Добавил:
Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:

книги из ГПНТБ / Эйнор Л.О. Реконструирование энергетических механизмов фотосинтеза

.pdf
Скачиваний:
4
Добавлен:
25.10.2023
Размер:
12.09 Mб
Скачать

Подчеркивается, что сопряжение системы переноса электрона происходит при восстановлении дикетона в эпоксигруппу. Пунктом сопряжения транспорта электронов и фосфорилирова­ ния является восстановление дикетона. ХЕ, рассмотренному вы­ ше, соответствует эпоксисоединение, связанное с ферментом. Было показано [42], что ацетолфосфат может сначала карбоксилироваться, а затем принимать участие в образовании фосфоенолпирувата. Этим объясняется ускоряющее действие углекислоты. Указанная схема, по-видимому, является в не­ которой степени развитием идей Варбурга о фотолите (см. стр. 63).

Как Варбург, так и Ясников с соавт. подчеркивали также роль аспарагиновой кислоты для фотосинтеза. В данном случае при ФФ ацетолфосфат может выводиться из системы, пре­

вращаясь в аспарагиновую кислоту. Наличие

эпоксидных групп

у каротиноидов послужило основанием для

проверки гипотезы

об участии эпоксикаротиноидов в ФФ.

 

 

Полученные Ясниковым и соавт. данные по действию хлорис­

того

аммония, а также представленные Сааковым

[116] резуль­

таты

по аналогичному действию специфических

разобщителей

на ФФ и реакции дезэпоксидации виолаксантина служат вес­

кими

доказательствами

участия енолфосфатного механизма и

в превращениях ксантофиллов. Был сделан вывод

о возмож­

ности

прямого участия

эпоксикаротиноидов в ФФ

[161].

Следует подчеркнуть, что, согласно представлениям Витта, Ясникова и большинства других исследователей, перенос про­ тона — явление вторичное. В противоположность Митчеллу, не перемещение протона вызывает фосфорилирование, а фосфорилирование и расход протона вызывают необходимость в его перемещении.

Бойер [258, 259] выдвинул так называемую механохимическую гипотезу сопряжения при окислительном фосфорилировании. Перенос электронов вызывает конформационные изменения в сократительном белке, прикрепленном к внутренней мембране митохондрий. Энергия же, освобождаемая при расслаблении сократительного белка, используется для синтеза АТФ посред­ ством промежуточного образования тиоэфирных связей. По этой гипотезе также имеет место обращение работы АТФ-азы в на­ правлении синтеза. По гипотезе Бойера допускается существо­ вание интермедиатов, особая роль отводится высокоэнергетиче­ скому соединению с сульфгидрильными связями. Первичным высокоэнергетическим соединением оказывается сократившийся белок, в котором SH-группы и карбоксильные группы связаны макроэргической связью:

S

С = 0

Определенным развитием механохимичёских идей Байера можно считать выдвинутую в 1969 г. Вейсом [972] гипотезу превращения энергии при окислительном фосфорилнровании в результате процессов попеременного растяжения i-i сокращения в мембранах. Конформационные изменения определяются нали­ чием фосфолипопротеидов и некоторых других молекул, вхо­ дящих в двуслойную структуру мембран, причем свойство эла­ стичности мембран делает возможным существование пунктов, обладающих переменной адсорбцией. Образование АТФ может иметь место в результате функционирования механизмов ионного обмена.

Фосфолипопротеиды или родственные вещества, входящие в структуру мембран, образуют локальные пункты ионного обмена, в которых находятся негидратированные катионы калия, если мембрана в состоянии сокращения, и гидратированные катионы натрия, если мембрана в состоянии растяжения. При сокра­ щении происходит реакция с вовлечением карбонильной группы одного полимерного сегмента и тиоспиртовой группы второго такого сегмента. В результате образуются тиоэфирные мостики между сегментами (состояние сокращения).

В ходе реакции тиокарбоксилирования образуется сложный комплекс (структура его, по Вейсу, гипотетична) и освобожда­ ется гидроксил, который в составе гипотетичного соединения ре­ агирует с протоном, магнием и АДФ и в присутствии ферментов фосфорилирования освобождает АТФ. Все частные реакции обратимы. Связь данных реакций с процессом фотосинтеза не рассматривается.

Как и авторы обсуждавшихся ранее гипотез, Вейс распола­ гает только косвенными данными в пользу развиваемых им пред­ ставлений, а предлагаемые им уравнения [972] носят достаточно умозрительный характер.

