- •Введение
- •Порядок проведения занятия
- •Техника безопасности
- •Тема 1 изучение влияния различных температур на рост и развитие популяции микроорганизмов Цели занятия:
- •Вопросы и задания для самоподготовки
- •Оборудование и материалы:
- •Общие сведения
- •Ход работы
- •Тема 2 общий микробиологический анализ почвы Цель занятия:
- •Вопросы и задания для самоподготовки
- •Оборудование и материалы:
- •Общие сведения
- •Ход работы
- •Тема 3 Учет ризосферной и корневой микрофлоры растений Цель занятия:
- •Вопросы и задания для самоподготовки
- •1. Метаногенное сообщество
- •7. Роль микробных сообществ в глобальных изменениях
- •Оборудование и материалы:
- •Общие сведения
- •Ход работы
- •Тема 4 получение почечной культуры клеток морской свинки методом теплой трипсинизации Цель занятия:
- •Вопросы и задания для самоподготовки
- •Оборудование и материалы
- •Общие сведения
- •Номенклатура культур тканей и клеток
- •Культивирование первичных однослойных культур
- •Питательны среды сбалансированные солевые растворы, используемые для культивирования клеток
- •Ход работы
- •Общие сведения
- •Ход работы
- •Ход работы
- •Перечень вопросов к зачету по курсу экология микроорганизмов
- •Библиографический список Обязательная
- •Дополнительная
Тема 3 Учет ризосферной и корневой микрофлоры растений Цель занятия:
Учет ризосферной и корневой микрофлоры методом последовательных отмываний корней (по Теппер)
Вопросы и задания для самоподготовки
1. Метаногенное сообщество
2. Сульфидогенное сообщество
3. Аноксигенное фототрофное сообщество
4. Бактериальный окислительный фильтр и изотрофы
5. Аэробное сообщество
6. Сообщество и филогения
7. Роль микробных сообществ в глобальных изменениях
8. Эволюция микробных сообществ
9. Характеристика водоемов
10. Физико-химические свойства водной массы:
10.1 Температура
10.2 Свет
10.3 Солевой состав
10.4 Активная кислотность среды
11. Донные отложения
Оборудование и материалы:
Микроскоп биологический МБР-3 или аналогичный
Спиртовка.
Термостат.
Чашки Петри с плотной питательной средой.
Микробиологические петли.
Материалы (предметные стекла для микропрепаратов; пробирки стеклянные, вместимостью 15 мл; пипетки, вместимостью 1,0 и 5,0 мл с делениями).
Общие сведения
Если в цианобактериальных матах и наземных водорослевых корочках весь бактериальный комплекс сконцентрирован в 1-сантиметровом слое (хотя и разделенном на ярусы), то с появлением высших растений произошло пространственное разобщение бактерий в связи с их расселением по различным органам растений, иногда значительно удаленным друг от друга. Поскольку каждый из органов растений представляет особую эконишу по отношению к поселяющимся там микроорганизмам, были предложены термины, определяющие эти ниши. Филлосфера - надземные части растений, ризосфера - подземные, геммисфера - почки растений, спермосфера - семена. Впоследствии для более четкого отделения поверхности листьев и корней от зон, прилегающим к ним, появились термины "филлоплана" и "ризоплана" - под которым подразумевают только то, что находится непосредственно на поверхности корня и прикреплено к корню. Бактерии обнаруживаются также на цветах, ягодах, плодах и даже в сокотечении растений.
Освоение бактериями экониш, связанных с прижизненными выделениями растения, происходило не только путем поселения микроорганизмов на поверхности различных органов растений (эпифитное сообщество), но и путем внедрения их в ткани растений (эндофитное сообщество). В результате сформировались как взаимополезные для растений и микроорганизмов симбиотические связи, так и неблагоприятные для растений антагонистические связи, связанные с появлением фитопатогенов. Все микробиологические исследования ризосферы и филлосферы, начатые более полувека назад, связаны большей частью с прикладными аспектами микробиологии. Это поиск микроорганизмов - стимуляторов роста сельскохозяйственных растений, разработка биологических основ борьбы с фитопатогенами, изучение влияния почвенных условий на микробные сообщества и рост растений. В результате в качестве объектов исследования выбирались, главным образом, разнообразные культурные растения.
