Добавил:
Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:

книги из ГПНТБ / Новые методы анализа аминокислот, пептидов и белков

..pdf
Скачиваний:
19
Добавлен:
23.10.2023
Размер:
26.6 Mб
Скачать

112

ГЛАВА 2

 

образованию соли,

получалось количественно при

нагрева­

нии с трифторуксусным ангидридом при 140—150°С

[29, 115].

В этих условиях полностью ацилируется и триптофан [115]. Меньшая ацилирующая способность уксусного ангидрида не позволяет проводить ацетилирование хлоргидрата гуанидиниевой группы в аналогичных условиях. Тем не менее мы получили пригодное для ГХ ацетильное производное, нейтрализовав хлоргидрат я-пропилового эфира перед ацетилированием карбона­ том щелочного металла или, что еще лучше, дауэксом-1 (в ОН~-форме) в абсолютном я-пропаноле. Данные анализа произ­ водных аргинина и гистидина на носителе хромосорб W (высоко­ качественный, фирма «Johns-Manville») с 3% жидкой фазы OV-17 приведены на рис. 1. На хромосорбе G (в. к.) с той же жидкой фазой не удается получить пик аргинина [23]. Производ­ ные аргинина и гистидина не будут элюироваться ни с одного из носителей, покрытых карбоваксом.

2.4.4.Превращение аргинина в орнитин и гистидина

васпарагиновую кислоту

Вполне очевидно, что для смесей, содержащих различные неизвестные аминокислоты, желательно иметь стандартные условия этерификации и ацилирования. До сих пор оказывалось невозможным ацетилировать аргинин и гистидин в тех же условиях, что и другие аминокислоты. Для решения этой проб­ лемы мы избрали превращение аргинина в орнитин и гистидина в аспарагиновую кислоту. Обе эти реакции специфичны, что позволяет использовать их для сложных смесей аминокислот

Таблица 2

РАСЩЕПЛЕНИЕ АРГИНИНА ДО МОЧЕВИНЫ ( + ОРНИТИН) АРГИНАЗОИ а)

Аргннин-HCl, мкг

Добавки

Количество полученной

Степень

мочевины, мкг

(211 мкг = 1 мкмоль)

амннокнслот,

(теоретически

превращения,

 

мкмоль

60 мкг=1 мкмоль)

%

-211

7 6

58.60

99

211

62,59

100

211

И

 

60

100

211

21

 

57

95

211

1

8

58

97

211

2 в

60

100

211

З 8

58

97

Во всех случаях прибавляли 20 мкг фермента. Мочевину определяли колоримет­ рически с диацетилмоноксим-тносемикарбазилным реагентом по калибровочному графику.

® По I молю пролива, треонина, серина, аспарагнновоА и глутаминовой кислот, метионина и фенилаланина.

8 Лизни.

ГАЗОВАЯ ХРОМАТОГРАФИЯ АМИНОКИСЛОТ

113

и получать производные обычным образом в стандартных условиях.

Превращение аргинина в мочевину и орнитин контролиро­ валось по образованию мочевины после активирования арги­ назы сульфатом марганца при pH 7,8. Для активации аргиназы

(«Worthington Biochemical») 1 мг фермента инкубировали при

37 °С в течение 4 ч с 0,5 мл 0,1 М ацетата аммония при pH 7,8 и 0,5 мл 0,5 М MnSC>4. Перед употреблением раствор активиро­

ванного

фермента

разбавляли в отношении 1: 10 дистиллиро­

ванной

водой (pH

которой доводили аммиаком

до

значения

9,5) и

прибавляли

0,2 мл полученного раствора

к

1 мкмолю

хлоргидрата аргинина в 0,5 мл ацетата аммония с той же ве­ личиной pH [23]. Приведенные в табл. 2 экспериментальные данные свидетельствуют о количественном ферментативном расщеплении даже в присутствии большого избытка других аминокислот.

