
книги из ГПНТБ / Эйнор Л.О. Реконструирование энергетических механизмов фотосинтеза
.pdfПодчеркивается, что сопряжение системы переноса электрона происходит при восстановлении дикетона в эпоксигруппу. Пунктом сопряжения транспорта электронов и фосфорилирова ния является восстановление дикетона. ХЕ, рассмотренному вы ше, соответствует эпоксисоединение, связанное с ферментом. Было показано [42], что ацетолфосфат может сначала карбоксилироваться, а затем принимать участие в образовании фосфоенолпирувата. Этим объясняется ускоряющее действие углекислоты. Указанная схема, по-видимому, является в не которой степени развитием идей Варбурга о фотолите (см. стр. 63).
Как Варбург, так и Ясников с соавт. подчеркивали также роль аспарагиновой кислоты для фотосинтеза. В данном случае при ФФ ацетолфосфат может выводиться из системы, пре
вращаясь в аспарагиновую кислоту. Наличие |
эпоксидных групп |
||
у каротиноидов послужило основанием для |
проверки гипотезы |
||
об участии эпоксикаротиноидов в ФФ. |
|
|
|
Полученные Ясниковым и соавт. данные по действию хлорис |
|||
того |
аммония, а также представленные Сааковым |
[116] резуль |
|
таты |
по аналогичному действию специфических |
разобщителей |
на ФФ и реакции дезэпоксидации виолаксантина служат вес
кими |
доказательствами |
участия енолфосфатного механизма и |
|
в превращениях ксантофиллов. Был сделан вывод |
о возмож |
||
ности |
прямого участия |
эпоксикаротиноидов в ФФ |
[161]. |
Следует подчеркнуть, что, согласно представлениям Витта, Ясникова и большинства других исследователей, перенос про тона — явление вторичное. В противоположность Митчеллу, не перемещение протона вызывает фосфорилирование, а фосфорилирование и расход протона вызывают необходимость в его перемещении.
Бойер [258, 259] выдвинул так называемую механохимическую гипотезу сопряжения при окислительном фосфорилировании. Перенос электронов вызывает конформационные изменения в сократительном белке, прикрепленном к внутренней мембране митохондрий. Энергия же, освобождаемая при расслаблении сократительного белка, используется для синтеза АТФ посред ством промежуточного образования тиоэфирных связей. По этой гипотезе также имеет место обращение работы АТФ-азы в на правлении синтеза. По гипотезе Бойера допускается существо вание интермедиатов, особая роль отводится высокоэнергетиче скому соединению с сульфгидрильными связями. Первичным высокоэнергетическим соединением оказывается сократившийся белок, в котором SH-группы и карбоксильные группы связаны макроэргической связью:
S
С = 0
Определенным развитием механохимичёских идей Байера можно считать выдвинутую в 1969 г. Вейсом [972] гипотезу превращения энергии при окислительном фосфорилнровании в результате процессов попеременного растяжения i-i сокращения в мембранах. Конформационные изменения определяются нали чием фосфолипопротеидов и некоторых других молекул, вхо дящих в двуслойную структуру мембран, причем свойство эла стичности мембран делает возможным существование пунктов, обладающих переменной адсорбцией. Образование АТФ может иметь место в результате функционирования механизмов ионного обмена.
Фосфолипопротеиды или родственные вещества, входящие в структуру мембран, образуют локальные пункты ионного обмена, в которых находятся негидратированные катионы калия, если мембрана в состоянии сокращения, и гидратированные катионы натрия, если мембрана в состоянии растяжения. При сокра щении происходит реакция с вовлечением карбонильной группы одного полимерного сегмента и тиоспиртовой группы второго такого сегмента. В результате образуются тиоэфирные мостики между сегментами (состояние сокращения).
В ходе реакции тиокарбоксилирования образуется сложный комплекс (структура его, по Вейсу, гипотетична) и освобожда ется гидроксил, который в составе гипотетичного соединения ре агирует с протоном, магнием и АДФ и в присутствии ферментов фосфорилирования освобождает АТФ. Все частные реакции обратимы. Связь данных реакций с процессом фотосинтеза не рассматривается.
