- •Сучасні методи діагностики, заходи профілактики та боротьби з хворобою ньюкасла методичні рекомендації
- •І. Загальні відомості про хворобу
- •II. Діагностика хвороби ньюкасла
- •2. Методи дослідження
- •2.1. Метод виділення вірусу
- •2.2. Метод постановки реакції гемаглютинації
- •2.3. Метод ідентифікації вірусу
- •2.4. Метод титрування вірусу
- •2.5. Метод визначення вірулентності вірусу
- •2.6. Метод визначення специфічних антитіл
- •2.7. Серологічний контроль рівня антитіл до вірусу хвороби Ньюкасла птиці в реакції затримки гемаглютинації (рзга)
- •Постановка реакції затримки гемаглютинації (рзга) макрометодом
- •Постановка реакції затримки гемаглютинації (рзга)мікрометодом
- •Ііі. Профілактичні заходи за хвороби ньюкасла
- •IV. Заходи при підозрі інфікування чи контамінування птиці вірусом хвороби ньюкасла
- •V. Заходи з ліквідації хвороби ньюкасла
- •VI. Ветеринарно-санітарні заходи у контактних господарствах
- •VII. Ветеринарно-санітарні заходи в зоні захисту
- •VIII. Ветеринарно-санітарні заходи в зоні спостереження
- •IX. Ветеринарно-санітарні вимоги щодо вакцинації птиці проти хвороби ньюкасла
- •X. Ветеринарно-санітарні заходи при підозрі або підтвердженні захворювання на хворобу ньюкасла голубів та птиці, що утримується в неволі
- •XI. Очистка, дезінфекція інфікованого птахогосподарства
- •XII. Правила безпеки для обслуговуючого персоналу в неблагополучних птахогосподарствах
- •Завдання для самоконтролю
- •Рекомендована література
- •Інтернет-ресурси
2.2. Метод постановки реакції гемаглютинації
Сутність методу полягає у здатності вірусу хвороби Ньюкасла аглютинувати еритроцити курей.
Для проведення дослідження застосовують додаткову апаратуру: мікротитратор Такачі; дошки з плексигласу.
Проведення дослідження. Готують дворазові розведення вірусовмісного матеріалу від 1 : 2 до 1 : 1024. Для цього в ряд лунок планшетки з плексигласу (або пробірок) наливають фізіологічний розчин в об’ємі 0,2 см3. Потім в першу лунку вносять 0,2 см3, вірусу, трикратно піпетують і переносять 0,2 см3 суміші в другу лунку і так далі, до необхідного розведення. З останньої лунки 0,2 см3 суміші видаляють у дезінфікуючий розчин (1 %‑вий розчин гідроксиду натрію).
У кожну лунку додають по 0,2 см3 1 %‑вої суспензії курячих еритроцитів. Планшети з лунками струшують залишають за кімнатної температури на 30 хв.
Контролем реакції служать дві лунки (пробірки) з еритроцитами і фізіологічним розчином у рівних об’ємах, по 0,2 см3 кожного. РГА також можна ставити мікротитратором Такачі в об’ємі 0,025 см3 в планшетах з лунками.
Обробка результатів. Утворення на дні і стінках лунок (пробірок) осаду еритроцитів у вигляді перекинутої «парасольки» свідчить про позитивну РГА.
За негативної реакції в досліді і контролі еритроцити утворюють на дні лунок (пробірок) диск з рівними краями.
Титром вірусу вважається граничне розведення, за якого спостерігається повна аглютинація еритроцитів, що відповідає 1 гемаглютинувальної одиниці (1 ГАО).
2.3. Метод ідентифікації вірусу
Сутність методу полягає у здатності специфічних антитіл нейтралізувати гемаглютинуючу здатність вірусу в реакції затримки гемаглютинації (РЗГА) з еталонними специфічними сироватками до вірусу хвороби Ньюкасла і типування антитіл у сироватці крові хворої, перехворілої або підозрюваної у захворюванні птиці з еталонними діагностичними антигенами вірусу хвороби Ньюкасла. Для диференціації в реакцію вводять сироватку проти вірусу грипу птиці.