Озон вызывает расщепление С= С-связи в имидазолах [76], вследствие чего гистидин превращается в аспарагиновую кис­

лоту. Методика

авторов

 

этой

главы подробно приведена

в разд. 2.7.4.

 

 

СН—Nv,

 

 

 

II

/СН

0I

/ \

)0

\

" с н

0

\

/

 

/

С—NH'

 

 

С—NH-'

с о о н

|

03

 

1

 

1

1

 

 

— * с н 2

с н 2

— >

 

с н 2

 

1

 

 

1

 

 

1

c h n h 2

 

 

c1h n h 2

c1h n h 2

(Ь о н

 

 

с о о н

 

с о о н

ГИСТИДИН

 

030НИД

 

аспарагиновая

 

 

 

 

 

 

кислота

Для исследования количественной стороны реакции озон (полученный при высоковольтном разряде в токе чистого кис­ лорода) пропускали над 10-7 моля гистидина в 0,1 н. НС1

втечение 15 мин перед превращением в N-ацетил-н-пропильное производное (разд. 2.4.8). Образующуюся аспарагиновую кис­ лоту растворяли в 100 мкл этилацетата и 1 мкл (теоретически соответствующий 10'9 моль) подвергали газохроматографиче­ скому анализу. Степень превращения гистидина в аспараги­ новую кислоту, рассчитанная по отношению к площади пика 10-9 моль аутентичного образца аспарагиновой кислоты, оказа­ лась равной 96%. Для количественной оценки смесей, содер­ жащих аспарагиновую кислоту и гистидин, хроматографируют озонированный и неозонированный образцы. При этом разница

вмолярном содержании аспарагиновой кислоты служит мерой количества гистидина в смеси.

114

ГЛАВА 2

2.4.5.Устойчивость ацилированных аминокислот

Склонность к деацилированию у ацилзамещенных О-, S-, дополнительных NH2, имидазольной и гуанидиновой групп на­ много выше, чем у a-NH2-rpynn, причем ТФА-производные в этом отношении намного чувствительнее соответствующих аце­ тильных соединений. Эти свойства имеют решающее значение при выборе жидкой фазы и носителя для ГХ. Было показано, что в водной среде ди-ТФА-серин быстро превращается в мо­ но (N)-ацильное производное [144]. При достаточно длительном воздействии N-ТФА-серин в конце концов снова превращается в нативную аминокислоту, что, как полагают, связано с N—>0 ацильной миграцией. Ди-ТФА-производные оксипролина, сери­ на, треонина, тирозина и цистеина тоже быстро разлагаются до N-ТФА-соединений в метаноле, воде и даже в некоторых тщательно высушенных растворителях (бензол, хлористый эти­ лен и н-амилтрифторацетат) [28, 84, 99]. При этом наиболее лабильны производные тирозина, а наиболее устойчивы (3-0- ТФА-группировка треонина и производное по индольному атому азота триптофана. Наблюдаемые в ГХ метанольных рас­ творов метиловых эфиров ТФА-аминокислот большие времена удерживания для серина и тирозина согласуются с их разло­ жением до свободных ОН_-форм. Еще одним доказательством лабильности О- и S-ТФА-тирозина и цистеина служит их спо­ собность к ацилированию к-амилового эфира изолейцина. Трео­ нин, серин и оксипролин в этом отношении были неактивны [28]. н-Бутиловый эфир ди-ТФА-гистидпна оказалось целесооб­ разным хроматографировать, полностью разлагая его бутано­ лом на газохроматографической колонке до моно-ТФА-произ- водного [43] (см. также разд. 2.7.3).

Несмотря на утверждение о том, что этерификация раство­ ром НС1 в пропаноле может проводиться после ацетилирования аминокислот уксусным ангидридом в уксусной кислоте [52], этот метод применим исключительно к аминокислотам, имею­ щим только а-ЫН2-группы. Мы обнаружили, что при этерифи­ кации-смесью пропанол — НС1 О-ацетилсерин, -треонин, -тирозин и e-NH-ацетиллизин полностью разрушаются (это относится к ТФА-метиловым эфирам [25]). Нами было также показано, что в отличие от ди-ТФА-производных н-пропиловые эфиры диацетиламинокислот (за исключением гистидина) относи­ тельно устойчивы в присутствии спирта (табл. 3).