Как и авторы обсуждавшихся ранее гипотез, Вейс распола гает только косвенными данными в пользу развиваемых им пред ставлений, а предлагаемые им уравнения [972] носят достаточно умозрительный характер.
Рассмотренные гипотезы отнюдь не исчерпывают всех воз можных подходов относительно механизмов запасания энергии при фотосинтезе и дыхании; сам факт сосуществования довольно противоречивых представлений свидетельствует о неполноте наших знаний. Читателю будет предоставлена возможность вы бора между этими гипотезами после более подробного ознаком ления с экспериментальными данными.
2. РАЗДЕЛЕНИЕ А П П А Р А Т А ФОТОФОСФОРИЛИРОВАНИЯ НА КОМПОНЕНТЫ. СОПРЯГАЮЩИЕ ФАКТОРЫ
Важной особенностью тилакоидных мембран является стро гая структурная упорядоченность составляющих их функцио нальных субъединиц. Логичны попытки выделить такие субъ единицы, изучить их свойства и попытаться вновь восстановить всю систему, природа связей между компонентами которой еще
недостаточно ясна. Выше рассматривались методические приемы, позволяющие выделять пигмент-белковые комплексы из хлоро пластов. Разделение хлоропластов, точнее тилакоидов, в которых протекает ФФ, на мультиэнзимные комплексы, сохраняющие способность к реконструкции всего процесса, представляет за дачу иного плана.
Синтез АТФ хлоропластами на свету сопряжен с окислитель но-восстановительными реакциями переноса электронов. Компо ненты, которые могут быть выделены из хлоропластов (или соответствующие компоненты из митохондрий) и стимулируют фосфорилированне, не влияя на скорость переноса электронов, названы «сопрягающими факторами» (СФ).
Ягендорф в 1962 г. открыл [547], что после экстракции хлоро пластов раствором ЭДТА уровень ФФ с такими хлоропластами резко падает, причем эффект зависит именно от присутствия в среде ЭДТА. Концентрацию ЭДТА необходимо было поддержи вать на уровне около Ю - 3 М. Однако активность ФФ сохранялась, если в среде одновременно с ЭДТА находились катионы: двух валентные в концентрации не менее 10~4 М, а одновалентные — Ю - 2 М. Позднее Аврон обнаружил, что ФФ частично восстанав ливалось при добавлении к обработанным хлоропластам экстрак та ЭДТА вместе с солями магния [194].
Эти открытия имели отношение к АТФ-азе хлоропластов. Хотя по первым результатам [178, 205] казалось, что активность АТФ-азы в хлоропластах очень низкая, в дальнейшем было по казано, что это не так. В разных лабораториях было установ лено, что АТФ-аза хлоропластов нуждается в активации, после чего ее активность становится достаточно высокой.
АТФ-азная активность стимулируется ионами кальция или магния. Вамбутас и Рэкер [932] в 1965 г. показали, что АТФ-аза находится в латентной форме (после выделения в раствор из хлоропластов) и для ее активации необходима кратковремен ная инкубация с трипсином. В раствор переходят две АТФ-азы: одна зависит от кальция, другая — от магния. В развитие работы Аврона [195], открывшего сопрягающий фактор при ФФ, была обнаружена замечательная способность препарата Са-активи- руемой АТФ-азы служить таким сопрягающим фактором об разования АТФ для экстрагированных субхлоропластных частиц.
Рассмотрим некоторые методические приемы выделения и определения активностей ферментов, участвующих в реакциях фосфорилирования. Испытания активности АТФ-аз проводили в присутствии АТФ, трис-буфера рН 8,0, фосфоенолпирувата и пируваткиназы. В реакционные смеси вносили соли кальция или магния (для определения соответствующих АТФ-аз), а о ходе реакции судили по количеству освобождающегося фосфора. Зависимую от кальция АТФ-азу активировали трипсином в те чение нескольких минут, затем действие трипсина останавливали
внесением в реакционные смеси ингибитора трипсина, который выделяли из бобов сои. Только после этого можно было опре делять активность Са-активируемой АТФ-азы. В противном случае уровень активности был очень низким.