Рассмотренные гипотезы отнюдь не исчерпывают всех воз­ можных подходов относительно механизмов запасания энергии при фотосинтезе и дыхании; сам факт сосуществования довольно противоречивых представлений свидетельствует о неполноте наших знаний. Читателю будет предоставлена возможность вы­ бора между этими гипотезами после более подробного ознаком­ ления с экспериментальными данными.

2. РАЗДЕЛЕНИЕ А П П А Р А Т А ФОТОФОСФОРИЛИРОВАНИЯ НА КОМПОНЕНТЫ. СОПРЯГАЮЩИЕ ФАКТОРЫ

Важной особенностью тилакоидных мембран является стро­ гая структурная упорядоченность составляющих их функцио­ нальных субъединиц. Логичны попытки выделить такие субъ­ единицы, изучить их свойства и попытаться вновь восстановить всю систему, природа связей между компонентами которой еще

недостаточно ясна. Выше рассматривались методические приемы, позволяющие выделять пигмент-белковые комплексы из хлоро­ пластов. Разделение хлоропластов, точнее тилакоидов, в которых протекает ФФ, на мультиэнзимные комплексы, сохраняющие способность к реконструкции всего процесса, представляет за­ дачу иного плана.

Синтез АТФ хлоропластами на свету сопряжен с окислитель­ но-восстановительными реакциями переноса электронов. Компо­ ненты, которые могут быть выделены из хлоропластов (или соответствующие компоненты из митохондрий) и стимулируют фосфорилированне, не влияя на скорость переноса электронов, названы «сопрягающими факторами» (СФ).

Ягендорф в 1962 г. открыл [547], что после экстракции хлоро­ пластов раствором ЭДТА уровень ФФ с такими хлоропластами резко падает, причем эффект зависит именно от присутствия в среде ЭДТА. Концентрацию ЭДТА необходимо было поддержи­ вать на уровне около Ю - 3 М. Однако активность ФФ сохранялась, если в среде одновременно с ЭДТА находились катионы: двух­ валентные в концентрации не менее 10~4 М, а одновалентные — Ю - 2 М. Позднее Аврон обнаружил, что ФФ частично восстанав­ ливалось при добавлении к обработанным хлоропластам экстрак­ та ЭДТА вместе с солями магния [194].

Эти открытия имели отношение к АТФ-азе хлоропластов. Хотя по первым результатам [178, 205] казалось, что активность АТФ-азы в хлоропластах очень низкая, в дальнейшем было по­ казано, что это не так. В разных лабораториях было установ­ лено, что АТФ-аза хлоропластов нуждается в активации, после чего ее активность становится достаточно высокой.

АТФ-азная активность стимулируется ионами кальция или магния. Вамбутас и Рэкер [932] в 1965 г. показали, что АТФ-аза находится в латентной форме (после выделения в раствор из хлоропластов) и для ее активации необходима кратковремен­ ная инкубация с трипсином. В раствор переходят две АТФ-азы: одна зависит от кальция, другая — от магния. В развитие работы Аврона [195], открывшего сопрягающий фактор при ФФ, была обнаружена замечательная способность препарата Са-активи- руемой АТФ-азы служить таким сопрягающим фактором об­ разования АТФ для экстрагированных субхлоропластных частиц.

Рассмотрим некоторые методические приемы выделения и определения активностей ферментов, участвующих в реакциях фосфорилирования. Испытания активности АТФ-аз проводили в присутствии АТФ, трис-буфера рН 8,0, фосфоенолпирувата и пируваткиназы. В реакционные смеси вносили соли кальция или магния (для определения соответствующих АТФ-аз), а о ходе реакции судили по количеству освобождающегося фосфора. Зависимую от кальция АТФ-азу активировали трипсином в те­ чение нескольких минут, затем действие трипсина останавливали

внесением в реакционные смеси ингибитора трипсина, который выделяли из бобов сои. Только после этого можно было опре­ делять активность Са-активируемой АТФ-азы. В противном случае уровень активности был очень низким.

Испытание сопрягающей активности проводили с частицами хлоропластов, подвергнутыми специальной обработке. В опытах использовали субхлоропластные частицы, полученные озвучива­

нием

хлоропластов в среде

0,4 М сахарозы

и

0,001 М трис-бу-

фера

рН 8,0 в присутствии

3% фосфатидов,

т.