В безводных условиях эфиры ТФА- и ацетиламинокислот имеют хорошую термическую устойчивость (+200°С) [28, 144], тем не менее металлические инжекторы, по-видимому, вызы­ вают разложение О-ТФА-производных, в особенности производ­ ных тирозина и треонина [41, 78]. Соответствующие ацетильные

ГАЗОВАЯ ХРОМАТОГРАФИЯ АМИНОКИСЛОТ

115

Таблица 3

н а й д е н н о е с п о м о щ ь ю гх п р о ц е н т н о е о т н о ш е н и е

 

 

к-ПРОПИЛОВЫХ э ф и р о в а ц е т и л а м и н о к и с л о т ,

о с т а в ш и х с я

п о с л е

 

ВЫДЕРЖИВАНИЯ с 20% МЕТАНОЛА в ЭТИЛАЦЕТАТЕ;

 

 

100К ОТНОСИТСЯ К НАЧАЛЬНОМУ ВРЕМЕНИ

 

 

 

Количественное отношение к-пропиловых эфиров

Время обработки

 

ацетиламинокислот, %

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Thr

Ser

Туг

Lys

Asp

Val

 

100

100

98

98

100

100

2

100

101

100

98

99

98

18

103

98

100

97

101

97

3 часа в 100%-ном метаноле

102

98

96

97

99

97

Как внутренний стандарт вводилось производное норлейцпна.

 

 

 

Условия ГХ приведены на рис.

4.

 

 

 

 

 

соединения намного более устойчивы [78]. Аналогичные разли­ чия в устойчивости наблюдаются в присутствии полярных жид­ ких фаз (см. разд. 2.4.7).

2.4.6.Выбор эфиров ациламинокислот для ГХ*

Выбор определенного производного для газохроматографи­ ческого анализа диктуется рядом взаимозависимых требований: простотой приготовления, высоким выходом, устойчивостью и летучестью производных, а также наличием колонок и хрома­ тографических условий, пригодных для их разделения.

Несколькими группами авторов проведено сравнение лету­ честей различных ациламинокислот и их эфиров. Были изме­ рены температуры плавления [142] и, что более существенно, температуры возгонки [138] и давления паров [140] ряда N-ТФА-аминокислот; в вакууме (0,02—0,06 мм ртутного столба) некоторые ТФА-аминокислоты сублимировались при темпера­ туре от 70 до 80 °С (тирозин, триптофан и лизин составляли исключение), тогда как соответствующие метиловые эфиры воз­ гонялись приблизительно на 40 °С ниже. В газохроматографи­ ческом исследовании наиболее значительной является сравни­ тельная оценка времен удерживания или температур для раз­ личных производных, хроматографированных в одинаковых условиях. При увеличении длины цепи этерифицирующего спирта возрастает время удерживания [83]; с другой стороны, метиловый и н-бутиловый эфиры N-ТФА-аминокислот более летучи, чем соответствующие N-ацетильные производные [78, 83]. (Выбранное производное должно обладать достаточной-

* С м , р а з д . 2 .7 .2 и 2.7,5 .

116 ГЛАВА 2

летучестью, чтобы элюироваться в рамках программы времени и температуры, определяемой жидкой фазой; слишком высокая летучесть может привести к скоплению пиков в начальной ча­ сти хроматограммы, а также к несомненным механическим по­ терям, если конечной стадией получения производного является упаривание.)