Для проведення дослідження застосовують додаткову апаратуру та реактиви: апарат Кіппа; баню водяну; кислоту соляну 30 %‑вий розчин; крейду; набір діагностичний спеціальний, який містить по одній ампулі (флакону) сухого еталонного антигену вірусу хвороби Ньюкасла та грипу птиці (по 1 см3 антигену в кожній розфасовці) і по одній ампулі (флакону) специфічної імунної сироватки до вірусу хвороби Ньюкасла і вірусу грипу птиці ( по 1 см3 сироватки в кожній розфасовці); сироватки імунні, які готують наступним чином: вміст ампули (флакона) зі специфічною сироваткою розводять 1 см3 фізіологічного розчину.
Антиген готують наступним чином: ампули (флакони) з антигенами розводять фізіологічним розчином (рН 7,2‑7,4) до початкового об'єму висушеного вірусу, тобто додають 1 см3 фізіологічного розчину.
Підготовка до дослідження. Для отримання робочої дози вірусу (4 ГАО) зразок ембріональної рідини або антигену розводять фізіологічним розчином у стільки разів, скільки отримують від ділення на 4 цифри, що вказує гемаглютинуючий титр вірусу.
Наприклад, якщо титр гемаглютинації 1 : 256, то робоче розведення буде 256 : 4 = 64. Для його приготування необхідно взяти 63 см3 фізіологічного розчину і 1 см3 вихідного вірусу. Розведений 1 : 64 вірус буде містити 4 ГАО.
Перед постановкою основного досліду перевіряють правильність вибору 4 ГАО. Для цього беруть п'ять лунок; в першу і другу наливають по 0,2 см3 вірусовмісного 4 ГАО, після чого в другу, третю, четверту і п'яту лунки наливають по 0,2 см3 фізіологічного розчину. Після піпетування з другої лунки переносять 0,2 см3 суміші в третю і так далі. З п'ятої лунки видаляють 0,2 см3 в дезінфікуючий розчин. Таким чином в другій лунці залишається 2 ГАО, у третій 1 ГАО, у четвертій - 0,5 ГАО, а в п'ятій ‑ 0,25 ГАО. Після цього в кожну лунку додають по 0,2 см3 1 %‑вої суспензії еритроцитів, дошки струшують і залишають на 30 хв за кімнатної температури.
При правильному виборі робочої дози (4 ГАО) в першій, другій і третій лунках повинна бути повна аглютинація, а в четвертій і п'ятій лунках аглютинації не повинно бути.
Якщо в четвертій лунці виявляється часткова або повна аглютинація, то це означає, що обрана доза вірусу містить не 4 ГАО, а більше. У цьому випадку доза повинна бути зменшена. Особливо важливо, щоб в третій лунці, де повинна бути 1 ГАО вірусу, була повна аглютинація. Якщо в ній аглютинація неповна, то обрана робоча доза містить менше 4 ГАО і повинна бути збільшена.
Для приведення робочої дози до 4 ГАО додають відповідно фізіологічний розчин або вірус і повторно перевіряють величину робочої дози вірусу.
Проведення дослідження. Для постановки основного досліду в ряд лунок, починаючи з другої, наливають по 0,2 см3 фізіологічного розчину. Потім в першу і другу лунки додають по 0,2 см3 приготовленої специфічної сироватки. У другій лунці піпетують і переносять 0,2 см3 суміші в третю лунку і так далі до необхідного розведення. Після цього в усі лунки вносять по 0,2 см3 робочого розведення вірусу (4 ГАО). Дошки струшують і після 30 хв контакту сироватки з вірусом в кожну лунку додають по 0,4 см3 1 %‑вої суспензії еритроцитів.
Для точності обліку РЗГА ставлять контроль:
- сироватки - для виключення присутності гемаглютинінів до курячих еритроцитів (0,2 см3 сироватки, 0,2 см3 фізіологічного розчину і 0,2 см3 1 %‑вої суспензії еритроцитів);
- стандартних діагностикумів (0,2 см3 2 ГАО антигену, 0,2 см3 гомологічної йому сироватки і 0,2 см3 1 %‑вої суспензії еритроцитів);
- еритроцитів - на спонтанну аглютинацію (0,2 см3 фізіологічного розчину і 0,2 см3 1 %‑вої суспензії еритроцитів).
Облік результатів проводять візуально через 20‑30 хв після осідання еритроцитів у контролі.
Обробка результатів. РЗГА вважають позитивною, якщо специфічна сироватка до вірусу хвороби Ньюкасла повністю затримує гемаглютинуючу активність вірусу (дослідного штаму) не менше ¼ до ⅛ її гомологічного титру.
