книги из ГПНТБ / Новые методы анализа аминокислот, пептидов и белков
..pdf112 |
ГЛАВА 2 |
|
образованию соли, |
получалось количественно при |
нагрева |
нии с трифторуксусным ангидридом при 140—150°С |
[29, 115]. |
|
В этих условиях полностью ацилируется и триптофан [115]. Меньшая ацилирующая способность уксусного ангидрида не позволяет проводить ацетилирование хлоргидрата гуанидиниевой группы в аналогичных условиях. Тем не менее мы получили пригодное для ГХ ацетильное производное, нейтрализовав хлоргидрат я-пропилового эфира перед ацетилированием карбона том щелочного металла или, что еще лучше, дауэксом-1 (в ОН~-форме) в абсолютном я-пропаноле. Данные анализа произ водных аргинина и гистидина на носителе хромосорб W (высоко качественный, фирма «Johns-Manville») с 3% жидкой фазы OV-17 приведены на рис. 1. На хромосорбе G (в. к.) с той же жидкой фазой не удается получить пик аргинина [23]. Производ ные аргинина и гистидина не будут элюироваться ни с одного из носителей, покрытых карбоваксом.
2.4.4.Превращение аргинина в орнитин и гистидина
васпарагиновую кислоту
Вполне очевидно, что для смесей, содержащих различные неизвестные аминокислоты, желательно иметь стандартные условия этерификации и ацилирования. До сих пор оказывалось невозможным ацетилировать аргинин и гистидин в тех же условиях, что и другие аминокислоты. Для решения этой проб лемы мы избрали превращение аргинина в орнитин и гистидина в аспарагиновую кислоту. Обе эти реакции специфичны, что позволяет использовать их для сложных смесей аминокислот
Таблица 2
РАСЩЕПЛЕНИЕ АРГИНИНА ДО МОЧЕВИНЫ ( + ОРНИТИН) АРГИНАЗОИ а)
Аргннин-HCl, мкг |
Добавки |
Количество полученной |
Степень |
|
мочевины, мкг |
||||
(211 мкг = 1 мкмоль) |
амннокнслот, |
(теоретически |
превращения, |
|
|
мкмоль |
60 мкг=1 мкмоль) |
% |
|
-211 |
7 6 |
58.60 |
99 |
|
211 |
62,59 |
100 |
||
211 |
И |
|
60 |
100 |
211 |
21 |
|
57 |
95 |
211 |
1 |
8 |
58 |
97 |
211 |
2 в |
60 |
100 |
|
211 |
З 8 |
58 |
97 |
|
Во всех случаях прибавляли 20 мкг фермента. Мочевину определяли колоримет рически с диацетилмоноксим-тносемикарбазилным реагентом по калибровочному графику.
® По I молю пролива, треонина, серина, аспарагнновоА и глутаминовой кислот, метионина и фенилаланина.
8 Лизни.
ГАЗОВАЯ ХРОМАТОГРАФИЯ АМИНОКИСЛОТ |
113 |
и получать производные обычным образом в стандартных условиях.
Превращение аргинина в мочевину и орнитин контролиро валось по образованию мочевины после активирования арги назы сульфатом марганца при pH 7,8. Для активации аргиназы
(«Worthington Biochemical») 1 мг фермента инкубировали при
37 °С в течение 4 ч с 0,5 мл 0,1 М ацетата аммония при pH 7,8 и 0,5 мл 0,5 М MnSC>4. Перед употреблением раствор активиро
ванного |
фермента |
разбавляли в отношении 1: 10 дистиллиро |
||
ванной |
водой (pH |
которой доводили аммиаком |
до |
значения |
9,5) и |
прибавляли |
0,2 мл полученного раствора |
к |
1 мкмолю |
хлоргидрата аргинина в 0,5 мл ацетата аммония с той же ве личиной pH [23]. Приведенные в табл. 2 экспериментальные данные свидетельствуют о количественном ферментативном расщеплении даже в присутствии большого избытка других аминокислот.