Хотя Герке выбрал н-бутиловые эфиры [78], на основании количественного измерения потерь при упаривании эфиров N-ТФД-аланина было сделано заключение, что достоверные результаты можно получить только с «-амиловыми производ­ ными [27]. Потерь метиловых эфиров N-ТФА-аминокислот уда­ валось избежать только при упаривании избытка реагентов при низкой температуре [30]. По предварительным данным, по­ лученным в лаборатории авторов, метиловые, этиловые и н-пропиловые эфиры ацетилированных аминокислот пригодны для газохроматографического разделения в интервале темпе­ ратур 100—240 °С. Этерификация проходит быстро, и при про­ стой двухстадийной методике получения ацетил-н-пропиловых эфиров [23] нет потерь, связанных с упариванием (табл. 4). По этим причинам, а также из-за легкости разделения на покры­ тых карбоваксом хромосорбах G или W (высококачественные), мы остановили свой выбор на ацетил-н-пропиловых эфирах

(см. разд. 2.4.7).

Ацетилированные О- и S-группы сравнительно устойчивы. Для ацетилирования дихлоргидрата эфира аргинина ацилирующей способности уксусного ангидрида недостаточно. Необхо­

димо сначала получить свободное основание

обессоливанием

на анионообменной смоле или нейтрализацией

(разд. 2.4.3.5).

Из-за высокой летучести, связанной с ТФА-группой, во избе­

жание потерь при

упаривании

необходимо

применять

эфиры

 

 

 

 

 

Таблица 4

определяемый с помощью ГХ ВЫХОД к-ПРОПИЛОВЫХ ЭФИРОВ

 

АЦЕТИЛАМИНОКИСЛОТ. ОСТАЮЩИХСЯ ПОСЛЕ

 

 

КОНТРОЛИРУЕМОГО УПАРИВАНИЯ

 

 

Время

Т °с

Выход к-пропиловых эфиров аминокислот,

К

 

 

 

 

 

упаривания, мин

Ala

Val

Gly

Ser

Glu

 

 

5-

30

96

99

94

98

100

20'

30

73

81

80

97

99

5

90

32

56

44

100

100

20

90

< 10

< 10

<10

53

96

После обработки в каждую пробирку добавляли внутренний стандарт норлейцин. Испаряющий газ: сухой азот, пропускаемый со скоростью 1200 мл/мин через прибор, используемый обычно для получения производных (рис. 8, разд. 2. 4. 8).

ГАЗОВАЯ ХРОМАТОГРАФИЯ АМИНОКИСЛОТ

117

высших спиртов. Для этерификации бутанолом или «-амило­ вым спиртом требуется продолжительное время, что же ка­ сается надежности, то полное трифторацетилирование может быть достигнуто с трифторуксусным ангидридом при 150 °С. ТФА-производные менее устойчивы, чем ацетильные, и в раз­ деле 2.4.7 обсуждаются проблемы, возникающие в результате колоночной деструкции О- и S-ТФА-производных.

2.4.7.Носители, жидкие фазы и способы разделения эфиров ациламинокислот методом ГХ*

2.4.7.1.Носители

Наиболее широко используемыми носителями для насадоч­ ных колонок были специально приготовленные и сортированные диатомитовые земли. Поверхность этих материалов модифициро­ вали различными способами, но, по общему мнению, два вида обработок особенно улучшали ее свойства: промывка сильными минеральными кислотами для удаления ионов металлов и «дез­ активирование» поверхности силанизирующими реагентами. На поверхности кремнийсодержащих материалов имеются ак­ тивные центры двух типов: (а) протонодонорная силанольная (—Si—ОН) группа и (б) протоноакцепторная силоксановая (—Si—О—Si—) группа. Активность первой можно блокиро­ вать реакцией с ГМДС или ДМХС.

— Si—О-Si-

Si—О— S1-

 

1

|

 

 

 

1

1

4

4

 

НО

ОН

 

+

\

/

+ 2 НС1

С 1

С1

/

/

/

\

3

\

СНз

СН

СНз

СНз

— Si—О— S i-

 

 

 

 

 

 

А1

Ан + НС1

 

СНз- S i —СНз

 

 

 

1

 

 

 

 

С 1

 

 

— Si—О - ■ Si—

 

— Si—

О—Si—

 

1

 

1

I

4

1

 

1

1

он

О

ОН

1

+ СН3ОН

|

+

СНз—Si—сн,9

СН8—S i- -СНз

I

снг

* С м . т а к ж е р а зд . 2 .7.1.

