1. Ознакомление с электрокардиографами

    Запись электрокардиограммы у животных производится при помощи приборов - электрокардиографов. Хотя существует много разных типов приборов, но суть их одна, все они записывают биопотенциалы сердца и все они в принципе состоят из трех узлов. Первый узел -

    воспринимающая часть (электроды и провода отведений), по ней биотоки сердца поступают в прибор. Второй узел - усилитель, который усиливает поступившие в прибор биопотенциалы, они слишком малы, и в таком виде точно анализировать невозможно. Третий узел - записывающая

    система, она дает возможность получить графическую кривую биотоков сердца, доступную для анализа. Есть приборы с фото записью, они дают довольно точную запись. К такому типу аппаратов относится

    электрокардиограф ЭКП-60. Он очень удобен, и его можно применять в условиях любых животноводческих помещений. Есть очень точные аппараты с электронно-лучевой трубкой, в которых безинерционный электронный луч дает запись или на флюоресцирующем экране, или же на

    движущейся фотопленке или фотобумаге. Эти приборы более «капризные» и обычно применяются в стационарных условиях. Позже появились электрокардиографы с чернильной записью на обычной

    рулонной писчей бумаге. Они удобны в смысле получения сразу визуальной записи, но в то же время менее точные, «капризные» в работе. В условиях животноводческих помещений, где, как правило, сыро, они неприменимы. В настоящее время используют ЭКГ с тепловой записью разных модификаций.

    2. Запись электрокардиограмм

    Существует много разных методов записи электрокардиограмм. Есть методика отведения биотоков сердца от конечностей. Электроды присоединяются к конечностям, и запись производится в трех отведениях. В первом отведении биотоки отводятся от правой и левой грудных конечностей, во втором - от правой грудной и левой тазовой конечностей и в третьем - от левой грудной и левой тазовой конечностей.

    На заре ветеринарной электрокардиографии эта система отведений биопотенциалов сердца от людей механически была перенесена на животных.

    Под руководством преподавателя в манеже, на занятиях студенты проводят запись электрокардиограмм животного с конечностей по трем отверстиям, которое наиболее часто применяют в учебных целях. 3. Ознакомление с методикой анализа электрокардиограмм

    Преподаватель знакомит студентов с методикой анализа электрокардиограмм и производит демонстрационный анализ снятой на занятии электрокардиограммы. Анализ электрокардиограммы производится по следующей схеме:

    1. Анализ параметров регистрации электрокардиограммы.

    Определяют:

    а) тип электрокардиограммы;

    б) контрольный милливольт (усиление, N1 мв = 1 Ом);

    в) нулевую (изоэлектрическую) линию (она может быть спокойной, волнообразной и т, д

    г) помехи (чистота записи, наводимые токи, артефакты);

    д) скорость движения ленты в секунду.

    2. Анализ кривой электрокардиограммы.

    Определяют:

    а) ритм синусовый или гетеротопный, правильный,

    неправильный;

    б) величину зубцов Р, (}, Я, 8, Т в милливольтах, и их форму во всех отведениях и направления;

    в) продолжительность интервалов Р-9, ОД8, ОД8Т, К-Я (по второму отведению), в секундах;

    г) уровень сегмента 8Т;

    д) частоту пульса;

    е) величину электрической оси сердца.

    Заключение.

    4. Функциональные методы исследования сердечно-сосудистой

    системы

    После пояснения преподавателем функциональных методов исследования сердечно-сосудистой системы применяют их на животных, приведенных на занятие. Занятия заканчиваются проверкой знаний студентов по пройденному материалу.

     Контрольные вопросы

    Что такое электрокардиография?

    2. Каков механизм возникновения элементов электрокардиограммы?

    3. Как производится анализ электрокардиограммы?

    4. Какие патологические изменения электрокардиограммы встречаются при поражениях сердца?

    5. Какие функциональные методы исследования сердечно-сосудистой системы применяются у животных?

Коллоквиум по общей диагностике и исследованию 

сердечно-сосудистой системы

    

Место проведения занятия - манеж.

Учебных часов -2(14).

Материальное обеспечение

    Различные виды сельскохозяйственных животных, необходимые

    инструменты для их фиксации и укрощения, общей диагностики и

    исследования сердечно-сосудистой системы.

Ход занятия

    Преподаватель сначала предлагает студентам сложить в портфели записи лекций, практических занятий, всю учебную и дополнительную литературу. После этого он задает вопросы по данному разделу учебной программы. На теоретические вопросы студенты отвечают с места, а на практические - непосредственно у животного, демонстрируя соответствующие методы исследования. При необходимости для фиксации животного преподаватель вызывает другого студента. Если студент не ответил или дал неполный ответ, то преподаватель спрашивает у другого студента. За ответы преподаватель ставит в журнале оценку по пятибалльной системе. В конце разбора каждого вопроса преподаватель делает краткое резюме. Студенты, получившие неудовлетворительные оценки, должны пересдать коллоквиум во внеурочное время.

     Контрольные вопросы

    1. Понятие о клинической диагностике и ее связь с другими науками.

    2. История развития клинической диагностики и роль отечественных и зарубежных ученых в развитии этой науки.

    3. Значение клинической диагностики в свете решений правительства об интенсификации и специализации животноводства.

    4. Современные задачи ветеринарного врача при проведении диагностических, профилактических и лечебных мероприятий на животноводческих фермах и промышленных комплексах.

    5. Распознавание болезненного процесса. Виды диагноза.

    6. Симптомы и синдромы. Понятие о субклинических формах заболеваний и прогнозе.

    7. Методы исследований животных.

    8. Осмотр, пальпация.

    9. Перкуссия.

    10. Аускультация.

    11. Термометрия и физиологические колебания температуры у животных и птиц различных видов.