е. в бессолевой

среде, с последующим выделением фракции частиц, осаждав­

шихся при центрифугировании

между 6600 и 105 000

g. Катали­

зируемое

такими

частицами

ФФ (с ФМС) было низким (10—

30 мкмоль

Фа/жг

Х л - ч ) ,

и внесение СФ повышало его уровень

в

несколько раз. Если же

субхлоропластные

частицы

выделяли

в

присутствии солей (50

мМ

грыс-буфера и

10 мМ

хлористого

натрия), то уровень ФФ был достаточно высок и без добавления СФ . Отметим также, что частицы, выделенные в бессолевой среде, отличались под электронным микроскопом от частиц, выделенных в присутствии солей.

Для определения сопрягающей активности в реакционные сосудики вносили латентную зависимую от Са АТФ-азу, субхло­ ропластные частицы, субстраты и кофакторы ФФ и затем опре­ деляли ход ФФ [924].

Несколько позднее Моудрианакис с соавт. [737], проведя электронномикроскопическое изучение, показали, что при отмыв­ ке 1 мМ раствором ЭДТА мембраны хлоропластов теряют с поверхности частицы, которые Парк с соавт. приняли ранее ошибочно за квантосомы. Однако оказалось, что после отмывки мембраны сохраняют высокую активность реакции Хилла, но не реакций, относящихся к ФФ, например реакции обмена АТФ — АДФ.

Вернемся к описанию биохимических свойств таких частиц. Неочищенный супернатант, полученный после осаждения субхлоропластных частиц по методике выделения в бессолевой сре­ де, в значительной степени восстанавливает высокую скорость ФФ [737].

Вамбутас и Рэкер описали очистку латентной АТФ-азы, ко­ торая в роли СФ оказалась даже более эффективной, чем су­ пернатант. Максимальное ФФ было достигнуто с 30 мкг белка, пропись выделения которого приведена ниже. Более высокие кон­ центрации ингибировали ФФ. Интересно, что препараты активи­ руемой магнием АТФ-азы хлоропластов не могли заменить этот фермент в качестве СФ. В роли СФ латентная Са-активируемая АТФ-аза при испытании до инкубации с трипсином оказалась неактивной, но становилась активной после обработки трипсином и его последующего выключения ингибитором трипсина. В этих опытах Вамбутаса и Рэкера Са-активируемая АТФ-аза ингибировалась магнием и п-бутил-3,5-дииодо-4-гидробензоатом. Зато

олигомицин — ингибитор

митохондриальной

Mg-активируемой

АТФ-азы — оказался неактивным

по отношению к очищенной

Са-активируемой АТФ-азе хлоропластов.

 

 

О ч и с т к у л а т е н т н о й

Са - а к т и

в и р у є м

о й

АТФ - а з ы проводили

следующим образом: свежевыделенные из шпината

хлоропласты суспендирова­

ли в растворе 0,4 М сахарозы, 0,05 М гркс-буфера рН 8,0 и 0,01 М NaCI. Затем

суспензию хлоропластов (180 мг

Хл

в 60 мл раствора) вносили по каплям при

активном перемешивании в 1200

мл

холодного

(—10° С)

ацетона, осадок отде­

ляли от раствора и осторожно суспендировали

в 30 мл

трцс-буфера (0,05 М

рН 8,0), содержащего 4мМ АТФ, до

образования однородной суспензии. Спустя

15 мин суспензию центрифугировали при комнатной температуре. В этом не­ очищенном экстракте, который можно было сохранять как при низких, так и при комнатных температурах, можно было определить большую часть всей актив­ ности исходных хлоропластов. Начальный этап очистки достигался фракциони­ рованием сернокислым аммонием и осаждением протаминсульфатом. Фермент

можно было сохранять

в концентрированных

растворах сернокислого аммония

в рефрижераторе многие недели без потерн активности.

 

 

Д л я

о п р е д е л е н и я а к т и в н о с т и

А Т Ф - а з ы отбирали

часть пре­

парата (0,1 мл или менее), содержащую

~

300

мкг

белка,

осадок

растворяли

в 5 мМ грыс-буфере рН

8 и обрабатывали

приблизительно

50 мкг

белка трип­

сином.

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Д л я о п р е д е л е н и я а к т и в н о с т и с о п р я г а ю щ е г о

ф а к т о р а ,

т а к н а з ы в а е м о г о

С Ф ь необходимо было освободить белок

от сульфата

аммония.

