- •Вирусология
- •Вирион, капсид, нуклеокапсид, тип симметрии, суперкапсид.
- •3. Критерии современной классификации вирусов.
- •6. Заражение лабораторных животных.
- •7. Заражение куриных эмбрионов.
- •8. Культуры клеток (тканей).
- •10. Методы обнаружения вируса в культуре клеток.
- •11. Цитопатический эффект, определение, классификация.
- •12. Методы типирования вирусов:
- •13. Сущность реакции гемадсорбции.
- •14. Сущность метода цветных проб.
- •15. Сущность метода бляшек.
- •16. Сущность реакции гемагглютинации дляобнаружения вирусов.
- •17. Методы микробиологической диагностики вирусных инфекций.
- •18. Что такое вирусоскопический метод диагностики.
- •19. Что такое вирусологический метод диагностики.
- •24. Где в хозяйской клетке размножаются днк- и где рнк-содержащие вирусы.
- •25. Стадии взаимодействия вирусов с клеткой.
- •26. Что такое вирогения?
- •27. Механизм противовирусного действия интерферона.
- •28. Что такое протоонкоген и онкоген?
- •29. Формы обмена генетическим материалом у бактерий.
- •31. Что такое трансдукция, ее механихмы.
- •32. Плазмиды. Их биологические особенности.
- •33. Основные классы плазмид.
- •34. Бактериофаги. Их химический состав и морфология.
- •35. Типы инфекций, вызываемых бактериофагом. Их особенности.
- •36. Какая разница между вирулентным и умеренным бактериофагом?
- •38. Стадии взаимодействия т-четкого фага с бактериальной клеткой.
- •39. Для чего используются фаги в медицинской практике.
- •40. Что такое фаготипирование?
6. Заражение лабораторных животных.
Методы заражения животных разнообразны: внутрибрюшинный, внутривенный, внутримышечный, интраназальный, заражение в мозг и другие.
Заражение в мозг. (Метод применяют при работе с нейротропными вирусами). Для заражения чаще используют белых мышей. Левой рукой плотно прижимают мышь к столу, большим и указательным пальцами оттягивают кожу головы назад. Туберкулиновым шприцем с предохранительной муфтой на игле прокалывают лобную кость несколько латеральнее средней линии и вводят 0,02-0,03 мл материала. Игла вводится на глубину 1,5-2 мм, при этом отчетливо ощущается "провал" в полость черепа.
При заражении новорожденных мышей (2-3-дневного возраста) их лучше брать руками в перчатках, чтобы после заражения мышата не имели постороннего запаха (пота, дезинфицирующих веществ, антибиотиков и т.д.), так как самка съедает мышат, имеющих посторонний запах. Материал вводят в количестве 0,01 мл. Вытекающую жидкость удаляют сухим стерильным ватным тампоном без дезинфицирующих веществ. После заражения мышат помещают в отдельную банку (в свое гнездо), а через 20-30 минут подсаживают к ним самку.
Больных мышат самка также съедает. Поэтому надо уловить момент извлечения зараженных животных для завершения опыта. Первые два дня просматривают мышат 1-2 раза в день, а затем чаще. Через 3-4 дня здоровый мышонок в два раза больше зараженного.
7. Заражение куриных эмбрионов.
Существует несколько методов заражения куриных эмбрионов; на хорионаллантоиснух) оболочку, в аллантоисную полость, амниотическую полость, в желточный мешок. Для заражения используют эмбрионы 5-11 дневного возраста. Перед заражением эмбрионы просматривают в темной комнате при помощи овоскопа для проверки их жизнеспособности (живые эмбрионы подвижны с хорошо развитыми сосудами) и опревоздушной камеры и места расположения эмбриона. Место на столе, где производят манипуляции покрывают салфеткой, смоченной в растворе хлорамина.
Заражение на хорионаллантоисную оболочку. Яйцо устанавливают в штативе в вертикальном положении тупым концом вверх. Скорлупу над воздушной камерой обрабатывают спиртом, йодом, повторно спиртом, обжигают, прокалывают ножницами небольшое отверстие, через которое в полость воздушного мешка вводят одну браншу и срезают скорлупу над ним. Затем анатомическим пинцетом захватывают в склада- и осторожко снимают внутренний листок подскорлуповой оболочки. Под ней находится хорионаллантоисная оболочка, на которую пастеровской пипеткой наносят исследуемый материал в количестве 0,2-0,5 мл. Отверстие скорлупы закрывают стерильным стеклянным колпачком, который закрепляют на яйце расплавленным парафином. Зараженное яйцо помещают в термостат при 370 на 48 часов.
3аражение в аллантоисную полость. После подготовительной работы скорлупу прокалывают над воздушной камерой и через небольшое отверстие вводят иглой шприца на глубину 1-1,5 см материал в объеме 0,1-0,2 мл. Отверстие заливают парафином.
Заражение в амниотическую полость. После удаления скорлупы над воздушной камерой бранши пинцета вводят в аллантоисную полость в направлении эмбриона на глубину 2-2,5 см, захватывают амниотическую оболочку, выводят ее на глубину прокалывают иглой шприца и в амниотическую полость вводят материал в количестве 0,1 мл. Отверстие в скорлупе закрывают колпачком и парафинируют.
Заражение в желточный мешок. (Этим методом пользуются для выделения риккетсий). Исследуемый материал вводат 5-8-дневным эмбрионам длинной иглой (4-5 см) через небольшое отверстие в скорлупе над воздушной камерой на глубину 2-3 см. При этом надо не повредить зародыш. Во время манипуляции он должен находиться ниже желточного мешка. Просмотреть с помощью овоскопа, отметить границу воздушной камеры и место расположения эмбриона. Ввести эмбриону на хорионаллантоисную оболочку вирус осповакцины или в аллантоисную полость вирус гриппа.