Озон вызывает расщепление С= С-связи в имидазолах [76], вследствие чего гистидин превращается в аспарагиновую кис
лоту. Методика |
авторов |
|
этой |
главы подробно приведена |
||
в разд. 2.7.4. |
|
|
СН—Nv, |
|||
|
|
|
||||
II |
/СН |
0I |
/ \ |
)0 |
\ |
" с н |
0 |
\ |
/ |
|
/ |
||
С—NH' |
|
|
С—NH-' |
с о о н |
||
| |
03 |
|
1 |
|
1 |
|
1 |
|
|
— * с н 2 |
|||
с н 2 |
— > |
|
с н 2 |
|
||
1 |
|
|
1 |
|
|
1 |
c h n h 2 |
|
|
c1h n h 2 |
c1h n h 2 |
||
(Ь о н |
|
|
с о о н |
|
с о о н |
|
ГИСТИДИН |
|
030НИД |
|
аспарагиновая |
||
|
|
|
|
|
|
кислота |
Для исследования количественной стороны реакции озон (полученный при высоковольтном разряде в токе чистого кис лорода) пропускали над 10-7 моля гистидина в 0,1 н. НС1
втечение 15 мин перед превращением в N-ацетил-н-пропильное производное (разд. 2.4.8). Образующуюся аспарагиновую кис лоту растворяли в 100 мкл этилацетата и 1 мкл (теоретически соответствующий 10'9 моль) подвергали газохроматографиче скому анализу. Степень превращения гистидина в аспараги новую кислоту, рассчитанная по отношению к площади пика 10-9 моль аутентичного образца аспарагиновой кислоты, оказа лась равной 96%. Для количественной оценки смесей, содер жащих аспарагиновую кислоту и гистидин, хроматографируют озонированный и неозонированный образцы. При этом разница
вмолярном содержании аспарагиновой кислоты служит мерой количества гистидина в смеси.
114 |
ГЛАВА 2 |
2.4.5.Устойчивость ацилированных аминокислот
Склонность к деацилированию у ацилзамещенных О-, S-, дополнительных NH2, имидазольной и гуанидиновой групп на много выше, чем у a-NH2-rpynn, причем ТФА-производные в этом отношении намного чувствительнее соответствующих аце тильных соединений. Эти свойства имеют решающее значение при выборе жидкой фазы и носителя для ГХ. Было показано, что в водной среде ди-ТФА-серин быстро превращается в мо но (N)-ацильное производное [144]. При достаточно длительном воздействии N-ТФА-серин в конце концов снова превращается в нативную аминокислоту, что, как полагают, связано с N—>0 ацильной миграцией. Ди-ТФА-производные оксипролина, сери на, треонина, тирозина и цистеина тоже быстро разлагаются до N-ТФА-соединений в метаноле, воде и даже в некоторых тщательно высушенных растворителях (бензол, хлористый эти лен и н-амилтрифторацетат) [28, 84, 99]. При этом наиболее лабильны производные тирозина, а наиболее устойчивы (3-0- ТФА-группировка треонина и производное по индольному атому азота триптофана. Наблюдаемые в ГХ метанольных рас творов метиловых эфиров ТФА-аминокислот большие времена удерживания для серина и тирозина согласуются с их разло жением до свободных ОН_-форм. Еще одним доказательством лабильности О- и S-ТФА-тирозина и цистеина служит их спо собность к ацилированию к-амилового эфира изолейцина. Трео нин, серин и оксипролин в этом отношении были неактивны [28]. н-Бутиловый эфир ди-ТФА-гистидпна оказалось целесооб разным хроматографировать, полностью разлагая его бутано лом на газохроматографической колонке до моно-ТФА-произ- водного [43] (см. также разд. 2.7.3).
Несмотря на утверждение о том, что этерификация раство ром НС1 в пропаноле может проводиться после ацетилирования аминокислот уксусным ангидридом в уксусной кислоте [52], этот метод применим исключительно к аминокислотам, имею щим только а-ЫН2-группы. Мы обнаружили, что при этерифи кации-смесью пропанол — НС1 О-ацетилсерин, -треонин, -тирозин и e-NH-ацетиллизин полностью разрушаются (это относится к ТФА-метиловым эфирам [25]). Нами было также показано, что в отличие от ди-ТФА-производных н-пропиловые эфиры диацетиламинокислот (за исключением гистидина) относи тельно устойчивы в присутствии спирта (табл. 3).