Испытание сопрягающей активности проводили с частицами хлоропластов, подвергнутыми специальной обработке. В опытах использовали субхлоропластные частицы, полученные озвучива
нием |
хлоропластов в среде |
0,4 М сахарозы |
и |
0,001 М трис-бу- |
фера |
рН 8,0 в присутствии |
3% фосфатидов, |
т. |
е. в бессолевой |
среде, с последующим выделением фракции частиц, осаждав
шихся при центрифугировании |
между 6600 и 105 000 |
g. Катали |
|||||
зируемое |
такими |
частицами |
ФФ (с ФМС) было низким (10— |
||||
30 мкмоль |
Фа/жг |
Х л - ч ) , |
и внесение СФ повышало его уровень |
||||
в |
несколько раз. Если же |
субхлоропластные |
частицы |
выделяли |
|||
в |
присутствии солей (50 |
мМ |
грыс-буфера и |
10 мМ |
хлористого |
натрия), то уровень ФФ был достаточно высок и без добавления СФ . Отметим также, что частицы, выделенные в бессолевой среде, отличались под электронным микроскопом от частиц, выделенных в присутствии солей.
Для определения сопрягающей активности в реакционные сосудики вносили латентную зависимую от Са АТФ-азу, субхло ропластные частицы, субстраты и кофакторы ФФ и затем опре деляли ход ФФ [924].
Несколько позднее Моудрианакис с соавт. [737], проведя электронномикроскопическое изучение, показали, что при отмыв ке 1 мМ раствором ЭДТА мембраны хлоропластов теряют с поверхности частицы, которые Парк с соавт. приняли ранее ошибочно за квантосомы. Однако оказалось, что после отмывки мембраны сохраняют высокую активность реакции Хилла, но не реакций, относящихся к ФФ, например реакции обмена АТФ — АДФ.
Вернемся к описанию биохимических свойств таких частиц. Неочищенный супернатант, полученный после осаждения субхлоропластных частиц по методике выделения в бессолевой сре де, в значительной степени восстанавливает высокую скорость ФФ [737].
Вамбутас и Рэкер описали очистку латентной АТФ-азы, ко торая в роли СФ оказалась даже более эффективной, чем су пернатант. Максимальное ФФ было достигнуто с 30 мкг белка, пропись выделения которого приведена ниже. Более высокие кон центрации ингибировали ФФ. Интересно, что препараты активи руемой магнием АТФ-азы хлоропластов не могли заменить этот фермент в качестве СФ. В роли СФ латентная Са-активируемая АТФ-аза при испытании до инкубации с трипсином оказалась неактивной, но становилась активной после обработки трипсином и его последующего выключения ингибитором трипсина. В этих опытах Вамбутаса и Рэкера Са-активируемая АТФ-аза ингибировалась магнием и п-бутил-3,5-дииодо-4-гидробензоатом. Зато
олигомицин — ингибитор |
митохондриальной |
Mg-активируемой |
||
АТФ-азы — оказался неактивным |
по отношению к очищенной |
|||
Са-активируемой АТФ-азе хлоропластов. |
|
|
||
О ч и с т к у л а т е н т н о й |
Са - а к т и |
в и р у є м |
о й |
АТФ - а з ы проводили |
следующим образом: свежевыделенные из шпината |
хлоропласты суспендирова |
ли в растворе 0,4 М сахарозы, 0,05 М гркс-буфера рН 8,0 и 0,01 М NaCI. Затем
суспензию хлоропластов (180 мг |
Хл |
в 60 мл раствора) вносили по каплям при |
||
активном перемешивании в 1200 |
мл |
холодного |
(—10° С) |