    12. Правила охраны труда: безопасность и личная гигиена при исследовании животных.

    13. Методы фиксации и укрощения крупного рогатого скота.

    14. Методы фиксации и укрощения лошадей.

    15. Методы фиксации и укрощения собак, пушных зверей и других животных.

    16. Схема клинического исследования животных.

    17. Предварительное ознакомление с больным животным

    18. Общее исследование животного.

    19. Клиническая документация.

    20. Клиническое значение исследования сердечно-сосудистой системы и достижения науки в этой области.

    21. Топография сердца у животных и исследование сердечного толчка.

    22. Аускультация сердца, тоны сердца и их изменения.

    23. Перкуссия сердца.

    24. Фонокардиография и ее клиническое значение

    25. Понятие о шумах и методика их диагностики.

    26. Классификация шумов сердца.

    27. Эндокардиальные шумы.

    28. Экстракардиапьные шумы.

    29. Электрокардиография - как специальный метод, ее клиническое значение и элементы электрокардиограммы.

    30. Механизм возникновения элементов электрокардиограммы.

    31. Анализ электрокардиограмм.

    32. Исследование артериального пульса и его клиническое значение. Физиологические колебания частоты пульса у животных и птиц различных видов.

    33. Исследования периферических вен и определение разновидностей венного пульса.

    34. Определение артериального и венозно-кровяного давления.

    35. Аритмии сердца и их классификация.

    36. Аритмии на почве нарушения автоматизма сердца.

    37. Аритмии на почве нарушения возбудимости сердца.

    38. Аритмии на почве нарушения проводимости и сократимости сердца.

    39. Функциональные методы исследования сердечно-сосудистой системы.

    40. Синдром сердечной недостаточности.

    41. Синдром сосудистой недостаточности.

Исследование дыхательных движений, верхних дыхательных путей и аускультация легких

    Место проведения занятия - манеж. Учебных часов -2(15).

План занятия

    1. Исследование дыхательных движений.

    2. Исследование верхних дыхательных путей и щитовидной железы.

    3. Аускультация легких.

Материальное обеспечение

    Корова, лошадь, овца, собака, стетоскопы, фонендоскопы, два комбинированных фонендоскопа, стетоскоп, полотенце.

Ход занятия

    1. Исследование дыхательных движений

    Вначале преподаватель дает пояснения, а потом студенты исследуют дыхательные движения у животных, имеющихся на занятии. При этом определяют:

    1) частоту дыхательных движений (учащение, урежение);

    2) ритм (ритмичное и аритмичное дыхание: саккадированное дыхание, большое дыхание Куссмауля, Биотово дыхание, Чейн-Стоксово дыхание, диссоциированное дыхание Грокка);

    3) тип (смешанный, грудной, брюшной);

    4) глубину (умеренное, глубокое и поверхностное дыхание);

    5) симметричность (симметричное и асимметричное дыхание);

    6) одышку (инспираторная, экспираторная и смешанная одышка).

    2. Исследование верхних дыхательных путей

    Под руководством преподавателя студенты проводят исследование верхних дыхательных путей. По ходу исследования преподаватель дает пояснения.

Определяют:

    1) наличие и характер носового истечения;.

    2) характер выдыхаемого воздуха;

    3) состояние носовых отверстий;

    4) цвет, влажность, целостность слизистой носа, состояние (влажность, температура, целостность и пр.) носового зеркальца у рогатого скота, пятачка у свиней, носа у собак;

    5) состояние придаточных полостей (верхнечелюстных и лобных пазух у животных всех видов и еще воздухоносных мешков у однокопытных);

    6) состояние гортани и трахеи;

    7) кашель;

    8) состояние щитовидной железы (хотя она и не относится к органам дыхания, однако ввиду тесной анатомической связи с последними, ее принято исследовать в этом разделе.

    3. Аускультация легких

    Различают непосредственную и посредственную аускулътацию легких. Последняя - может производиться при помощи стетоскопа и фонендоскопа.

    Студенты выслушивают легкие у животных сначала при помощи комбинированного фонендоскопа под контролем преподавателя, а потом аускультируют разными методами самостоятельно. Занятия заканчиваются проверкой знаний студентов по пройденному материалу.

     Контрольные вопросы

    1. Схема исследования дыхательной системы и исследование дыхательных движений.

    2. Исследование верхних дыхательных путей.

    3. Кашель, его свойства, клиническая оценка.

    4. Основные физиологические шумы дыхания.

    5. Топография щитовидной железы и методы ее исследования.

    Перкуссия грудной клетки и плегафония

    Место проведения занятия - манеж. Учебных часов - 2 (16).

План занятия

    1. Топографическая перкуссия и перкуторный звук при нормальных легких.

    2. Сравнительная перкуссия и изменение перкуторного звука при заболеваниях легких и плевры.

    3. Трахеальная перкуссия (плегафония).

Материальное обеспечение

    Корова, лошадь, овца, собака, из них одно животное должно быть с поражением органов дыхания. Перкуссионные молоточки, плессиметры, фонендоскопы и в том числе один комбинированный для групповой аускультации.

Ход занятия

    1. Топографическая перкуссия и перкуторный звук при нормальных легких

    Преподаватель дает пояснение и демострирует методы перкуссии на животных. Далее студенты отрабатывают их под руководством преподавателя

    Топографическая перкуссия - это выстукивание области грудной клетки с целью определения границ легких. У животных доступны клиническому определению только задние границы. Применяется метод посредственной перкуссии молоточком и плессиметром. У мелких животных можно применить дигитальную перкуссию.

    2. Сравнительная перкуссия и изменение перкуторного звука при заболеваниях легких и плевры

    Сравнительная перкуссия применяется для определения патологических изменений в легких и плевре.