В безводных условиях эфиры ТФА- и ацетиламинокислот имеют хорошую термическую устойчивость (+200°С) [28, 144], тем не менее металлические инжекторы, по-видимому, вызы вают разложение О-ТФА-производных, в особенности производ ных тирозина и треонина [41, 78]. Соответствующие ацетильные
ГАЗОВАЯ ХРОМАТОГРАФИЯ АМИНОКИСЛОТ |
115 |
Таблица 3
н а й д е н н о е с п о м о щ ь ю гх п р о ц е н т н о е о т н о ш е н и е |
|
|
||||
к-ПРОПИЛОВЫХ э ф и р о в а ц е т и л а м и н о к и с л о т , |
о с т а в ш и х с я |
п о с л е |
|
|||
ВЫДЕРЖИВАНИЯ с 20% МЕТАНОЛА в ЭТИЛАЦЕТАТЕ; |
|
|
||||
100К ОТНОСИТСЯ К НАЧАЛЬНОМУ ВРЕМЕНИ |
|
|
||||
|
Количественное отношение к-пропиловых эфиров |
|||||
Время обработки |
|
ацетиламинокислот, % |
|
|
||
|
|
|
|
|
|
|
|
Thr |
Ser |
Туг |
Lys |
Asp |
Val |
|
100 |
100 |
98 |
98 |
100 |
100 |
2 |
100 |
101 |
100 |
98 |
99 |
98 |
18 |
103 |
98 |
100 |
97 |
101 |
97 |
3 часа в 100%-ном метаноле |
102 |
98 |
96 |
97 |
99 |
97 |
Как внутренний стандарт вводилось производное норлейцпна. |
|
|
|
|||
Условия ГХ приведены на рис. |
4. |
|
|
|
|
|
соединения намного более устойчивы [78]. Аналогичные разли чия в устойчивости наблюдаются в присутствии полярных жид ких фаз (см. разд. 2.4.7).
2.4.6.Выбор эфиров ациламинокислот для ГХ*
Выбор определенного производного для газохроматографи ческого анализа диктуется рядом взаимозависимых требований: простотой приготовления, высоким выходом, устойчивостью и летучестью производных, а также наличием колонок и хрома тографических условий, пригодных для их разделения.
Несколькими группами авторов проведено сравнение лету честей различных ациламинокислот и их эфиров. Были изме рены температуры плавления [142] и, что более существенно, температуры возгонки [138] и давления паров [140] ряда N-ТФА-аминокислот; в вакууме (0,02—0,06 мм ртутного столба) некоторые ТФА-аминокислоты сублимировались при темпера туре от 70 до 80 °С (тирозин, триптофан и лизин составляли исключение), тогда как соответствующие метиловые эфиры воз гонялись приблизительно на 40 °С ниже. В газохроматографи ческом исследовании наиболее значительной является сравни тельная оценка времен удерживания или температур для раз личных производных, хроматографированных в одинаковых условиях. При увеличении длины цепи этерифицирующего спирта возрастает время удерживания [83]; с другой стороны, метиловый и н-бутиловый эфиры N-ТФА-аминокислот более летучи, чем соответствующие N-ацетильные производные [78, 83]. (Выбранное производное должно обладать достаточной-
* С м , р а з д . 2 .7 .2 и 2.7,5 .
116 ГЛАВА 2
летучестью, чтобы элюироваться в рамках программы времени и температуры, определяемой жидкой фазой; слишком высокая летучесть может привести к скоплению пиков в начальной ча сти хроматограммы, а также к несомненным механическим по терям, если конечной стадией получения производного является упаривание.)