Ход работы
Учет ризосферной и корневой микрофлоры методом последовательных отмываний корней (по Теппер)
Из выкопанного монолита почвы с растениями стерильными пинцетом и ножницами отбирают 1 г молодых корней примерно одного диаметра с приставшими к ним частицами почвы.
Корни помещают в 1-ю колбу со 100 мл стерильной водопроводной воды и взбалтывают 2 мин. Стерильным пинцетом, корни извлекают и переносят последовательно во 2-ю, 3-ю и т. д. до 6-й пробирки, содержащие по 9 мл стерильной водопроводной воды. В каждой пробирке корни отмывают по 2 мин.
Из каждой пробирки отдельно стерильной пипеткой берут 0,1 мл отмывной воды, наносят на поверхность питательной пластины (МПА) и отдельным шпателем Дригальского, держа полуоткрытую чашку около пламени горелки, растирают. Чашки помещают в термостат при 28—30 °С, спустя 3—5 сут чашки анализируют.
По мере отмывания корней численность бактерий не убывает, а в ряде случаев — даже увеличивается. Это свидетельствует о тесной связи эпифитных микроорганизмов с тканями растений, для которых они служат естественным защитным барьером. В чашках с посевом из первых отмываний много крупных колоний спороносных форм бактерий — это могут быть и почвенные обитатели. По мере отмывания количество колоний бациллярных форм уменьшается и возрастает число мелкоточечных колоний неспорообразующих форм рода Pseudomonas.
I. Для определения количества микроорганизмов в ризосфере и на корнях суспензию из 1-й колбы (1-го отмывания) дополнительно взбалтывают 5 мин. Затем из нее готовят разведения, из которых делают поверхностные посевы. Посев производят из 4-го, 5-го и 6-го разведений. Для подсчета клеток в 1 г абсолютно сухой почвы ризосферы число колоний на чашке умножают на 10 (чтобы определить их число в 1 мл) и на степень разведения, а затем делят на массу абсолютно сухой почвы ризосферы.
II. При определении количества микроорганизмов на 1 г корней число колоний, выросших в чашке, умножают на 10 (чтобы определить их число в 1 мл), на степень разведения и делят на величину массы сырых корней.
III. Исследование морфологии колоний. По истечению 3-5 суток на чашках анализируют различные 3-5 колонии по следующей схеме:
- величина колонии – точечные (D – меньше 1 мм), мелкие (D – 1-2 мм), средние (D – 2-4 мм), и крупные (D – 4-6 мм и более).
- форма колонии - округлая, амебовидная, ризоидная.
- оптические свойства – прозрачная, матовая, флуоресцирующая, полупрозрачная (просвечивает), непрозрачная, блестящая.
- цвет – отмечают цвет колонии и выделение пигмента в среду.
- поверхность – гладкая, шероховатая, складчатая, бугристая.
- профиль – плоский, выпуклый, кратерообразный, врастающий в агар и т. д.
- край колонии – ровный, волнистый, лопастной, ризоидный и т. д.
- консистенция – маслянистая, тестообразная, вязкая, пленчатая.
При описании края и структуры колонии чашки Петри, не открывая, помещают под микроскоп дном вверх.
IV. Исследование морфологии микроорганизмов. Морфологию бактерий изучают из отдельной колонии (выбранных и проанализированный по схеме приведенной выше). Окрашивание производят по Граму. Окрашенный препарат микроскопируют, пользуясь объективами 40 и 90. Просматривая препараты, делают зарисовки микроорганизмов, обращая внимание на форму, взаимное положение клеток и на соотношение размеров бактерий при разном увеличении микроскопа; определяют отношение к окраске по Граму. Подсчитывают количество колоний на чашке.
Материалы, представляемые в отчет по лабораторной работе
1. Описать последовательность проведения работ
2. Результаты работы записать.
3. Изложить выводы по работе.
