- •1.Структура хирургического стационара .Принципы организации работы.
- •Особенности организации хирургического отделения:
- •2.Антисептика -определение.
- •Эмпирический период
- •Долистеровская антисептика
- •3.Антисептика листера,её сущность и значение в хирургии
- •Возникновение асептики
- •Современная антисептика
- •4.Механическая антисептика
- •5.Физическая антисептика
- •6.Химическая антисептика -галоиды
- •7.Химическая антисептика - окислители
- •8.Химическая антисептика -красители
- •9.Химическая антисептика-соли тяжёлых металлов
- •10.Пути и способы применения антисептиков
- •11.Определение и сущность биологической антисептики
- •12.Осложнения биологической антисептики(анафилактический шок,кандидоз),их профилактика и лечение.
- •13.Источники инфекции в хирургии.Классификация
- •14.Определение асептики.Профилактика воздушно-капельной инфекции.
- •15.Виды уборок в операционных и перевязочных Виды уборки
- •16.Стерилизация перевязочного материала, режим.
- •Способы контроля стерильности
- •17.Методы стерилизации хирургического инструментария и шприцов.
- •18.Способы стерилизации перчаток.Типы укладок биксов.Контроль за стерильностью
- •19.Методы стерилизации оптических приборов,эндоскопов
- •20.Современные способы обработки рук хирурга.(механический ,первомуром,хлоргексидином)
- •21.Способы обработки операционного поля
- •22.Меры профилактики пролежней
- •23.Катетеризация мочевого пузыря.Показания.Техника.
- •Техника введения катетера
- •Катетеризация у женщин
- •Катетеризация у мужчин
- •Осложнения
- •24.Методы очищения кишечника(виды клизм ,показания,техника).Техника промывания желудка.
- •I и II пальцами левой руки раздвигаем ягодицы, а правой рукой осторожно вводим газоотводную трубку в прямую кишку на 15—20 см.
- •I и II пальцами левой руки раздвигаем ягодицы, а правой рукой осторожно вводим слепой конец зонда в кишечник на глубину 30—40 см.
- •26.Правила и техника подачи увлажнённого воздуха.
- •Показания
- •Противопоказания
- •27.Как помочь больному при рвоте
- •28.Содержание санитарно-охранительного режима в хирургических стационарах.
- •29.Что такое эвентрация?уход за больными при эвентрации.
- •30.Положение больных в постели после операции
- •31.Объём мероприятий по уходу за больными накануне операции
- •32.Методы профилактики тромбоэмболических осложнений после операций
- •33.Признаки клинической и биологической смерти
- •Биологическая смерть
- •34.Контроль за эффективностью реанимации
- •35.Доврачебная реанимация одним человеком
- •Суть и алгоритм массажа
- •Техника проведения закрытого массажа сердца
- •Ошибки при проведении закрытого массажа сердца
- •37.Способы обеспечения проходимости дыхательных путей
- •38.Доврачебная реанимация несколькими людьми
- •39.Способы проведения ивл
- •Техника проведения ивл методом «рот в рот»
- •Техника проведения ивл методом «рот в нос»
- •Типичные ошибки при проведении ивл
- •40.Способы ингаляционного наркоза
- •41.Ингаляционный наркоз,характеристика эфира и фторотана
- •42.Современные представления о механизме наркоза
- •43.Эфирный наркоз -стадии и клиническая картина
18.Способы стерилизации перчаток.Типы укладок биксов.Контроль за стерильностью
ТИПЫ УКЛАДОК БИКСА
универсальная. В бикс помещают различный материал (вату, салфетки, тампоны и др.), предназначенный для небольшой по объему операции (аппендэктомия, грыжесечение и др.);
целенаправленная. В бикс закладывают только тот материал и белье, которые потребуются для выполнения какой-либо конкретной операции, например, резекции легкого;
видовая. В бикс укладывают какой-то один вид перевязочного материала или белья, например салфетки.
КОНТРОЛЬ ЗА СТЕРИЛЬНОСТЬЮ
Все действия по обработке и стерилизации инструментов, белья и пр. подлежат обязательному контролю. Контролируют как эффективность стерилизации, так и качество предстерилизационной подготовки.
а) Контроль стерильности
Все методы контроля стерильности делят на прямой и непрямые.
Прямым методом контроля стерильности является бактериологическое исследование: специальной стерильной палочкой проводят по стерильным инструментам (коже рук хирурга или операционного поля, операционному белью и пр.), после чего помещают ее в стерильную пробирку и отправляют в бактериологическую лабораторию, где производят посев на различные питательные среды и таким образом определяют бактериальную загрязненность.
Бактериологический метод контроля стерильности является наиболее точным. Отрицательным моментом является длительность проведения исследования: результат посева будет готов лишь через 3-5 суток, а использовать инструменты нужно непосредственно после стерилизации. Поэтому бактериологическое исследование проводится в плановом порядке и по его результатам судят о методических погрешностях в работе медицинского персонала или дефектах используемого оборудования. По существующим нормативам, несколько различающимся для разного вида инструментария, бактериологическое исследование должно проводиться 1 раз в 7-10 дней. Кроме того, 2 раза в год подобные исследования по всем подразделениям проводят в больнице районные и городские санитарно-эпидемиологические службы.
Непрямые методы контроля используются в основном при термических способах стерилизации и позволяют определить величину температуры, при которой проводилась обработка, не давая точный ответ на присутствие или отсутствие микрофлоры. Преимущество непрямых методов в быстроте получения результата и возможности использования при каждой стерилизации.
При автоклавировании в бикс обычно укладывают ампулу (пробирку) с порошкообразным веществом, имеющим температуру плавления в пределах 110-120°С. После стерилизации при открытии бикса сестра прежде всего обращает внимание на эту ампулу: если вещество расплавилось, то материал (инструменты) можно считать стерильными. Если же нет — нагревание было недостаточным и пользоваться таким материалом нельзя — он нестерилен. Для подобного метода наиболее часто используются: бензойная кислота (t° плавл. — 120°С), резорцин (t° плавл. — 119°С), антипирин (t° плавл. — 110°С). Вместо ампулы в бикс можно поместить термоиндикатор или максимальный термометр, по которым также можно определить, достигалась ли в процессе обработки необходимая температура.
Аналогичные непрямые способы используются при стерилизации в сухожаровом шкафу. Однако здесь используют вещества с более высокими точками плавления (аскорбиновая кислота « 190°С, янтарная кислота - 190°С, тиомочевина ~ 180°С), другие термоиндикаторы или термометры.
б) Контроль качества предстерилизационной обработки
Для контроля за качеством предстерилизационной обработки используются химические вещества, с помощью которых можно обнаружить на инструментах следы неотмытой крови или остатки моющих средств. Реактивы обычно изменяют свой цвет в присутствии соответствующих веществ (кровь, щелочные моющие средства). Методы используются после проведения обработки перед стерилизацией.
Для обнаружения так называемой скрытой крови наиболее часто используется бензидиновая проба.
Для выявления следов моющих веществ используют кислотно-щелочные индикаторы, наиболее распространена фенол-фталеиновая проба.
