако это повыше­ ние происходит лишь до определенного предела, когда начинает­ ся разрушение белка, его денатурация.

Поскольку многие ферменты содержат коферменты, т. е. ор­ ганические соединения небелковой природы, необходимые для действия фермента, очевидно, что скорость ферментативной реак­ ции зависит и от концентрации коферментов. Как мы уже указы­ вали ранее, наряду с коферментами для действия многих фермен­ тов необходимы некоторые металлы. Поэтому скорость фермен­ тативных реакций зависит от концентрации этих кофакторов. Скорость ферментативной реакции в значительной степени за­ висит также от pH.

Наконец, скорость ферментативной реакции зависит от при­ сутствия в данной клетке или растворе различных активаторов или ингибиторов ферментов.

11(3

Ферментативные реакции подчиняются закону, согласно которому реакция идет тем быстрее, чем больше концентрация

реагирующих веществ.

реакцию

Предположим, мы имеем

 

И+1

А + В ^ С -Ь D.

В данном уравнении ѵ.ѵ1 и

— скорости прямой и обратной ре­

акции,

т. е. г;+1 — это скорость реакции, идущей слева направо,

а

— скорость реакции, идущей справа налево. Мы можем на­

писать

следующие уравнения:

 

 

»»+!=*+! [А]-[В].

 

 

[С]- [О].

Таким образом, ѵ+1, т. е. скорость прямой реакции, равна /с+1, умноженному на концентрацию вещества А и концентрацию ве­

щества В, а скорость обратной реакции

равна А_1, умноженному

на концентрацию вещества С и концентрацию вещества D.

Иначе говоря,

скорость ѵ+1 пропорциональна концентрациям

веществ

А и В, а

скорость ѵ-х пропорциональна концентрациям

веществ С и D; к+1 и /с_х представляют собой константы скоростей

данных

реакций.

Эти константы характеризуют химическую

природу реагирующих веществ, их способность вступать в данную реакцию. Константа скорости реакции равна скорости реакции при концентрациях реагирующих веществ, равных единице.

Если имеет место химическое равновесие, то при этом скорости

прямой

и

обратной реакций равны, и гг+1 будет равняться

г>_і (п+1

=

г>_х).

Иначе можно написать:

*+і[А]-[В] = * _ ! [С]-[Г>].

Это выражение можно преобразовать так:

 

*+і

[СҢР]

 

 

А-! ~

[А]-[В]

Выражение -^ |

равно Keq, т. е.

константе равновесия дан­

ной реакции (от латинского equilibrium, что значит равновесие). Таким образом, константа равновесия реакции равна произ­ ведению концентраций образующихся веществ, деленному на произведение концентраций исходных веществ, в состоянии рав­

новесия.

Иначе говоря,

117

Следовательно, в идеале отношение констант скоростей пря­ мой и обратной реакций равно константе равновесия. Константа равновесия данной реакции велика, если велико значение к.п , т. е. если прямая реакция идет значительно быстрее, чем обратная.

Среди химических процессов, катализируемых ферментами, основное значение имеют три типа реакций: реакции нулевого по­ рядка, реакции первого порядка и реакции второго порядка.

Рис. 31. Графическое изображение реакции нулевого порядка

Рис. 32. Графическое изображение реакции первого порядка

При реакции нулевого порядка скорость реакции постоянна. Если мы обозначим через X концентрацию продукта, образующе­ гося в результате реакции, а через t — время, то можем написать следующее уравнение:

Этим уравнением выражается константа скорости реакции ну­ левого порядка. Количество образующегося продукта обычно вы­ ражают в микромолях за минуту. Следовательно, если к0 (кон­ станта скорости реакции нулевого порядка) равна 2, то это значит, что за одну минуту образуются 2 мкмоля данного продукта. Мы можем изобразить это графически. Если на оси абсцисс отложим время в минутах, а иа оси ординат — микромоли образующегося продукта, то получим прямую линию (рис. 31).

Ферментативные реакции первого порядка характеризуются тем, что скорость реакции в каждый данный момент времени про­ порциональна имеющейся в наличии концентрации субстрата, т. е.

dX

dt = k . {A- X) ,

где А — начальная концентрация субстрата, X — концентрация превращенной части субстрата. Таким образом, X) — это концентрация исходного вещества в каждый данный момент по мере протекания реакции. Течение реакции первого порядка представлено графически на рис. 32,

lie

Соседние файлы в папке книги из ГПНТБ