После

центрифугирования

отобранной

пробы

осадок

растворяли

в 5 мМ тркс-буфере рН

8,0 и наносили на колонку

(17 X 1,2 см) с

сефадексом

G-50, уравненную

тем же буфером.

Фракции,

содержащие

белок,

соединяли

ииспытывали.

В1969 г. Беннум и Рэкер [230], развивая аналитическую методику Вамбутаса и Рэкера, описали дальнейшую очистку этого белка на ДЭАЭ-цел.чюлозе. Латентную, зависимую от кальция АТФ-азу после осаждения протамином рас­ творяли в буфере, содержащем 0,02 М грыс-сульфата, 2 мМ ЭДТА и 0,08 М сульфата аммония (рН 7,1) до 1%-ной концентрации белка и пропускали через колонку ДЭАЭ-целлюлозы, заряженную этим же буфером. (Через колонку раз­ мером 17 X 2,5 см можно пропустить 19 мл этого раствора.) Затем колонку промывали буфером для элюирования загрязняющих белков и экстрагировали латентную АТФ-азу повышением концентрации в буфере сульфата аммония до

0,31 М, причем пик активности СФі приходился на фракцию, вымываемую в пределах 0,16—0,2 М сульфата аммония. Активность повышалась еще в 5 раз. В раствор добавляли соль и АТФ до конечной концентрации 2,0 М (NHUbSO*

и2 мМ АТФ, а рН доводили до 7,1.

Втечение ночи образовывался осадок, который отделяли центрифугирова­ нием. Все операции проводили при комнатной температуре, а ферментативный препарат, который хранили при 4° С в 2 М сульфате аммония и 0,001 М АТФ, оставался активным в течение нескольких месяцев. Периодически добавляли NHtOH, поддерживали рН суспензии около 7,1.

Оказалось, что непосредственно после выделения препарата СФі на колон­ ке ДЭАЭ-целлюлозы и обессоливания с помощью сефадекса G-50 после обра­ ботки трипсином активность АТФ-азы была очень низкой. В процессе хранения

при 4° С в присутствии соли происходила медленная реактивация латентной АТФ-азной активности в течение двух дней.

Наблюдения показали, что СФі ведет себя совершенно поразному при охлаждении и нагревании, в зависимости от того,

находится ли он в

растворенном

состоянии

или химически

связан с ламеллами

хлоропластов.

 

 

При исследовании инактивации

COt низкой

температурой

было замечено, что этот фактор в неочищенных экстрактах более устойчив к холоду. Из остатка, полученного после экстракции фактора СФі из обработанных ацетоном хлоропластов, выделен

новый

фактор, поддерживающий

устойчивость СФі к охлажде­

нию

[670]. СФі полностью устойчив при нагревании, и его

освобождали из препарата после прогревания при 100° С в те­

чение

5 мин. В работе Лайвна

и Рэкера [670] было показано,

что выделенные из хлоропластов липиды частично поддерживают устойчивость против инактивации охлаждением фактора СФь Оказалось, что скорость инактивации СФі на холоду усиливалась при снижении рН и увеличении концентрации соли. По-види­ мому, при высокой ионной силе раствора происходит ослабление связей СФ] с мембранами до начала инкубации на холоду.

Этим же

авторам

удалось

экстрагировать из

хлоропластов

(в 0,4 мМ

NH4 OH)

белок,

который ингибирует

АТФ-азную

активность

С Ф Ь активированную дитиотреитолом.

Этот белок

получил название СФ2 . Он чувствителен к обработке трипсином или к нагреванию и усиливает ФФ в хлоропластах, которые подвергались действию трипсина. В отсутствие АТФ раство­ римый СФі быстро инактивируется при температуре свыше60° С. Инкубацией хлоропластов в течение 10 мин при 80° С дости­ галась экстракция всей латентной АТФ-азы в раствор. Реадсорбция СФі происходит в присутствии катионов кальция или маг­ ния, но не одновалентных катионов.

Следующим шагом в изучении сопрягающего фактора явилось разделение хлоропластов и выделение из них двух фракций, совместное присутствие которых было необходимо для связы­ вания СФі [230]. Одна из фракций оказалась растворимой, а другая — нерастворимой в неводных растворителях. Растворимый компонент, выделенный из ацетонового экстракта хлоропластов, содержал белок, липид и хлорофилл. Действие хлороформа или бутанола инактивировало этот компонент. Наоборот, нераство­ римый компонент был выделен при обработке бутанолом.