    У здоровых животных в поле перкуссии легких слышен ясный, легочный, атимпанический звук. Он более громкий в средней трети и несколько слабее в верхней и нижней трети грудной клетки. При заболеваниях легких и плевры характер перкуторного звука может значительно изменяться. При этом может быть тупой, притупленный, тимпанический звуки, звук треснувшего горшка и звук с металлическим оттенком.

    3. Трахеальная перкуссия

    По указанию преподавателя один из студентов производит перкуссию трахеи животного, а другие в это время выслушивают при помощи фонедоскопов грудную клетку. Таким образом, исследуют и здоровых животных, и животных с поражением органов дыхания, проводят сравнительную оценку и определяют характер поражения. Занятия заканчиваются проверкой знаний студентов по пройденному материалу.

     Контрольные вопросы

    1. Дайте определение топографической и сравнительной перкуссии.

    2. Назовите границы поля перкуссии легких у животных разных видов.

    3. Характер перкуссионных звуков грудной клетки и области легких у

    здоровых животных.

    4. Какие бывают изменения перкуссионного звука грудной клетки при заболеваниях легких и плевры?

    5. На чем основано исследование легких методом плегафонии?

Патологические шумы дыхания

    Место проведения занятия - манеж.

    Учебных часов -2 (17).

План занятия

    1. Ознакомление с разнообразными патологическими дыхательными

    шумами путем прослушивания их магнитофонных записей.

    2. Аускультация патологических шумов дыхания у животных. Материальное обеспечение

    Магнитофон с записями патологических шумов дыхания, животные с поражением органов дыхания, фонендоскопы и в том числе один комбинированный для групповой аускультации.

    Ход занятия

    После небольшого пояснения преподавателя студенты прослушивают магнитофонные записи патологических шумов дыхания. При этом преподаватель периодически останавливает магнитофон и дает дополнительные пояснения. В отдельных случаях некоторые фрагменты записи студенты прослушивают повторно с подробными пояснениями преподавателя. Далее студенты под руководством преподавателя проводят аускультацию патологических шумов дыхания у клинически больных животных. При этом очень важным моментом является групповое прослушивание патологических шумов дыхания при помощи комбинированного фонендоскопа под контролем преподавателя. Студенты должны определить вид шума, силу, локализацию и с помощью преподавателя установить характер патологического процесса. Занятия заканчиваются проверкой знаний студентов по пройденному материалу.

     Контрольные вопросы

    1. Классификация патологических шумов дыхания.

    2. Механизм возникновения бронхиального дыхания.

    3. Механизм возникновения сухих и влажных хрипов.

    4. Механизм возникновения жесткого везикулярного дыхания.

    5. Механизм возникновения крепитации и ее отличие от мелкопузырчатых хрипов.

 

Исследование переднего отдела пищеварительной системы

    Место проведения занятий - манеж Учебных часов -2(18).

План занятия

    1. Исследование губ, ротовой полости, глотки, пищевода у животных и зоба у птиц.

    2. Исследование преджелудков и сычуга.

    3. Исследование желудка у моногастричных животных.

Материальное обеспечение

    Лошадь, корова, овца, свинья, собака, курица, перкуссионные молоточки, плессиметры, фонендоскопы, зевники для крупных и мелких животных, ШОГ-1, руминограф Горяиновой, деревянная палка, таблицы с топографией внутренних органов лошади, крупного рогатого скота, собаки, свиньи.

Ход занятия

    1. Исследование губ, рта, глотки, пищевода у животных и зоба у птиц

    Преподаватель дает пояснения и демонстрирует методы фиксации и исследования ротовой полости, глотки, пищевода (указывая видовые особенности) у животных и зоба птиц. Затем подгруппами (2-3 человека) студенты под руководством преподавателя осваивают технику и методику исследования определенного вида животных, меняя их в процессе занятия.

    2. Исследование преджелудков и сычуга

    Преподаватель напоминает топографию органов по таблицам, а

    области исследования преджелудков и сычуга показывает на животных,

    объясняет методы и технику исследования рубца, сетки, книжки и сычуга.

    Студенты под руководством преподавателя повторяют исследования.

    3. Исследование желудка у моногастричных животных

    Преподаватель напоминает топографию желудка у лошади, свиньи, собаки, объясняет методы и показывает технику исследования животных различных видов.

    Студенты под руководством преподавателя повторяют исследования. Занятие заканчивается проверкой знаний студентов по пройденному материалу.

     Контрольные вопросы

    1. Как проводится исследование ротовой полости?

    2. На что следует обратить внимание при осмотре?

    3. Как проводится исследование глотки у крупных и мелких животных?

    4. Как проводится исследование пищевода у животных?

    5. Как проводится исследование зоба у птиц?

    6. Расскажите о топографии преджелудков и сычуга у жвачных животных.

    7. Какими методами исследуют рубец у жвачных животных?

    8. Какими методами исследуют сетку, книжку и сычуг у жвачных животных?

    9. Расскажите о топографии желудка у лошади, свиньи и собаки.

    10. Какими методами исследуют желудок лошади и мелких животных

 

Зондирование желудка

    Место проведения занятия - манеж.

    Учебных часов-2 (19)

План занятия

    1. Зондирование рубца у крупного рогатого скота и взятие рубцового содержимого.

    2. Зондирование желудка у лошади и взятие желудочного содержимого.

Материальное обеспечение

    Лошадь, корова, носоглоточный зонд, аппарат Комовского, ротопищеводный зонд, шприц емкостью 200 мл, резиновая груша.

    1. Зондирование рубца у крупного рогатого скота и взятие рубцового содержимого

    Преподаватель объясняет технику зондирования рубца и получения рубцового содержимого, проводит зондирование рубца и получает рубцовое содержимое.