Хотя Герке выбрал н-бутиловые эфиры [78], на основании количественного измерения потерь при упаривании эфиров N-ТФД-аланина было сделано заключение, что достоверные результаты можно получить только с «-амиловыми производ ными [27]. Потерь метиловых эфиров N-ТФА-аминокислот уда валось избежать только при упаривании избытка реагентов при низкой температуре [30]. По предварительным данным, по лученным в лаборатории авторов, метиловые, этиловые и н-пропиловые эфиры ацетилированных аминокислот пригодны для газохроматографического разделения в интервале темпе ратур 100—240 °С. Этерификация проходит быстро, и при про стой двухстадийной методике получения ацетил-н-пропиловых эфиров [23] нет потерь, связанных с упариванием (табл. 4). По этим причинам, а также из-за легкости разделения на покры тых карбоваксом хромосорбах G или W (высококачественные), мы остановили свой выбор на ацетил-н-пропиловых эфирах
(см. разд. 2.4.7).
Ацетилированные О- и S-группы сравнительно устойчивы. Для ацетилирования дихлоргидрата эфира аргинина ацилирующей способности уксусного ангидрида недостаточно. Необхо
димо сначала получить свободное основание |
обессоливанием |
на анионообменной смоле или нейтрализацией |
(разд. 2.4.3.5). |
Из-за высокой летучести, связанной с ТФА-группой, во избе
жание потерь при |
упаривании |
необходимо |
применять |
эфиры |
||
|
|
|
|
|
Таблица 4 |
|
определяемый с помощью ГХ ВЫХОД к-ПРОПИЛОВЫХ ЭФИРОВ |
||||||
|
АЦЕТИЛАМИНОКИСЛОТ. ОСТАЮЩИХСЯ ПОСЛЕ |
|
||||
|
КОНТРОЛИРУЕМОГО УПАРИВАНИЯ |
|
|
|||
Время |
Т °с |
Выход к-пропиловых эфиров аминокислот, |
К |
|||
|
|
|
|
|
||
упаривания, мин |
Ala |
Val |
Gly |
Ser |
Glu |
|
|
|
|||||
5- |
30 |
96 |
99 |
94 |
98 |
100 |
20' |
30 |
73 |
81 |
80 |
97 |
99 |
5 |
90 |
32 |
56 |
44 |
100 |
100 |
20 |
90 |
< 10 |
< 10 |
<10 |
53 |
96 |
После обработки в каждую пробирку добавляли внутренний стандарт норлейцин. Испаряющий газ: сухой азот, пропускаемый со скоростью 1200 мл/мин через прибор, используемый обычно для получения производных (рис. 8, разд. 2. 4. 8).
ГАЗОВАЯ ХРОМАТОГРАФИЯ АМИНОКИСЛОТ |
117 |
высших спиртов. Для этерификации бутанолом или «-амило вым спиртом требуется продолжительное время, что же ка сается надежности, то полное трифторацетилирование может быть достигнуто с трифторуксусным ангидридом при 150 °С. ТФА-производные менее устойчивы, чем ацетильные, и в раз деле 2.4.7 обсуждаются проблемы, возникающие в результате колоночной деструкции О- и S-ТФА-производных.
2.4.7.Носители, жидкие фазы и способы разделения эфиров ациламинокислот методом ГХ*
2.4.7.1.Носители
Наиболее широко используемыми носителями для насадоч ных колонок были специально приготовленные и сортированные диатомитовые земли. Поверхность этих материалов модифициро вали различными способами, но, по общему мнению, два вида обработок особенно улучшали ее свойства: промывка сильными минеральными кислотами для удаления ионов металлов и «дез активирование» поверхности силанизирующими реагентами. На поверхности кремнийсодержащих материалов имеются ак тивные центры двух типов: (а) протонодонорная силанольная (—Si—ОН) группа и (б) протоноакцепторная силоксановая (—Si—О—Si—) группа. Активность первой можно блокиро вать реакцией с ГМДС или ДМХС.