ацетона, осадок отде |
ляли от раствора и осторожно суспендировали |
в 30 мл |
трцс-буфера (0,05 М |
||
рН 8,0), содержащего 4мМ АТФ, до |
образования однородной суспензии. Спустя |
15 мин суспензию центрифугировали при комнатной температуре. В этом не очищенном экстракте, который можно было сохранять как при низких, так и при комнатных температурах, можно было определить большую часть всей актив ности исходных хлоропластов. Начальный этап очистки достигался фракциони рованием сернокислым аммонием и осаждением протаминсульфатом. Фермент
можно было сохранять |
в концентрированных |
растворах сернокислого аммония |
||||||||
в рефрижераторе многие недели без потерн активности. |
|
|
||||||||
Д л я |
о п р е д е л е н и я а к т и в н о с т и |
А Т Ф - а з ы отбирали |
часть пре |
|||||||
парата (0,1 мл или менее), содержащую |
~ |
300 |
мкг |
белка, |
осадок |
растворяли |
||||
в 5 мМ грыс-буфере рН |
8 и обрабатывали |
приблизительно |
50 мкг |
белка трип |
||||||
сином. |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
Д л я о п р е д е л е н и я а к т и в н о с т и с о п р я г а ю щ е г о |
ф а к т о р а , |
|||||||||
т а к н а з ы в а е м о г о |
С Ф ь необходимо было освободить белок |
от сульфата |
||||||||
аммония. |
После |
центрифугирования |
отобранной |
пробы |
осадок |
растворяли |
||||
в 5 мМ тркс-буфере рН |
8,0 и наносили на колонку |
(17 X 1,2 см) с |
сефадексом |
|||||||
G-50, уравненную |
тем же буфером. |
Фракции, |
содержащие |
белок, |
соединяли |
ииспытывали.
В1969 г. Беннум и Рэкер [230], развивая аналитическую методику Вамбутаса и Рэкера, описали дальнейшую очистку этого белка на ДЭАЭ-цел.чюлозе. Латентную, зависимую от кальция АТФ-азу после осаждения протамином рас творяли в буфере, содержащем 0,02 М грыс-сульфата, 2 мМ ЭДТА и 0,08 М сульфата аммония (рН 7,1) до 1%-ной концентрации белка и пропускали через колонку ДЭАЭ-целлюлозы, заряженную этим же буфером. (Через колонку раз мером 17 X 2,5 см можно пропустить 19 мл этого раствора.) Затем колонку промывали буфером для элюирования загрязняющих белков и экстрагировали латентную АТФ-азу повышением концентрации в буфере сульфата аммония до
0,31 М, причем пик активности СФі приходился на фракцию, вымываемую в пределах 0,16—0,2 М сульфата аммония. Активность повышалась еще в 5 раз. В раствор добавляли соль и АТФ до конечной концентрации 2,0 М (NHUbSO*
и2 мМ АТФ, а рН доводили до 7,1.
Втечение ночи образовывался осадок, который отделяли центрифугирова нием. Все операции проводили при комнатной температуре, а ферментативный препарат, который хранили при 4° С в 2 М сульфате аммония и 0,001 М АТФ, оставался активным в течение нескольких месяцев. Периодически добавляли NHtOH, поддерживали рН суспензии около 7,1.
Оказалось, что непосредственно после выделения препарата СФі на колон ке ДЭАЭ-целлюлозы и обессоливания с помощью сефадекса G-50 после обра ботки трипсином активность АТФ-азы была очень низкой. В процессе хранения
при 4° С в присутствии соли происходила медленная реактивация латентной АТФ-азной активности в течение двух дней.