 

Каждый компонент, взятый порознь, не связывал

СФі.Зато

при

подобранных

условиях реконструкции (температура 60° С,

рН

10)

связывание

СФ] составило

91% реконструкции

СФі про­

гретыми

хлоропластами.

 

 

 

Недавно Кару

и Моудрианакис

[577] опубликовали резуль­

таты исследований по разделению выделенных в водный со­ левой раствор ферментов, а именно:

— Са-зависимой

АТФ-азы

(s2o,io =

12,7),

стимулируемой

дитиотреитолом, морфологически идентичной

«квантосомам»;

— Mg-зависимой

АТФ-азы

(эго.и =

6,0), полностью отлич­

ной от митохондриальной АТФ-азы, не

требующей активации,

но стабилизируемой

восстановителями;

 

 

— АТФ — АДФ-обменного энзима (s20,w

= 7,0);

 

аденилаткиназы (s2 0 , w =

4,2);

ассоциировалась

с

щелочной

пирофосфатазы, которая

фруктозофосфатазой.

 

 

 

В

водный

раствор перешли

(и также

были разделены)

не­

которые ферменты углеводного цикла Кальвина.

 

При разделении этих веществ хлоропласты промывали триж­

ды в среде

0,8

М

сахарозы,

0,02 М грыс-буфера рН 8,0 и

0,01-н. NaCl.

Затем

после центрифугирования по 7 мин при 7000 g

осадки суспендировали и трижды промывали путем центрифуги­

рования

в бидистилляте, растирая их каждый раз после центри­

фугирования, а во

все соединенные

экстракты добавляли до

0,05 М

rpuc-буфера рН 8,0 и 0,01

М дитнотреитола.

Осадки

мембран

дважды

экстрагировали

незабуференным

раствором

Ю - 3 М ЭДТА рН 8,0 непосредственно

перед их использованием,

причем в объединенные экстракты вносили буфер и восстано­ витель, как и при экстракции водою.

Внесение сернокислого

аммония

в экстракты в виде

твердой

соли — сначала до 50%-ного насыщения

(с отделением

осадка

центрифугированием), а

затем

до 57%-ного и,

наконец, до

80%-ного насыщения — позволило

получить белковые

фракции

в виде осадков, растворявшихся

в среде

с трисом и днтиотреи-

толом.

 

 

 

 

 

 

Нерастворимый материал фракций, осаждаемых

последова­

тельным насыщением солью, удаляли центрифугированием при 105 000 g, а супернатанты центрифугировали в градиенте плот­ ности 5—20%-ной сахарозы с добавлением дитиотреитол-трис- сульфатного буфера рН 8,0.

Все указанные выше ферменты содержались в экстрактах, и только половина Са-активируемой АТФ-азы оказалась в нера­ створимом осадке ламелл.

Распределение

ферментов в осадках

сернокислого аммония

было следующим:

та часть Са-активируемой АТФ-азы, которая

в конечном итоге

оказалась в растворе,

была экстрагирована с

помощью ЭДТА, и ее высаливали при 50%-ном

насыщении

(NH 4 ) 2 S0 4 . В эту же фракцию попала большая часть

фермента,

катализирующего обмен АТФ — АДФ, Mg-активируемой АТФ-азы

и

аденилаткиназы. Пирофосфатаза экстрагировалась

уже сра­

зу

водой, но оказалась во фракции 57—80%-ного

насыщения

солью.

 

В ходе центрифугирования растворенных осадков в градиенте плотности сахарозы разделение пиков ферментов из фракции 50%-ного насыщения солью оказалось весьма нечетким. Лучшие результаты дало разделение методом гельэлектрофореза.

Авторы подчеркивали нестойкость АТФ-аз при их хранении даже Б течение нескольких часов, причем дитиотреитол активи­ рует Са-АТФ-азу, но не поддерживает ее активность. Последнее исследователь должен иметь в виду: хотя ЭДТА лучше стабили-

зирует активность Са-АТФ-азы, тем не менее она на 90%

инак-

тивируется при хранении в течение двух недель при

4° С.

Отметим, что Mg-АТФ-аза на холоду более устойчива, но раз­ рушается трипсином.

Электронномикроскопические исследования обнаружили, что, во-первых, описанные ферменты не связаны с загрязнением хлоропластов митохондриями или другими органеллами, а, вовторых, термины «квантосома» и «препарат белков фракции I» относятся к части морфологически выявляемых на поверхности ламелл образований.

