- •Т.Б.Лисицкая методы изучения морфологии и цитологии микромицетов
- •1 Цель работы
- •2 Приборы и материалы
- •3 Содержание работы
- •3.1 Устройство светопольного микроскопа
- •3.2 Основные технические характеристики микроскопа
- •3.3 Правила микроскопирования
- •4 Оформление результатов работы
- •5 Контрольные вопросы
- •3.2 Отбор культур с поверхности агаризованной питательной среды
- •3.3 Отбор культуры микроорганизмов из жидкой среды
- •3.4 Посев микроорганизмов
- •Посев микроорганизмов петлёй
- •3.4.1.1 Посев микроорганизмов петлёй на скошенный агар
- •3.4.1.2 Посев микроорганизмов петлёй в чашку Петри
- •Посев микроорганизмов пипеткой
- •4 Оформление результатов работы
- •5 Контрольные вопросы
- •3.2 Приготовление прижизненных препаратов
- •3.2.1 Приготовление препарата "раздавленная" капля
- •3.2.2 Приготовление препарата "висячая" капля
- •3.3 Приготовление фиксированных препаратов
- •4 Оформление результатов работы
- •5 Контрольные вопросы
- •1 Цель работы
- •Приборы и материалы
- •3 Содержание работы
- •3.1 Типы гиф грибов
- •3.2 Типы мицелия
- •3.3 Морфология колонии мицелиальных грибов
- •1. Признаки, определяемые без микроскопа:
- •2. Признаки, изучаемые с помощью микроскопа:
- •3.4 Одноклеточный (дрожжевидный) таллом
- •4 Оформление результатов работы
- •5 Контрольные вопросы
- •1 Цель работы
- •2 Приборы и материалы
- •Содержание работы
- •3.1 Строение клетки грибов
- •3.7.2 Окраска полифосфатов по методу Омелянского
- •3.7.3 Выявление полифосфатов в вакуолях
- •4 Оформление результатов работы
- •5 Контрольные вопросы
- •1 Цель работы
- •2 Приборы и материалы
- •Содержание работы
- •4 Оформление результатов работы
- •5 Контрольные вопросы
- •1 Цель работы
- •2 Приборы и материалы
- •Содержание работы
- •Оформление результатов работы
- •5 Контрольные вопросы
- •Содержание
- •Методы изучения морфологии и цитологии микромицетов
- •190013, Санкт-Петербург, Московский пр., 26
3.2 Типы мицелия
Мицелий, образованный ценоцитными гифами, называется ценоцитным или несептированным. Соответственно, если мицелий образован септированными гифами, то он называется септированным.
Часть мицелия гриба обычно находится над поверхностью субстрата, часть – внутри него. На этом основании различают воздушный и субстратный мицелий. Гифы, образующие субстратный и воздушный мицелий, морфологически различны. Гифы воздушного мицелия более тонкие, ровные, разветвлённые, а субстратные - более толстые, неровные, слабо ветвящиеся, сильно вакуолизированные. Для грибов, паразитирующих на растениях, воздушный мицелий называют экзофитным, субстратный – эндофитным.
3.3 Морфология колонии мицелиальных грибов
При попадании на подходящий субстрат происходит рост гиф гриба от исходного кусочка гифы или споры радиально во всех направлениях с образованием колонии. Гифы растут в длину своим кончиком – апексом. Рост гиф в длину практически не ограничен и лимитируется только наличием питательных веществ в среде. Скорость роста гиф мицелия зависит от многих факторов и обычно лежит в пределах от 0,1 до 6 мм/ч.
Различают 3 фазы роста колонии:
1 – начальная фаза – от прорастания споры или кусочка гифы ростовыми трубочками до появления ровного края, образованного радиально распространяющимися главными гифами и их многочисленными ответвлениями. Скорость роста гиф мицелия на этой фазе незначительная.
2 – фаза линейного роста – характеризуется постоянной максимально возможной в данных условиях скоростью роста мицелия.
3 – фаза старения колонии – скорость роста мицелия уменьшается до полного прекращения роста. Обычно это происходит в результате исчерпания питательных веществ.
Морфология колонии (культуральные признаки) используется для идентификации гриба. Морфология колонии грибов зависит от состава питательной среды, условий культивирования, возраста колонии. Поэтому при описании морфологии колонии обязательно указывают: состав среды, температуру культивирования, возраст культуры.
Для выращивания грибов и описания морфологии их колоний часто используют следующие среды:
Сусло-агар (3-40Б).
Агар с солодовым экстрактом (Malt Extract Agar), г/л:
солодовый экстракт –30,0
микологический пептон – 5,0
агар – 15,0.
3. Среда Чапека-Докса, г/л:
сахароза – 30,0; NaNO3 – 3,0; KH2PO – 1,0; MgSO4 х7H2O – 0,5; KCl – 0,5; FeSO4 [7H2O – 0,01; агар – 18,0.
4. Агар Ваксмана, г/л:
глюкоза – 10,0; пептон – 5,0; KH2PO – 1,0; MgSO4 х7H2O – 0,5; агар – 18,0.
Среда Ролана, г/л:
сахароза – 50,0; NН4NO3 – 3,0; KH2PO – 1,0; MgSO4 х7H2O – 1,0; CuSO4 х5H2O – 0,01; агар – 20,0.
Среда Сабуро, г/л:
микологический пептон –10,0; декстроза – 40,0; агар – 15,0.
При изучении морфологии колонии описывают следующие признаки:
1. Признаки, определяемые без микроскопа:
Форма колонии;
размер (диаметр);
ширина и строение края и центра колонии,
наличие субстратного мицелия,
характер поверхности колонии (гладкий, войлочный, бархатистый, паутинный, хлопьевидный);
цвет вегетативного мицелия и репродуктивных органов;
окраска обратной стороны колонии (инверсума);
выделение капелек жидкости на поверхности - эксудата;
выделение пигмента в среду.