Наблюдения показали, что СФі ведет себя совершенно поразному при охлаждении и нагревании, в зависимости от того,
находится ли он в |
растворенном |
состоянии |
или химически |
связан с ламеллами |
хлоропластов. |
|
|
При исследовании инактивации |
COt низкой |
температурой |
было замечено, что этот фактор в неочищенных экстрактах более устойчив к холоду. Из остатка, полученного после экстракции фактора СФі из обработанных ацетоном хлоропластов, выделен
новый |
фактор, поддерживающий |
устойчивость СФі к охлажде |
нию |
[670]. СФі полностью устойчив при нагревании, и его |
|
освобождали из препарата после прогревания при 100° С в те |
||
чение |
5 мин. В работе Лайвна |
и Рэкера [670] было показано, |
что выделенные из хлоропластов липиды частично поддерживают устойчивость против инактивации охлаждением фактора СФь Оказалось, что скорость инактивации СФі на холоду усиливалась при снижении рН и увеличении концентрации соли. По-види мому, при высокой ионной силе раствора происходит ослабление связей СФ] с мембранами до начала инкубации на холоду.
Этим же |
авторам |
удалось |
экстрагировать из |
хлоропластов |
(в 0,4 мМ |
NH4 OH) |
белок, |
который ингибирует |
АТФ-азную |
активность |
С Ф Ь активированную дитиотреитолом. |
Этот белок |
получил название СФ2 . Он чувствителен к обработке трипсином или к нагреванию и усиливает ФФ в хлоропластах, которые подвергались действию трипсина. В отсутствие АТФ раство римый СФі быстро инактивируется при температуре свыше60° С. Инкубацией хлоропластов в течение 10 мин при 80° С дости галась экстракция всей латентной АТФ-азы в раствор. Реадсорбция СФі происходит в присутствии катионов кальция или маг ния, но не одновалентных катионов.
Следующим шагом в изучении сопрягающего фактора явилось разделение хлоропластов и выделение из них двух фракций, совместное присутствие которых было необходимо для связы вания СФі [230]. Одна из фракций оказалась растворимой, а другая — нерастворимой в неводных растворителях. Растворимый компонент, выделенный из ацетонового экстракта хлоропластов, содержал белок, липид и хлорофилл. Действие хлороформа или бутанола инактивировало этот компонент. Наоборот, нераство римый компонент был выделен при обработке бутанолом.
|
Каждый компонент, взятый порознь, не связывал |
СФі.Зато |
|||
при |
подобранных |
условиях реконструкции (температура 60° С, |
|||
рН |
10) |
связывание |
СФ] составило |
91% реконструкции |
СФі про |
гретыми |
хлоропластами. |
|
|
||
|
Недавно Кару |
и Моудрианакис |
[577] опубликовали резуль |
таты исследований по разделению выделенных в водный со левой раствор ферментов, а именно:
— Са-зависимой |
АТФ-азы |
(s2o,io = |
12,7), |
стимулируемой |
дитиотреитолом, морфологически идентичной |
«квантосомам»; |
|||
— Mg-зависимой |
АТФ-азы |
(эго.и = |
6,0), полностью отлич |
|
ной от митохондриальной АТФ-азы, не |
требующей активации, |
|||
но стабилизируемой |
восстановителями; |
|
|
— АТФ — АДФ-обменного энзима (s20,w |
= 7,0); |
|
|||||
— |
аденилаткиназы (s2 0 , w = |
4,2); |
ассоциировалась |
с |
|||
— |
щелочной |
пирофосфатазы, которая |
|||||
фруктозофосфатазой. |
|
|
|
||||
В |
водный |
раствор перешли |
(и также |
были разделены) |
не |
||
которые ферменты углеводного цикла Кальвина. |
|
||||||
При разделении этих веществ хлоропласты промывали триж |
|||||||
ды в среде |
0,8 |
М |
сахарозы, |
0,02 М грыс-буфера рН 8,0 и |
|||
0,01-н. NaCl. |
Затем |
после центрифугирования по 7 мин при 7000 g |
осадки суспендировали и трижды промывали путем центрифуги
рования |
в бидистилляте, растирая их каждый раз после центри |
||||
фугирования, а во |
все соединенные |
экстракты добавляли до |
|||
0,05 М |
rpuc-буфера рН 8,0 и 0,01 |
М дитнотреитола. |
Осадки |
||
мембран |
дважды |
экстрагировали |
незабуференным |
раствором |
|
Ю - 3 М ЭДТА рН 8,0 непосредственно |
перед их использованием, |
причем в объединенные экстракты вносили буфер и восстано витель, как и при экстракции водою.