    2. Зондирование желудка у лошади и взятие желудочного содержимого

    Преподаватель объясняет технику и проводит зондирование желудка у лошади, перечисляет возможные методы получения желудочного содержимого, получает его с помощью аппарата Комовского.

    После этого студенты делятся на две группы и под руководством преподавателя отрабатывают технику зондирования рубца у крупного рогатого скота и желудка у лошади, взятие рубцового содержимого. Занятие заканчивается проверкой знаний у студентов по пройденному

    материалу.

     Контрольные вопросы

    1. С какими целями производят зондирование рубца у жвачных животных?

    2. Как проводят зондирование рубца у крупного рогатого скота, и какие меры предосторожности при этом следует соблюдать?

    3. Как получают рубцовое содержание и каковы показания для этого?

    4. Какие приемы профилактики травматического ретикулита используются в животноводстве?

    5. Как проводят зондирование желудка у лошади, и какие меры предосторожности при этом следует соблюдать?

    6. Как и для каких целей берут желудочное содержимое?

Исследование кишечника, печени и селезенки

    Место проведения занятия - манеж.

    Учебных часов - 2 (20).

План занятия

    1. Исследование кишечника у животных.

    2. Исследование печени и селезенки.

    3. Ректальное исследование органов брюшной полости у крупных животных.

Ход занятия

    1. Исследования кишечника у животных

    Преподаватель напоминает топографию органов брюшной полости по таблицам (муляжам), обращая внимание студентов на особенности расположения кишечника у животных различных видов, демонстрирует на них методы исследования кишечника.

    Студенты группами (2-3 человека) исследуют кишечник у животных различных видов.

    2. Исследование печени и селезенки

    Преподаватель указывает на видовые особенности расположения и исследования печени и селезенки, объясняет и демонстрирует методы исследования.

    Студенты под руководством преподавателя проводят исследования печени и селезенки у определенного вида животных, меняя их в процессе занятия.

    3. Ректальное исследование органов брюшной полости

    Преподаватель объясняет методику и технику ректального исследования, отмечая видовые и половые особенности расположения органов брюшной полости.

    Студенты проводят ректальное исследование лошади и крупного рогатого скота.Занятия заканчиваются проверкой знаний студентов по пройденному

    материалу.

     Контрольные вопросы

    1. Расскажите о топографии кишечника у лошади и крупного рогатого скота

    2. Расскажите о топографии кишечника у свиньи и собаки.

    4. Как исследуют кишечник у мелких животных?

    5. Как исследуют печень и селезенку у животных различных видов?

    6. Как проводят определение границ печени у крупного рогатого скота?

    7. Как проводят биопсию печени у крупного рогатого скота?

    8. Как проводят ректальное исследование, и по каким признакам определяют те или другие органы брюшной полости?

 

Исследование желудочного содержимого у лошади

    Место проведения занятия - манеж-лаборатория

    Учебных часов -2(21).

План занятия

    1. Определение физических свойств желудочного содержимого,

    2. Определение химического состава желудочного содержимого.

    3. Микроскопия осадков желудочного содержимого.

Материальное обеспечение

    Микроскопы, стаканы емкостью 100 мл, бюретки, пастеровские пипетки с баллонами, автоматические пипетки 10 мл, центрифуга, предметные и покровные стекла.

    Реактивы: раствор едкого натра, 0,5%-ный раствор диметиламидоазобензола, 2%-ный раствор карболовой кислоты, 10%-ный раствор хлорного железа, концентрированная азотная кислота.

Ход занятия

    1. Определение физических свойств желудочного содержимого

    Преподаватель знакомит студентов со схемой исследования желудочного содержимого, объясняет клиническое значение изменения количества, цвета, запаха, консистенции желудочного содержимого.

    Студенты индивидуально исследуют физические свойства желудочного содержимого по прилагаемой методике.

    2. Определение химического состава желудочного содержимого

    Преподаватель объясняет клиническое значение изменений реакции общей кислотности, свободной и связанной соляной кислоты, наличие

    кислот, желчных и кровяных пигментов.

    Студенты индивидуально исследуют химический состав желудочного содержимого по прилагаемой методике.

    3. Микроскопия осадков желудочного содержимого

    Преподаватель знакомит студентов с методикой микроскопического исследования желудочного содержимого, отмечая клиническое значение для постановки диагноза.

    Студенты индивидуально проводят микроскопические исследования

    желудочного содержимого, результаты всех исследований записывают в

    специальные бланки и представляют преподавателю, объясняя их

    клиническое значение.

     Контрольные вопросы

    1. В каком случае желудочное содержимое может иметь цвет: от

    розового цвета до коричнево-бурого?

    2. При каких состояниях желудочное содержимое имеет запах сероводорода, трупно-гн илисты и?

    3. Какое диагностическое значение имеет наличие в осадке желудочного содержимого лейкоцитов, эпителиальных клеток, эритроцитов?

    4. Охарактеризуйте гиперацидный тип секреции.

    5. Охарактеризуйте астенический тип секреции.

    6. Охарактеризуйте инертный тип секреции.

    7. Охарактеризуйте субацидный тип секреции.

Ход занятия

    1. Определение физических свойств желудочного содержимого

    Преподаватель знакомит студентов со схемой исследования желудочного содержимого, объясняет клиническое значение изменения количества, цвета, запаха, консистенции желудочного содержимого.

    Студенты индивидуально исследуют физические свойства желудочного содержимого по прилагаемой методике.

    2. Определение химического состава желудочного содержимого

    Преподаватель объясняет клиническое значение изменений реакции

    общей кислотности, свободной и связанной соляной кислоты, наличие

    органических кислот, желчных и кровяных пигментов.