Аденилаткиназа проявляет определенное сходство с миокиназой тканей животных и характеризуется более высокой ста­

бильностью, чем другие

описы­

 

 

 

 

 

 

ваемые

ферменты.

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Роль

сопрягающего

факто­

 

 

 

 

 

 

ра. При

экстракции

хлоропла­

 

 

 

 

 

 

стов

одними

и теми же кон­

 

 

 

 

 

 

центрациями

ЭДТА

происхо­

 

 

 

 

 

 

дит выделение СФ и латентной

 

 

 

 

 

 

Са-активируемой

 

АТФ-азы

 

 

 

 

 

 

-[692]

 

(рис.

43).

Латентная

 

 

 

 

 

 

АТФ-аза усиливала активность

 

 

 

 

 

 

ФФ

фрагментами

хлороплас­

І!

 

 

 

 

Ъ

тов,

подвергнутых

экстракции

і

 

.

растворами ЭДТА.

 

 

 

0

I

2

3

4'

5

Иммунохимическими

мето­

 

 

нН ЭДТА

 

 

дами

показано,

что

антисыво­

Рис. 43. Влияние

концентрации

ЭДТА

ротка к СФ

ингибирует

ФФ

в

на активность реакции

фотофосфори-

присутствии

как

ФМС,

так

и

лирования

 

(/)

и Са-АТФ-азы (2)

(Маккарти,

Рэкер

[692]).

 

феррицианида.

Отсюда

был

 

 

 

 

 

 

 

сделан

вывод

о

необходимости

 

 

 

 

 

 

СФ для ФФ, хотя индуцируемые светом изменения рН или объ­ емов (конформационные изменения) не ингибировались. Это до­ казывало, что СФ не участвовал в индуцируемом светом изменении рН [692]. Кроме того, ранее было показано, что экст­ ракция хлоропластов растворами ЭДТА приводила к потере активности ФФ, зависимой от Са-АТФ-азы, а также инициируе­ мого светом увеличения рН и структурных изменений. Это бро­ сающееся в глаза противоречие было объяснено тем, что если СФ удаляют экстракцией растворами ЭДТА, то происходит наруше­ ние как структурной, так и каталитической, ферментативной функции этого вещества.

Зато при инактивации, вызванной действием антисыворотки, структурная функция, в отличие от ферментативной, остается ненарушенной. Согласно такой интерпретации, ферментативная функция СФ для осуществления индуцированных светом изме­ нений рН (см. ниже) или конформационных изменений не су­ щественна.

Попытка разобраться в такой двойственной природе действия

СФ предпринята Маккарти

и Рэкером

[693]

с

помощью

N, N'-дициклогексилкарбодиимида

(ДЦКД) . Ими

показано,

что

Д Ц К Д

тормозит ЭТЦ и фосфорилирование в хлоропластах по

пути, отличному от действия других

ингибиторов.

 

 

 

Д Ц К Д

стимулирует ФФ

(и индуцируемое светом

повышение

рН) в

тех экстрагированных ЭДТА хлоропластах, которые ча­

стично

потеряли СФ. Однако в частицах,

сохранивших

СФ,

Д Ц К Д

ингибирует ФФ, а также выделение Ог по реакции Хилла

независимо

от присутствия

фосфатакцептирующей

системы,

причем

разобщитель ФФ — NH4 C1 — снимает торможение.

 

Так

как

Д Ц К Д повышает индуцируемые

светом

изменения

величины рН в подвергнутых экстракции ЭДТА хлоропластах, уменьшая скорость обратного изменения рН, было высказано

предположение, что

Д Ц К Д

увеличивает в них уровень высоко-

энергетичных интермедиатов, обозначаемых

ХЕ. ВОЗМОЖНО, ЧТО

Д Ц К Д ингибирует

распад

образованных

высокоэнергетичных

интермедиатов. Последнее может объяснить, почему Д Ц К Д сти­ мулирует ФФ в хлоропластах, которые утратили СФ. В ходе опытов было показано, что обработка хлоропластов ЭДТА при­ водила к экстракции 50—70% всей зависимой от кальция ак­ тивируемой трипсином АТФ-азы.