Внесение сернокислого |
аммония |
в экстракты в виде |
твердой |
|||
соли — сначала до 50%-ного насыщения |
(с отделением |
осадка |
||||
центрифугированием), а |
затем |
до 57%-ного и, |
наконец, до |
|||
80%-ного насыщения — позволило |
получить белковые |
фракции |
||||
в виде осадков, растворявшихся |
в среде |
с трисом и днтиотреи- |
||||
толом. |
|
|
|
|
|
|
Нерастворимый материал фракций, осаждаемых |
последова |
тельным насыщением солью, удаляли центрифугированием при 105 000 g, а супернатанты центрифугировали в градиенте плот ности 5—20%-ной сахарозы с добавлением дитиотреитол-трис- сульфатного буфера рН 8,0.
Все указанные выше ферменты содержались в экстрактах, и только половина Са-активируемой АТФ-азы оказалась в нера створимом осадке ламелл.
Распределение |
ферментов в осадках |
сернокислого аммония |
было следующим: |
та часть Са-активируемой АТФ-азы, которая |
|
в конечном итоге |
оказалась в растворе, |
была экстрагирована с |
помощью ЭДТА, и ее высаливали при 50%-ном |
насыщении |
(NH 4 ) 2 S0 4 . В эту же фракцию попала большая часть |
фермента, |
катализирующего обмен АТФ — АДФ, Mg-активируемой АТФ-азы
и |
аденилаткиназы. Пирофосфатаза экстрагировалась |
уже сра |
зу |
водой, но оказалась во фракции 57—80%-ного |
насыщения |
солью. |
|
В ходе центрифугирования растворенных осадков в градиенте плотности сахарозы разделение пиков ферментов из фракции 50%-ного насыщения солью оказалось весьма нечетким. Лучшие результаты дало разделение методом гельэлектрофореза.
Авторы подчеркивали нестойкость АТФ-аз при их хранении даже Б течение нескольких часов, причем дитиотреитол активи рует Са-АТФ-азу, но не поддерживает ее активность. Последнее исследователь должен иметь в виду: хотя ЭДТА лучше стабили-
зирует активность Са-АТФ-азы, тем не менее она на 90% |
инак- |
тивируется при хранении в течение двух недель при |
4° С. |
Отметим, что Mg-АТФ-аза на холоду более устойчива, но раз рушается трипсином.
Электронномикроскопические исследования обнаружили, что, во-первых, описанные ферменты не связаны с загрязнением хлоропластов митохондриями или другими органеллами, а, вовторых, термины «квантосома» и «препарат белков фракции I» относятся к части морфологически выявляемых на поверхности ламелл образований.
Аденилаткиназа проявляет определенное сходство с миокиназой тканей животных и характеризуется более высокой ста
бильностью, чем другие |
описы |
|
|
|
|
|
|
||||||
ваемые |
ферменты. |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|||
Роль |
сопрягающего |
факто |
|
|
|
|
|
|
|||||
ра. При |
экстракции |
хлоропла |
|
|
|
|
|
|
|||||
стов |
одними |
и теми же кон |
|
|
|
|
|
|
|||||
центрациями |
ЭДТА |
происхо |
|
|
|
|
|
|
|||||
дит выделение СФ и латентной |
|
|
|
|
|
|
|||||||
Са-активируемой |
|
АТФ-азы |
|
|
|
|
|
|
|||||
-[692] |
|
(рис. |
43). |
Латентная |
|
|
|
|
|
|
|||
АТФ-аза усиливала активность |
|
|
|
|
|
|
|||||||
ФФ |