    Студенты индивидуально исследуют химический состав желудочного

    содержимого по прилагаемой методике.

    3. Микроскопия осадков желудочного содержимого

    Преподаватель знакомит студентов с методикой микроскопического исследования желудочного содержимого, отмечая клиническое значение для постановки диагноза.

    Студенты индивидуально проводят микроскопические исследования желудочного содержимого, результаты всех исследований записывают в специальные бланки и представляют преподавателю, объясняя их клиническое значение.

     Контрольные вопросы

    1. В каком случае желудочное содержимое может иметь цвет: от розового цвета до коричнево-бурого?

    2. При каких состояниях желудочное содержимое имеет запах сероводорода, трупно-гнилистный?

    3. Какое диагностическое значение имеет наличие в осадке желудочного содержимого лейкоцитов, эпителиальных клеток, эритроцитов?

    4. Охарактеризуйте гиперацидный тип секреции.

    5. Охарактеризуйте астенический тип секреции.

    6. Охарактеризуйте инертный тип секреции.

    7. Охарактеризуйте субацидный тип секреции.

Исследование рубцового содержимого и фекалий

    Место проведения занятия - манеж-лаборатория.

    Учебных часов - 2 (22).

Материальное обеспечение

    Микроскопы, счетные камеры Горяева, смесители лейкоцитарные, чашки Петри, предметные и покровные стекла.

    Реактивы: 0,1 н раствор едкого натра, 1%-ный спиртовой раствор пирамидона, 30%-ная уксусная кислота, перекись водорода (свежая), реактив Фуше, смесь спирта и эфира, 10%-ный раствор уксуснокислого цинка в абсолютном спирте.

    Ход занятия

    1. Исследование рубцового содержимого

    Преподаватель знакомит студентов со схемой исследования рубцового содержимого. Объясняет клиническое значение изменения физических свойств: цвета, запаха, консистенции, реакции и химического состава: кислотности, наличия органических кислот, кровяных пигментов. Дает пояснения относительно техники работы с лейкоцитарным меланжером, его зарядки, подготовки к работе счетной камеры и методикой перерасчета и определения подвижности инфузорий.

    Студенты индивидуально определяют физические, химические свойства, проводят микроскопию рубцового содержимого в соответствии с частными методическими указаниями.

    2. Исследование фекалий

    Преподаватель знакомит студентов с порядком исследования фекалий, объясняет клиническое значение изменения количества, консистенции, цвета, запаха фекалий, их реакции, наличие скрытой крови.

    Студенты индивидуально определяют физические и химические свойства фекалий в соответствии с частными методическими указаниями. По окончании работы студенты представляют преподавателю результаты исследований.

     Контрольные вопросы

    1. При каких состояниях рубцовое содержимое приобретает гнилостный запах?

    2. Какие патологические примеси могут встречаться в рубцовом содержимом?

    3. Какую реакцию имеет рубцовое содержимое у здоровых животных?

    4. Как определяют подвижность инфузорий?

    5. Как определяют количество инфузорий в 1 мл рубцового содержимого?

    6.При каких состояниях желудочно-кишечного тракта в кале обнаруживают слизь?

    7. Какой вид приобретаег кал при отсутствии в нем стеркобилина?

    8. Какое диагностическое значение имеет определение биллирубина в кале?

    9. Какое диагностическое значение имеет определение скрытой крови в кале?

Исследование мочеполовой системы

    Место проведения занятия - манеж. Учебных часов - 2 (23).

План занятия

    1. Наблюдение за актом мочеиспускания.

    2. Исследование почек и мочеполовых путей.

    3. Исследование половых органов.

Материальное обеспечение

    Лошадь, корова, собака; катетеры (для кобыл, жеребцов и меринов, коров, собак); цистоскоп, влагалищное зеркало, вазелин, полиэтиленовые перчатки, веревка.

Ход занятия

    1. Наблюдение за актом мочеиспускания

    Преподаватель напоминает видовые и половые особенности акта мочеиспускания у сельскохозяйственных животных, методику его исследования. Обращает внимание студентов на изменение позы при мочеиспускании, признаки болезненности.

    2. Исследование почек и мочевых путей

    Преподаватель дает пояснение относительно топографии почек у животных различных видов, особенности исследования почек у крупных и мелких животных. Объясняет методику проведения осмотра животного с нарушением функции почек, наружной и внутренней пальпацией почек, мочевого пузыря, мочеточников. Поясняет и показывает технику цистоскопии и катетеризации мочевого пузыря.

    Студенты группами (2-3 человека) исследуют почки и мочевые пути у животных различных видов.

    3. Исследование половых органов

    Преподаватель объясняет методику и технику исследования наружных половых органов у самок и самцов сельскохозяйственных.животных.

    Студенты группами (2-3 человека) исследуют наружные половые органы у животных разных видов. Занятия заканчиваются проверкой знаний студентов по пройденному материалу.

     Контрольные вопросы

    1. Расскажите о топографии почек у различных видов животных.

    2. Как проводят пальпацию почек у крупных и мелких животных?

    3. Как проводят катетеризацию мочеиспускательного канала и мочевого пузыря у самцов и самок?

    4. Как проводят цистоскопию?

 

Физико-химические методы исследования мочи

    Место проведения занятия - лаборатория. Учебных часов - 2 (24).

План занятия

    1. Определение физических свойств мочи.

    2. Определение химического состава мочи.

     Материальное обеспечение

    Пробирки, воронки, штативы, спиртовки, фильтровальная бумага, урометры, синяя и красная лакмусовые бумажки, реактивы согласно прилагаемым методикам, шифрованные пробы мочи.

Ход занятия

    1. Определение физических свойств мочи

    Преподаватель знакомит студентов со схемой исследования мочи. Объясняет клиническое значение изменения количества, запаха, консистенции, прозрачности, цвета, наличия примесей в моче.