118 ГЛАВА 2

Поверхности носителей, подвергшихся такой обработке, хими­ чески менее активны, чем у необработанных носителей.

По способности к разделению м-пропиловых эфиров ацетиламинокислот без образования хвостов различные носители можно расположить в ряд, который приблизительно соответ­ ствует степени дезактивирования поверхности. С 0,5—1% карбовакса 6М мы получили следующий ряд в порядке воз­

растания эффективности: хромосорб W

(п. к.) < W

(п. к.,

ДМХС) < газхром Q <

хромосорб W или G (п. к., ДМХС, вы­

сококачественный) .

 

 

 

 

Герке и сотрудники показали, что термическая обработка

несиланизированного

хромосорба G

при

температуре

450—

600 °С, проводящаяся

до нанесения,

дает

лучшее разделение

н-бутиловых эфиров ТФА-аминокислот. Без такой обработки пик тирозина отсутствовал, а пик серина имел значительно меньшую интенсивность. Улучшение разделения было припи­ сано удалению следов воды, однако могло иметь значение и некоторое изменение поверхностной активности [43]. Причину невоспроизводимого элюирования производных (главным об­ разом основных аминокислот) часто относят за счет жидкой фазы [40], но в общем случае следует учитывать и роль носи­ теля [93]. Авторам статьи, например, при температуре до 300 °С

не удалось элюировать аргинин

(триацетил-н-пропильное про­

изводное) с хромосорба G (в. к.),

покрытого 1 или 3% OV-17;

тем не менее это же производное на хромосорбе W с 3% OV-17

элюируется при 250 °С, причем

единственным отличием яв­

ляется носитель. Мы считаем, что взаимодействие между жид­ кой фазой, носителем и разделяемыми веществами часто играет важную роль в разделении. Эти вопросы будут обсуждаться после рассмотрения жидких фаз.

2.4.7.2. Неподвижные фазы

Разнообразие имеющихся в настоящее время жидких фаз ГХ, многие из которых применялись для разделения производ­ ных аминокислот, ставит исследователя в затруднительное по­ ложение. В ряде работ [13, 14, 27, 29, 40] проведена оценка приблизительно 100 неподвижных фаз, включая силиконы, по­ верхностно-активные соединения, полиэфиры, полигликоли, ме­ таллоорганические соединения и многие другие. Стараясь выде­ лить наиболее характерные особенности, мы опустим подробно­ сти, касающиеся размеров колонок, температурных режимов, потоков газов-носителей и условий нанесения жидких фаз.

2.4.7.3. Силиконы

В общем случае с ростом полярности жидкой фазы разде­ ление улучшается. Как класс, силиконы являются наименее

ГАЗОВАЯ ХРОМАТОГРАФИЯ АМИНОКИСЛОг

119

Рис. 2. ГХ-разделение к-пропиловых эфиров 12 N-ацетиламинокислот на ХЕ-60.

Колонка стеклянная в.

д. 106 см • 3 мм; 1ж ХЕ-60

на носителе хромосорб G (в. к.);

скорость потока

газа-носнтеля N3 30 мл/мнн;

100—220 °С, при 6 “С/мин.

полярными фазами, поэтому не удивительно, что с их помощью часто не удавалось добиться удовлетворительного разделения алифатических аминокислот, для которых наблюдается тенден­ ция к близкому расположению пиков. Например, пики лейцина и изолейцина часто совпадают [27]. Для улучшения разделения использовали изотермический режим или режим с очень мед­ ленным программированием температуры, что ведет к увели­ чению продолжительности анализа. В этой группе наименее полярная жидкая фаза — это SE-30, а наиболее полярная — ХЕ-60. Метиловые эфиры ТФА-аминокислот разделяли на сме­ шанной неподвижной фазе (2,5% на дёзактивированном диато- порте-S), состоящей из ХЕ-60, QF-1 и MS-200 в соотношении 46, 27 и 27% по весу [30]. Сочетанием программирования тем­ пературы и изотермического режима удалось добиться хоро­ шего разделения 22 аминокислот, включая аргинин. На рис. 2 показано разделение н-пропиловых эфиров 12 аминокислот на

1% ХЕ-60.