— Si—О-Si- |
—Si—О— S1- |
|
||
1 |
| |
|
|
|
1 |
1 |
4 |
4 |
|
НО |
ОН |
|
||
+ |
\ |
/ |
+ 2 НС1 |
|
С 1 |
С1 |
|||
/ |
/ |
/ |
\ |
3 |
\ |
СНз |
СН |
||
СНз |
СНз |
— Si—О— S i- |
|
|
|
|
|
||
|
|
А1 |
Ан + НС1 |
|
|
СНз- S i —СНз |
|
||
|
|
1 |
|
|
|
|
С 1 |
|
|
— Si—О - ■ Si— |
|
— Si— |
О—Si— |
|
|
1 |
|
1 |
I |
4 |
1 |
|
1 |
1 |
он |
► |
О |
ОН |
|
1 |
+ СН3ОН — |
| |
+ |
|
СНз—Si—сн,9 |
СН8—S i- -СНз |
|||
I
снг
* С м . т а к ж е р а зд . 2 .7.1.
118 ГЛАВА 2
Поверхности носителей, подвергшихся такой обработке, хими чески менее активны, чем у необработанных носителей.
По способности к разделению м-пропиловых эфиров ацетиламинокислот без образования хвостов различные носители можно расположить в ряд, который приблизительно соответ ствует степени дезактивирования поверхности. С 0,5—1% карбовакса 6М мы получили следующий ряд в порядке воз
растания эффективности: хромосорб W |
(п. к.) < W |
(п. к., |
||
ДМХС) < газхром Q < |
хромосорб W или G (п. к., ДМХС, вы |
|||
сококачественный) . |
|
|
|
|
Герке и сотрудники показали, что термическая обработка |
||||
несиланизированного |
хромосорба G |
при |
температуре |
450— |
600 °С, проводящаяся |
до нанесения, |
дает |
лучшее разделение |
|
н-бутиловых эфиров ТФА-аминокислот. Без такой обработки пик тирозина отсутствовал, а пик серина имел значительно меньшую интенсивность. Улучшение разделения было припи сано удалению следов воды, однако могло иметь значение и некоторое изменение поверхностной активности [43]. Причину невоспроизводимого элюирования производных (главным об разом основных аминокислот) часто относят за счет жидкой фазы [40], но в общем случае следует учитывать и роль носи теля [93]. Авторам статьи, например, при температуре до 300 °С
не удалось элюировать аргинин |
(триацетил-н-пропильное про |
изводное) с хромосорба G (в. к.), |
покрытого 1 или 3% OV-17; |
тем не менее это же производное на хромосорбе W с 3% OV-17 |
|
элюируется при 250 °С, причем |
единственным отличием яв |
ляется носитель. Мы считаем, что взаимодействие между жид кой фазой, носителем и разделяемыми веществами часто играет важную роль в разделении. Эти вопросы будут обсуждаться после рассмотрения жидких фаз.
2.4.7.2. Неподвижные фазы
Разнообразие имеющихся в настоящее время жидких фаз ГХ, многие из которых применялись для разделения производ ных аминокислот, ставит исследователя в затруднительное по ложение. В ряде работ [13, 14, 27, 29, 40] проведена оценка приблизительно 100 неподвижных фаз, включая силиконы, по верхностно-активные соединения, полиэфиры, полигликоли, ме таллоорганические соединения и многие другие. Стараясь выде лить наиболее характерные особенности, мы опустим подробно сти, касающиеся размеров колонок, температурных режимов, потоков газов-носителей и условий нанесения жидких фаз.
2.4.7.3. Силиконы
В общем случае с ростом полярности жидкой фазы разде ление улучшается. Как класс, силиконы являются наименее
ГАЗОВАЯ ХРОМАТОГРАФИЯ АМИНОКИСЛОг |
119 |
Рис. 2. ГХ-разделение к-пропиловых эфиров 12 N-ацетиламинокислот на ХЕ-60.