    Студенты индивидуально исследуют физические свойства мочи в соответствии с частными методическими указаниями.

    2. Определение химического состава мочи

    Преподаватель объясняет клиническое и диагностическое изменение реакции мочи, наличие белка, протеоз, углеводов, лактозы, пигментов крови, уробилина, желчных пигментов, индикана, кетоновых тел.

    Студенты индивидуально определяют химический состав мочи в соответствии с частными методическими указаниями.

    В конце занятия студенты представляют результаты исследований, объясняя диагностическое значение обнаруженных в моче химических веществ, приводят в порядок свои рабочие места.

    Контрольные вопросы

    ]. При каких состояниях (уменьшается) суточный диурез?

    2. Чем обусловлена мутность мочи у здоровых лошадей?

    3. Какую реакцию имеет моча здоровых травоядных, плотоядных и

    всеядных животных?

    4. При каких состояниях удельный вес мочи повышается (понижается)?

    5. Какое клиническое значение имеет обнаружение белка в моче?

    6. Какое клиническое значение имеет обнаружение альбумоз (протеоз) в моче?

    7. Какое клиническое значение имеет обнаружение глюкозы в моче?

    8. Какое клиническое значение имеет обнаружение лактозы в моче?

    9. Какое клиническое значение имеет обнаружение кетоновых (ацетоновых) тел в моче?

    10. Какое клиническое значение имеет обнаружение биллирубина в моче?

    11. Какое клиническое значение имеет обнаружение уробилина в моче?

    12. Какое клиническое значение имеег обнаружение гемоглобина в моче?

    13. Какое клиническое значение имеет обнаружение индикана в моче?

 

Исследование осадков мочи

    Место проведения занятия - лаборатория.

    Учебных часов - 2 (25).

План занятия

    1. Определение неорганизованных осадков мочи.

    2. Определение организованных осадков мочи.

    Материальное обеспечение

    Микроскопы, пастеровские пипетки с резиновыми баллончиками, предметные стекла, покровные стекла, таблицы с изображением осадков мочи.

    Реактивы: раствор Люголя, соляная кислота, уксусная кислота,

    аммиак, едкий натр, хлороформ.

    Ход занятия

    1. Определение неорганизованных осадков мочи

    Преподаватель объясняет технику получения осадка мочи, приготовление препарата, морфологию неорганизованных осадков кислой и щелочной мочи, их клиническое значение. Объясняет необходимость и проводит микрореакции, с целью определения принадлежности кристаллов по их растворимости в соответствующих веществах.

    Студенты самостоятельно готовят препараты из проб кислой и щелочной мочи, исследуют их и зарисовывают кристаллы в тетрадях.

    2. Определение организованных осадков мочи

    Преподаватель объясняет морфологию, клиническое значение клеток крови, эпителиальных клеток и цилиндров в моче.

    Студенты самостоятельно изучают морфологию организованных осадков мочи, зарисовывают их в тетради. Приводят в порядок свои рабочие места.

    Занятия заканчиваются проверкой знаний студентов по пройденному материалу.

     Контрольные вопросы

    1. Какие неорганические осадки встречаются в щелочной моче здоровых и больных животных?

    2. Какие неорганические осадки встречаются в кислой моче здоровых и больных животных?

    3. Какое клиническое значение имеет обнаружение в осадке мочи эритроцитов?

    4. Какое клиническое значение имеет обнаружение в осадке мочи лейкоцитов?

    5. Какое клиническое значение имеет обнаружение в осадке мочи эпителиальных клеток?

    6. Какова морфология эпителиальных клеток мочевой системы?

    7. Какие цилиндры могут встречаться в моче?

    8. Расскажите о клиническом значении цилиндров в моче.

 

Исследование нервной системы

    Место проведения занятия - манеж.

    Учебных часов - 2 (26).

План занятия

1.Наблюдение за поведением животного и исследование черепа и  позвоночного столба. 

2. Исследование органов чувств, кожной и мышечно-суставной чувствительности.  3. Исследование двигательной сферы и рефлексов.  4. Исследование вегетативного отдела нервной системы и рефлекторных кожных зон.

Материальное обеспечение 

Корова, лошадь,овца, коза, аппарат Шаптала.

Ход занятия

    Преподаватель сначала дает краткое пояснение по каждому вопросу, демонстрируя методы исследования. После этого студенты под руководством преподавателя отрабатывают эти методы исследования на различных животных. Занятия заканчиваются проверкой знаний студентов по пройденному материалу.

     Контрольные вопросы

    1. Как исследуют глубокую чувствительность?

    2. Какое расстройство поведения животных можно наблюдать?

    3. Как исследуют мышечно-суставную чувствительность?

    4. Как исследуют болевую и тактильную чувствительность?

    5. Какими расстройствами двигательной сферы характеризуются статическая и динамическая атаксии?

    6. Какими расстройствами двигательной системы характеризуются периферические и центральные параличи?

    7. Какое клиническое значение имеет изучение рефлексов при исследовании вегетативной нервной системы?

 

Коллоквиум по исследованию дыхательной, пищеварительной, мочеполовой и нервной систем

    Место проведения занятия - манеж.

    Учебных часов - 2 (27).

Материальное обеспечение

    Крупный рогатый скот, лошадь, собака, курица, два перкуссионных молоточка и два плессиметра (для крупных и мелких животных), два фонендоскопа (в том числе один аудиторный), набор Шаптала.