фрагментами |
хлороплас |
І! |
|
|
|
|
Ъ |
|||||
тов, |
подвергнутых |
экстракции |
і |
• |
|
. |
|||||||
растворами ЭДТА. |
|
|
|
0 |
I |
2 |
3 |
4' |
5 |
||||
Иммунохимическими |
мето |
|
|
нН ЭДТА |
|
|
|||||||
дами |
показано, |
что |
антисыво |
Рис. 43. Влияние |
концентрации |
ЭДТА |
|||||||
ротка к СФ |
ингибирует |
ФФ |
в |
на активность реакции |
фотофосфори- |
||||||||
присутствии |
как |
ФМС, |
так |
и |
лирования |
|
(/) |
и Са-АТФ-азы (2) |
|||||
(Маккарти, |
Рэкер |
[692]). |
|
||||||||||
феррицианида. |
Отсюда |
был |
|
||||||||||
|
|
|
|
|
|
||||||||
сделан |
вывод |
о |
необходимости |
|
|
|
|
|
|
СФ для ФФ, хотя индуцируемые светом изменения рН или объ емов (конформационные изменения) не ингибировались. Это до казывало, что СФ не участвовал в индуцируемом светом изменении рН [692]. Кроме того, ранее было показано, что экст ракция хлоропластов растворами ЭДТА приводила к потере активности ФФ, зависимой от Са-АТФ-азы, а также инициируе мого светом увеличения рН и структурных изменений. Это бро сающееся в глаза противоречие было объяснено тем, что если СФ удаляют экстракцией растворами ЭДТА, то происходит наруше ние как структурной, так и каталитической, ферментативной функции этого вещества.
Зато при инактивации, вызванной действием антисыворотки, структурная функция, в отличие от ферментативной, остается ненарушенной. Согласно такой интерпретации, ферментативная функция СФ для осуществления индуцированных светом изме нений рН (см. ниже) или конформационных изменений не су щественна.
Попытка разобраться в такой двойственной природе действия
СФ предпринята Маккарти |
и Рэкером |
[693] |
с |
помощью |
||||
N, N'-дициклогексилкарбодиимида |
(ДЦКД) . Ими |
показано, |
что |
|||||
Д Ц К Д |
тормозит ЭТЦ и фосфорилирование в хлоропластах по |
|||||||
пути, отличному от действия других |
ингибиторов. |
|
|
|
||||
Д Ц К Д |
стимулирует ФФ |
(и индуцируемое светом |
повышение |
|||||
рН) в |
тех экстрагированных ЭДТА хлоропластах, которые ча |
|||||||
стично |
потеряли СФ. Однако в частицах, |
сохранивших |
СФ, |
|||||
Д Ц К Д |
ингибирует ФФ, а также выделение Ог по реакции Хилла |
|||||||
независимо |
от присутствия |
фосфатакцептирующей |
системы, |
|||||
причем |
разобщитель ФФ — NH4 C1 — снимает торможение. |
|
||||||
Так |
как |
Д Ц К Д повышает индуцируемые |
светом |
изменения |
величины рН в подвергнутых экстракции ЭДТА хлоропластах, уменьшая скорость обратного изменения рН, было высказано
предположение, что |
Д Ц К Д |
увеличивает в них уровень высоко- |
|
энергетичных интермедиатов, обозначаемых |
ХЕ. ВОЗМОЖНО, ЧТО |
||
Д Ц К Д ингибирует |
распад |
образованных |
высокоэнергетичных |
интермедиатов. Последнее может объяснить, почему Д Ц К Д сти мулирует ФФ в хлоропластах, которые утратили СФ. В ходе опытов было показано, что обработка хлоропластов ЭДТА при водила к экстракции 50—70% всей зависимой от кальция ак тивируемой трипсином АТФ-азы.