120

ГЛАВА 2

Каталитическое отщепление лабильных групп (в особенно­ сти О-ТФА-серина, тирозина и оксипролина) не является проб­ лемой при работе на силиконах [13, 14, 27, 29]. Силиконовые фазы, по-видимому, обязательны для количественной ГХ арги­ нина, гистидина и цистина; это относится как к ацетильным, так и ТФА- и ТМС-производным.

2.4.7.4. Полиэфиры

Эти жидкие фазы по своей полярности располагаются между силиконами и полигликолями; они получили значитель­ ное распространение, однако приводят к посредственным ре­ зультатам. Обычно используются покрытия в интервале от 0,75 до 2% по весу, но иногда и больше. Из девяти исследовав­ шихся полиэфиров [27] наиболее полярным оказался БДС, а наименее полярным — НПГГ *. Выбор полиэфир^ диктуется не только разрешающей способностью, но и легкостью, с ко­ торой эти фазы каталитически разрушают дополнительно ацилированные аминокислоты. Чувствительность последних к де­ струкции на колонке приблизительно соответствует их устойчи­ вости к воде или метанолу, при этом наиболее чувствительны серин, цистеин и гистидин, а наибольшую устойчивость имеет треонин. Амиловый эфир N, О-ди-ТФА-серина не элюируется с БДС, НПГСб, НПГГ, ППСб и Hi-Eff-8B, а соответствующее производное треонина не удалось элюировать с последних двух фаз [27]. ТФА-цистеин и оксипролин разрушались на ряде полиэфиров (Hi-Eff-8B, ДЭГА, ДЭГС, ПЭГС, НПГГ и ППСб) [13]. Во всех вышеупомянутых работах использовался носитель силоцель С-22 с 5% жидкой фазы. От этих данных отличаются результаты Герке, получившего хроматографические пики н-бу­ тиловых эфиров ди-ТФА-серина, треонина, цистеина и оксипро­ лина на НПГСб и ДЭГС [41]. Маловероятно, чтобы расхожде­ ния были связаны с различием эфирных групп, поэтому для лучшей согласованности данных следует учесть различие в но­ сителях (хромосорб G или W), а также меньшее содержание жидкой фазы (0,5% НПГСб; 0,75% ДЭГС — 0,25% ЭГСС-Х).

При разделении 17 аминокислот .на НПГ-полиэфирах наи­ большая эффективность колонки наблюдалась в случае дикарбоновой кислоты с 10 углеродными атомами, т. е. с НПГСб [43]. Тем не менее самым ценным полиэфиром для разделения н-бутиловых эфиров ТФА-аминокислот является, вероятно, ЭГА, обладающий повышенной термической устойчивостью [43, 118]. Для этих производных наблюдались сдвиги пиков при увеличении содержания ЭГА на хромосорбе W от 0,5 до 2%

* С ок р ащ ен и я см . в р а зд . 2.6.

Температ ура, °С

------ 6°С/мин-------

Рис. 3. ГХ-разделение метиловых (Л), этиловых (£) и н-пропиловых (В) эфиров N-ацетиламинокислот на полиэфирной фазе.

Колонки стеклянные, в. д. 106 см ■3 мм. 0,79« ДЭГС на носителе хромосорб W (в. к.); скорость потока газа-носителя N, 30 мл/мнн; 100—200 °С, при 6°С/мнн; опыт качествен­ ный. Пики пролива и треонина однозначно не отнесены.

Соседние файлы в папке книги из ГПНТБ