Ход занятия

    Сначала преподаватель предлагает студентам убрать записи лекций, практических занятий, учебную и дополнительную литературу. Потом задает им вопросы. Студент отвечает у животного, демонстрируя на нем соответствующие методы исследования. Если студент дал неполный ответ или совсем не ответил, то преподаватель спрашивает у другого студента За ответы преподаватель ставит оценку в журнале по пятибалльной системе. В конце разбора каждого вопроса преподаватель делает краткое резюме.

    Студенты, не сдавшие коллоквиума на занятии, сдают его во

    внеурочное время.

     Контрольные вопросы

    1. Схема исследования дыхательной системы и исследований дыхательных движений. Физиологические колебания частоты дыхательных движений у животных различных видов.

    2. Исследование верхних дыхательных путей и щитовидной железы.

    3. Кашель, его свойства и клиническая оценка.

    4. Пальпация и аускультация грудной клетки, физиологические шумы дыхания, механизм их возникновения.

    5. Патологические шумы дыхания.

    6. Методика перкуссии грудной клетки и характер перкуторных звуков грудной клетки у здоровых животных.

    7. Изменение перкуссионного звука при заболеваниях легких и плевры.

    8. Семиотика заболеваний органов дыхания и синдромы поражения верхних дыхательных путей.

    9. Синдром бронхита.

    10. Синдром воспаления легких и пневмоторакса и их дифференциальная диагностика.

    11. Синдром плеврита и грудной водянки и их дифференциальная диагностика.

    12. Клиническое значение исследования органов пищеварения у животных.

    13. Исследование процесса приема корма и питья.

    14. Исследование ротовой полости, глотки, пищевода у животных и

    зоба у птиц.

    15. Топография брюшных органов у крупного рогатого скота

    16. Топография брюшных органов у лошади и других животных.

    17. Методы исследования живота с целью определения состояния органов брюшной полости.

    18. Исследование преджелудков и сычуга.

    19. Исследование желудка у лошади и других животных.

    20. Исследование кишечника пальпацией, аускультацией и перкуссией.

    21. Исследование акта дефекации и фекалий.

    22. Ректальное исследование.

    23. Исследование печени у животных

    24. Механическая желтуха.

    25. Гемолитическая желтуха.

    26. Перенхиматозная желтуха.

    27. Исследование селезенки

    28. Исследование желудочного содержимого у нежвачных животных.

    29. Исследование рубцового содержимого.

    30. Пробный прокол живота и исследование пунктата.

    31. Клиническое значение, схема и методы исследования мочеполовой системы.

    32. Краткая семиотика пораженной мочевой системы.

    33. Исследование акта мочеиспускания.

    34. Клинические и функциональные методы исследования почек.

    35. Исследование мочевых путей.

    36. Значение лабораторного исследования мочи для диагноза, прогноза и терапии.

    37. Способы получения мочи и схема ее анализа.

    38. Физико-химическое исследование мочи.

    39. Осадки мочи, способы их получения, классификация и

    диагностическое значение.

    40. Неорганизованные осадки щелочной мочи.

    41. Неорганизованные осадки мочи, встречающиеся только при заболеваниях.

    42. Неорганизованные осадки кислой мочи

    43. Организованные осадки мочи.

    44. Синдром нефрита.

    45. Синдромы нефроза и нефросклероза.

    46. Синдром поражения мочевых путей.

    47. Значение исследования нервной системы в свете учения И. П. Павлова и схема ее исследования.

    48. Наблюдение за поведением животного и исследование черепа и позвоночного столба.

    49. Исследование органов чувств, кожной и мышечно-суставной

    чувствительности.

    50. Исследование двигательной сферы и рефлексов.

    51. Исследование вегетативного отдела нервной системы.

    52. Исследование рефлекторных кожных зон.

 

Исследование крови, определение гемоглобина НЬ и зарядка меланжеров

    Место проведения занятия - манеж-лаборатория.

    Учебных часов - 2 (28).

План занятия

    1. Взятие для анализа крови.

    2. Определение гемоглобина.

    3. Ознакомление с методикой подготовки меланжеров для работы.

    4. Зарядка меланжеров.

Материальное обеспечение

    Корова, курица, иглы для взятия крови, вата, спирт-ректификат, эфир, спиртовый раствор йода, ножницы Купера (изогнутые по плоскости), гемометры ГС-3, 0,1 раствор соляной кислоты, пробирки Флоринского, дистиллированная вода; меланжеры лейкоцитарные и эритроцитарные, жидкости Тюрка и Гайема, резиновая груша.

Ход занятия

    1. Взятие крови для анализа

    Преподаватель рассказывает и демонстрирует методы взятия крови у

    крупного рогатого скота и птиц. После этого несколько студентов сами

    берут кровь для анализа

    2. Определение гемоглобина

    После демонстрационного определения гемоглобина преподавателем каждый студент производит самостоятельное определение. Гемоглобин определяется колориметрическим методом при помощи гемометра ГС-3 согласно прилагаемой методике. Физиологические колебания количества гемоглобина у животных значительны. Так, у крупного рогатого скота они составляют 9,9-12,9 г%, у лошадей - 8,0-14,0 г%, у овец - 9,0-13,3 г%, у собак-11,0-17,0 г%.

    3. Ознакомление с методикой подготовки меланжеров для работы Меланжеры должны быть чистыми и сухими. Для этого их несколько раз промывают дистиллированной водой, затем спиртом и эфиром. При этом пользуются спринцовками с мягким наконечником. Просушивание меланжеров производится продуванием воздуха через них этой же спринцовкой или шарами Ричардсона до тех пор, пока находящаяся в яйцевидном расширении стеклянная палочка перестанет прилипать к стенке.

    4. Зарядка меланжеров. Меланжеры имеют деления и отметки. Эритроцитарный меланжер имеет метки 0,5; 1,0 на капиллярной части и 101 - выше яйцевидного расширения, лейкоцитарный - соответственно 0,5; 1,0 и 11.