Маккарти и Рэкер [694] изучили влияние сопрягающего фак­ тора СФі на обратимость процесса ФФ. Высокие скорости актив­ ностей АТФ-азы, обмена неорганического меченого фосфора (Р 3 2 ) и АТФ и обращение электронного переноса от АТФ ха­ рактерны для митохондрий. Хотя сопрягающие факторы — так называемый Фі из митохондрий [115] и СФі из хлоропластов — проявляют определенные черты сходства, условия реакций с СФі несколько отличны. Для активации обмена Р 3 2 — АТФ и АТФ-аз- ных реакций в хлоропластах необходимо действие света или соединения с сульфгидрильными группами. Наиболее подходит здесь дитиотреитол. В реакциях принимает также участие АТФ-аза, активируемая ионами магния. В реакционные смеси вносили ФМС. Дитиотреитол активирует Mg-АТФ-азу в темноте, однако не активирует Са-АТФ-азу (условия активации которой описаны выше). Свет повышал активность Mg-активируемой АТФ-азы.

Кармели и Аврон [284], разбирая разногласия по вопросу действия разобщителей на Mg-зависимую АТФ-азу, высказали предположение, что как для этой АТФ-азы, так и для стиму­ ляции обмена АТФ — рН в хлоропластах «должны существовать условия высокоэнергетического состояния».

Последнее хорошо соответствует хемиосмотической гипотезе. Свет или дитиотреитол, поддерживая (или создавая) условия высокоэнергетического состояния, включают Mg-АТФ-азу.

Mg-АТФ-аза, включаемая светом, обладает замечательными свойствами: она гидролизует АТФ с высокой скоростью до нс-

черпывания резерва АТФ. Вероятно, поэтому АТФ выполняет двойную функцию, являясь субстратом для Mg-АТФ-азы и под­ держивая «состояние включения светом» этой АТФ-азы. Было показано, кроме того, что АТФ-аза может включаться кислотнощелочными переходами в присутствии сульфгидрильных соеди­ нений [571].

Физиологическое значение механизмов включения АТФ-азы может быть объяснено выработанным в ходе эволюции расти­ тельной клетки биохимическим приспособлением — сохранять АТФ в темноте [446].

Вообще говоря, роли высокоэнергетического состояния для ФФ в настоящее время уделяют большое внимание, и мы будем возвращаться к этому вопросу и в дальнейшем. По-видимому, оно может быть достигнуто как при действии света, так и при образовании высокоэнергетического интермедиата (ХЕ) дру­ гими путями, например при кислотно-щелочных переходах, а так­ же в присутствии пирофосфата или самого АТФ.

Прямое отношение к механизму ФФ имеют реакции обмена

АТФ и

Ф н [282, 283], реакции обмена кислорода

между АДФ

и АТФ

[207] и реакции с участием пирофосфата

[881]. Харак­

терными для всех этих реакций являются зависимость их от действия света, концентрации ионов магния, высокоэнергетичных сульфгидрильных соединений, а также чувствительность ко многим разобщителям и ингибиторам ФФ.

Показано, в

частности, что обмен АТФ — Ф н зависит от интен­

сивности

света

и состояния, предшествовавшего освещению, и

что скорость максимального обмена наблюдается

спустя не­

сколько

минут

после включения света. Образуется

X ~ Y — со­

единение, которое не стабильно в последующий темновой период и в отсутствие Ф п быстро разрушается, но является предшествен­ ником образования АТФ. Обсуждается роль пирофосфата в обмене с Фн . Пирофосфат стимулирует обмен АТФ — Ф н [881].

Роль сопрягающего фактора остается не выясненной до кон­ ца. Из данных лаборатории Рэкера [670] вытекает, что СФі является аллостерическим ферментом, имеющим каталитическую группу, реагирующую с адениннуклеотидами. По-видимому, этот белок находится в химическом взаимодействии с сульфо-, галакто- и фосфолипидами. Большой трудностью для изучения СФі яв­ ляется то, что в латентном состоянии СФі не проявляет свойств АТФ-азы, но все воздействия, которые приводят к его актива­ ции, вызывают растворение СФі, так что возможности изучать свойства СФі в нативном состоянии на структуре пока нет.

Маккарти и Рэкер [694] показали, что реакции обмена Ф н и АТФ, меченного по фосфату, чувствительны к одним и тем же ингибиторам, что и ФФ в целом.

Более того, антитело к СФі ингибирует все эти реакции, по­ этому все они входят в процесс ФФ. Развивая теоретические

Соседние файлы в папке книги из ГПНТБ