Колонка стеклянная в. |
д. 106 см • 3 мм; 1ж ХЕ-60 |
на носителе хромосорб G (в. к.); |
скорость потока |
газа-носнтеля N3 30 мл/мнн; |
100—220 °С, при 6 “С/мин. |
полярными фазами, поэтому не удивительно, что с их помощью часто не удавалось добиться удовлетворительного разделения алифатических аминокислот, для которых наблюдается тенден ция к близкому расположению пиков. Например, пики лейцина и изолейцина часто совпадают [27]. Для улучшения разделения использовали изотермический режим или режим с очень мед ленным программированием температуры, что ведет к увели чению продолжительности анализа. В этой группе наименее полярная жидкая фаза — это SE-30, а наиболее полярная — ХЕ-60. Метиловые эфиры ТФА-аминокислот разделяли на сме шанной неподвижной фазе (2,5% на дёзактивированном диато- порте-S), состоящей из ХЕ-60, QF-1 и MS-200 в соотношении 46, 27 и 27% по весу [30]. Сочетанием программирования тем пературы и изотермического режима удалось добиться хоро шего разделения 22 аминокислот, включая аргинин. На рис. 2 показано разделение н-пропиловых эфиров 12 аминокислот на
1% ХЕ-60.
120 |
ГЛАВА 2 |
Каталитическое отщепление лабильных групп (в особенно сти О-ТФА-серина, тирозина и оксипролина) не является проб лемой при работе на силиконах [13, 14, 27, 29]. Силиконовые фазы, по-видимому, обязательны для количественной ГХ арги нина, гистидина и цистина; это относится как к ацетильным, так и ТФА- и ТМС-производным.
2.4.7.4. Полиэфиры
Эти жидкие фазы по своей полярности располагаются между силиконами и полигликолями; они получили значитель ное распространение, однако приводят к посредственным ре зультатам. Обычно используются покрытия в интервале от 0,75 до 2% по весу, но иногда и больше. Из девяти исследовав шихся полиэфиров [27] наиболее полярным оказался БДС, а наименее полярным — НПГГ *. Выбор полиэфир^ диктуется не только разрешающей способностью, но и легкостью, с ко торой эти фазы каталитически разрушают дополнительно ацилированные аминокислоты. Чувствительность последних к де струкции на колонке приблизительно соответствует их устойчи вости к воде или метанолу, при этом наиболее чувствительны серин, цистеин и гистидин, а наибольшую устойчивость имеет треонин. Амиловый эфир N, О-ди-ТФА-серина не элюируется с БДС, НПГСб, НПГГ, ППСб и Hi-Eff-8B, а соответствующее производное треонина не удалось элюировать с последних двух фаз [27]. ТФА-цистеин и оксипролин разрушались на ряде полиэфиров (Hi-Eff-8B, ДЭГА, ДЭГС, ПЭГС, НПГГ и ППСб) [13]. Во всех вышеупомянутых работах использовался носитель силоцель С-22 с 5% жидкой фазы. От этих данных отличаются результаты Герке, получившего хроматографические пики н-бу тиловых эфиров ди-ТФА-серина, треонина, цистеина и оксипро лина на НПГСб и ДЭГС [41]. Маловероятно, чтобы расхожде ния были связаны с различием эфирных групп, поэтому для лучшей согласованности данных следует учесть различие в но сителях (хромосорб G или W), а также меньшее содержание жидкой фазы (0,5% НПГСб; 0,75% ДЭГС — 0,25% ЭГСС-Х).
При разделении 17 аминокислот .на НПГ-полиэфирах наи большая эффективность колонки наблюдалась в случае дикарбоновой кислоты с 10 углеродными атомами, т. е. с НПГСб [43]. Тем не менее самым ценным полиэфиром для разделения н-бутиловых эфиров ТФА-аминокислот является, вероятно, ЭГА, обладающий повышенной термической устойчивостью [43, 118]. Для этих производных наблюдались сдвиги пиков при увеличении содержания ЭГА на хромосорбе W от 0,5 до 2%
* С ок р ащ ен и я см . в р а зд . 2.6.
Температ ура, °С
------ 6°С/мин-------
Рис. 3. ГХ-разделение метиловых (Л), этиловых (£) и н-пропиловых (В) эфиров N-ацетиламинокислот на полиэфирной фазе.
Колонки стеклянные, в. д. 106 см ■3 мм. 0,79« ДЭГС на носителе хромосорб W (в. к.); скорость потока газа-носителя N, 30 мл/мнн; 100—200 °С, при 6°С/мнн; опыт качествен ный. Пики пролива и треонина однозначно не отнесены.
