- •6. Схема биосинтеза пиримидиновых нуклеотидов в тканях.
- •7. Распад пиримидиновых нуклеотидов в тканях.
- •1.Матричные биосинтезы в организме: репликация, репарация (биосинтез дНк); транскрипция (биосинтез м-рнк, р-рнк, т-рНк). Трансляция (биосинтез белка). Общая характеристика.
- •2. Pепликация днк, характеристика процесса, механизм, субстраты, этапы, ферменты, биологическое значение
- •3. Репарация днк, характеристика, субстраты, этапы, ферменты, биологическое значение.
- •4. Транскрипция, биосинтезы м-рнк, р-рнк, т-рнк. Этапы, ферменты, субстраты, биологическое значение. Регуляция транскрипции. Биологическое значение.
- •5. Генетический код и его свойства.
- •6. Подготовка аминокислот к биосинтезу белка: характеристика и функции адаптационных молекул, синтез аминоацил-т-phk Субстратная специфичность
- •9. Этапы трансляции (биосинтеза белка): инициация, элонгация, терминация. Субстраты, ферменты, факторы, энергия
- •10. Посттрансляционные изменения белков.
- •1. Биологическое значение апоптоза. Роль белков р53 и всl-2 как регуляторов апоптоза.
- •2. Фазы апоптоза. Биохимические маркеры.
- •Сигнальная фаза
- •Эффекторная фаза
- •Деградационная фаза
- •3. Характеристика путей сигнальной фазы апоптоза: рецептторзависимый путь.
- •4. Митохондриальный сигнальный путь
- •5. Эффекторная фаза. Каспазный каскад.
- •6. Дополнительные эффекторы апоптоза.
- •7. Значение теломеров для жизнедсятельности клеток, Функции теломер. Лимит Хайфлика.
- •8. Теломераза и теломеразный комплекс.
- •9. Роль теломеразы в иммортализации.
- •10, Физические, химические и бнологические агенты, вызываюцие возникновение опухолей.
- •11.Характеристика опухолевых клеток.
- •12. Онкогены, протоонкогены, гены-супрессоры опухолей.
- •13. Механизмы неопластической трансформации. Инвазия и метастазировиние.
- •14. Понятие о пцр. Применение метода пцр в лабораторной практике.
- •15. Основные этапы проведения пцр. Понятие о репликации и амплификации.
- •16. Основные отличия раковых клеток от здоровых. Причины аномалий клеток Понятие о митозе и митогенах.
- •18. Иммунюконьюгаты, Всктор иммуноконогата. Вещества, используемые в качестве вскторов адресной доставки. Ренстторно-овосредованный эндоцитоз.
- •19. Эпидермальный фактор роста (эфр) и а-фетопротсин (афп). Преимущества эфр и афп при и использовании в качестве вскторов. Репепторы эфр и афп и и характеристика.
- •20. Тералевтические противоопухолевые компоненты иммуноконьюгатов на оспове МоА т, эфр, афп.
- •21. Фтазощианины. Понятие о антисмысловых нуклеотилах.
3. Репарация днк, характеристика, субстраты, этапы, ферменты, биологическое значение.
Репарация ошибок и повреждений ДНК– восстановление ДНК, основанное на том, что ДНК - двухцепочечная молекула. Если нуклеотидная последовательность одной из двух цепей оказывается повреждённой (изменённой), информацию можно восстановить, так как вторая (комплементарная) цепь сохранена.
Процесс репарации происходит в несколько этапов: 1. Выявление нарушений комплементарности цепей ДНК. 2. Устранение некомплементарного нуклеотида или только основания 3. Восстановление целостности цепи по принципу комплементарности.
Количество этапов и ферментов, участвующих в его устранении, варьирует в зависимости от типа повреждения. Очень редко происходят повреждения, затрагивающие обе цепи ДНК, т.е. нарушения структуры нуклеотидов комплементарной пары. Такие повреждения в половых клетках не репарируются, так как для осуществления сложной репарации с участием гомологичной рекомбинации требуется наличие диплоидного набора хромосом. Все виды повреждений ДНК условно можно разделить на два вида: спонтанные и индуцируемые.
I. Спонтанные повреждения ДНК происходят спонтанно (без участия каких-либо повреждающих факторов, например в результате ошибок репликации, дезаминирования нуклеотидов, депуринизации).
Точность репликации ДНК очень велика, но примерно один раз на 105 - 106 нуклеотидных остатков происходят ошибки спаривания, тогда вместо пары нуклеотидов А-Т, G-С в дочернюю цепь ДНК оказываются включёнными нуклеотиды, некомплементарные нуклеотидам матричной цепи. Однако ДНК-полимеразы δ, ε способны после присоединения очередного нуклеотида в растущую цепь ДНК делать шаг назад (в направлении от 3'- к 5'- концу) и вырезать последний нуклеотид, если он некомплементарен нуклеотиду в матричной цепи ДНК. Этот процесс исправления ошибок спаривания (или коррекция) иногда не срабатывает, и тогда в ДНК по окончании репликации остаются некомплементарные пары, тем более, что ДНК-полимераза а лишена корректирующего механизма и «ошибается» чаще, чем другие полимеразы.
II. Индуцируемые повреждения возникают в ДНК в результате воздействия разнообразных мутагенных факторов как радиационной, так и химической природы.
Образование димеров пиримидиновых оснований
Под действием УФО двойная связь между С5 и С6 атомами углерода в составе пиримидиновых оснований (тимине и цитозине) может разрываться. Атомы углерода остаются связанными одной связью. Расстояние между параллельными плоскостями оснований полинуклеотидной цепи, в которых произошёл разрыв, равно примерно 3,4 . Это расстояние позволяет освободившимся валентностям между С-С атомами пиримидиновых оснований, расположенных последовательно в цепи ДНК, сформировать циклобутановое кольцо. В зависимости от того, какие основания соединены в димер, их называют димерамитимина, цитозина или тиминцитозиновымидимерами.
Удаление пиримидиновых димеров происходит под действием фотолиазы. Фермент расщепляет вновь образовавшиеся связи между соседними пиримидиновыми основаниями и восстанавливает нативную структуру. В фотолиазе есть участок, либо сам поглощающий фотоны (в синей части спектра), либо связывающийся с кофакторами, адсорбирующими свет. Таким образом, свет активирует фотолиазу, которая распознаёт димеры в облучённой ДНК, присоединяется к ним и разрывает возникшие между пиримидиновыми кольцами связи. После этого фермент отделяется от ДНК.