Маккарти и Рэкер [694] изучили влияние сопрягающего фак тора СФі на обратимость процесса ФФ. Высокие скорости актив ностей АТФ-азы, обмена неорганического меченого фосфора (Р 3 2 ) и АТФ и обращение электронного переноса от АТФ ха рактерны для митохондрий. Хотя сопрягающие факторы — так называемый Фі из митохондрий [115] и СФі из хлоропластов — проявляют определенные черты сходства, условия реакций с СФі несколько отличны. Для активации обмена Р 3 2 — АТФ и АТФ-аз- ных реакций в хлоропластах необходимо действие света или соединения с сульфгидрильными группами. Наиболее подходит здесь дитиотреитол. В реакциях принимает также участие АТФ-аза, активируемая ионами магния. В реакционные смеси вносили ФМС. Дитиотреитол активирует Mg-АТФ-азу в темноте, однако не активирует Са-АТФ-азу (условия активации которой описаны выше). Свет повышал активность Mg-активируемой АТФ-азы.
Кармели и Аврон [284], разбирая разногласия по вопросу действия разобщителей на Mg-зависимую АТФ-азу, высказали предположение, что как для этой АТФ-азы, так и для стиму ляции обмена АТФ — рН в хлоропластах «должны существовать условия высокоэнергетического состояния».
Последнее хорошо соответствует хемиосмотической гипотезе. Свет или дитиотреитол, поддерживая (или создавая) условия высокоэнергетического состояния, включают Mg-АТФ-азу.
Mg-АТФ-аза, включаемая светом, обладает замечательными свойствами: она гидролизует АТФ с высокой скоростью до нс-
черпывания резерва АТФ. Вероятно, поэтому АТФ выполняет двойную функцию, являясь субстратом для Mg-АТФ-азы и под держивая «состояние включения светом» этой АТФ-азы. Было показано, кроме того, что АТФ-аза может включаться кислотнощелочными переходами в присутствии сульфгидрильных соеди нений [571].
Физиологическое значение механизмов включения АТФ-азы может быть объяснено выработанным в ходе эволюции расти тельной клетки биохимическим приспособлением — сохранять АТФ в темноте [446].
Вообще говоря, роли высокоэнергетического состояния для ФФ в настоящее время уделяют большое внимание, и мы будем возвращаться к этому вопросу и в дальнейшем. По-видимому, оно может быть достигнуто как при действии света, так и при образовании высокоэнергетического интермедиата (ХЕ) дру гими путями, например при кислотно-щелочных переходах, а так же в присутствии пирофосфата или самого АТФ.
Прямое отношение к механизму ФФ имеют реакции обмена
АТФ и |
Ф н [282, 283], реакции обмена кислорода |
между АДФ |
и АТФ |
[207] и реакции с участием пирофосфата |
[881]. Харак |
терными для всех этих реакций являются зависимость их от действия света, концентрации ионов магния, высокоэнергетичных сульфгидрильных соединений, а также чувствительность ко многим разобщителям и ингибиторам ФФ.
Показано, в |
частности, что обмен АТФ — Ф н зависит от интен |
||
сивности |
света |
и состояния, предшествовавшего освещению, и |
|
что скорость максимального обмена наблюдается |
спустя не |
||
сколько |
минут |
после включения света. Образуется |
X ~ Y — со |
единение, которое не стабильно в последующий темновой период и в отсутствие Ф п быстро разрушается, но является предшествен ником образования АТФ. Обсуждается роль пирофосфата в обмене с Фн . Пирофосфат стимулирует обмен АТФ — Ф н [881].
Роль сопрягающего фактора остается не выясненной до кон ца. Из данных лаборатории Рэкера [670] вытекает, что СФі является аллостерическим ферментом, имеющим каталитическую группу, реагирующую с адениннуклеотидами. По-видимому, этот белок находится в химическом взаимодействии с сульфо-, галакто- и фосфолипидами. Большой трудностью для изучения СФі яв ляется то, что в латентном состоянии СФі не проявляет свойств АТФ-азы, но все воздействия, которые приводят к его актива ции, вызывают растворение СФі, так что возможности изучать свойства СФі в нативном состоянии на структуре пока нет.
Маккарти и Рэкер [694] показали, что реакции обмена Ф н и АТФ, меченного по фосфату, чувствительны к одним и тем же ингибиторам, что и ФФ в целом.
Более того, антитело к СФі ингибирует все эти реакции, по этому все они входят в процесс ФФ. Развивая теоретические