    При зарядке эритроцитарного меланжера кровь набирается в капилляр до отметки 0,5 или 1,0, а разбавитель до 101. При зарядке лейкоцитарного меланжера кровь набирается тоже до отметки 0,5 или 1,0, а разбавитель до 11.

    Разбавителем для эритроцитов является обычно 0,85 %-ный раствор поваренной соли, а для лейкоцитов - жидкость Тюрка.

    После демонстрационной зарядки меланжеров преподавателем студенты работают самостоятельно до получения определенного навыка. Занятия заканчиваются проверкой знаний студентов по пройденному материалу.

     Контрольные вопросы

    1. Кровь, использующая для определения гемоглобина и подсчета форменных элементов

    2. Какие правила следует соблюдать при взятии крови?

    3. Откуда берут кровь для гематологических исследований?

    4. Почему нельзя произвольно менять среднюю пробирку гемометра?

    5. Какие реактивы, и в каком количестве нужны для определения гемоглобина?

    6. Что называется граммпроцентом гемоглобина и как перевести его в единицы Сали и обратно?

    7. Как устроен гемометр ГС-3 и что входит в его компоненты?

    8. На каких принципах основан метод определения гемоглобина по Сали?

    9. Как должен храниться гемометр?

    10. Каково нормальное содержание гемоглобина у животных?

    И. Что означает термин «анемия»?

    12. Какие применяются жидкости для разведения крови?

    13. Как отличить лейкоцитарньш меланжер от эритроцитарного?.

    14. Во сколько раз разводится кровь для подсчета лейкоцитов и эритроцитов?

 

Подсчет количества эритроцитов и определение цветового показателя

    Место проведения занятия - манеж-лаборатория.

    Учебных часов - 2 (29)

План занятия

    1. Подсчет количества эритроцитов в счетных камерах,

    2. Определение цветного показателя.

Материальное обеспечение

    Корова, игла для взятия крови, микроскопы, счетные камеры Горяева, шлифованные покровные стекла, меланжеры эритроцитарные, 0,85 %-ный раствор поваренной соли или жидкость Гайема, вата, плакат сетки Горяева.

    Ход занятия

    1. Подсчет количества эритроцитов в счетных камерах

    В чистую пробирку наливают цитрат натрия. Затем у животного из яремной вены берут кровь для исследования. Далее преподаватель объясняет устройство счетной камеры Горяева, демонстрирует способы подготовки ее к работе, технику зарядки, а также методику подсчета эритроцитов. После этого каждый студент самостоятельно под контролем преподавателя готовит счетные камеры к работе, заправляет меланжеры, и при помощи микроскопа подсчитывает количество эритроцитов.

    Количество эритроцитов у крупного рогатого скота составляет 5,0-7,5 млн/мкл, лошадей - 6,0 - 9,0 млн/ мкл

    2. Определение цветового показателя

    После пояснения преподавателя студенты самостоятельно вычисляют цветовой показатель по формуле:

    гемоглобин X. эритроциты N, гемоглобин N. эритроциты X

    где гемоглобин X и эритроциты X являются показателями исследуемого животного, а гемоглобин N и эритроциты N - средние показатели здоровых животных. Так, средние показатели гемоглобина г/%: у крупного рогатого скота 11,4, у лошадей - 11,0 у овец - 11,15, у собак - 14,0, а средние показатели эритроцитов - соответственно 6,25, 7,5, 9,5 и 6,8 млн/мкл.

    Величина цветового показателя в норме у крупного рогатого скота 0,7-1,1, у лошадей - 0,8-1,2. у овец - 0,5-0,7, у собак - 0,8-1,2. Занятия заканчиваются проверкой знаний студентов по пройденному материалу.

     Контрольные вопросы

    1. Как устроена камера Горяева?

    2. Как определить, притерлось ли шлифованное покровное стекло?

    3. Какова высота камеры и площадь одного малого квадратика?

    4. Почему меланжеры с разведенной кровью осторожно перемешивают, а затем выпускают первые 2-3 капли перед заполнением камеры?

    5. Каких ошибок следует избегать при заполнении камеры?

    6. В каких квадратах сетки Горяева подсчитывают эритроциты?

    7. Какая имеется упрощенная формула подсчета количества эритроцитов в 1 мм крови?

    8. Сколько эритроцитов в 1 мм3 крови у здоровых животных?

    9. Каковы причины увеличения и уменьшения количества эритроцитов у животных, и какими терминами они обозначаются?

    10. Что характеризует ЦП, как он вычисляется и в каких единицах

    выражается?

Определение количества лейкоцитов

    Место проведения занятия - манеж-лаборатория.

    Учебных часов - 2 (30).

План занятия

    1. Подсчет количества лейкоцитов у животных.

    2. Ознакомление с определением количества форменных элементов у птиц.

    3. Ознакомление с безмеланжерным методом определения форменных элементов крови у животных.

Материальное обеспечение

    Корова, овца, курица, иглы для взятия крови, микроскопы, лейкоцитарные и эритроцитарные меланжеры, пробирки с резиновыми пробками, жидкости Тюрка, Гайема, камеры Горяева, шлифованные покровные стекла, пипетки от гемометра Сали, вата, пипетки на 1 5 мл, 0,1 %-ный раствор азура 2 на 0,9 %-ном растворе поваренной соли, плакат сетки Горяева.

Ход занятия

    1. Подсчет количества лейкоцитов у животных

    В начале занятия у животного берут цитрированную кровь для исследования. После пояснения преподавателя студенты заряжают лейкоцитарные меланжеры и в счетных камерах Горяева подсчитывают количество лейкоцитов у животного, приведенного на занятие. Проверяя данные подсчета, преподаватель делает замечания тем студентам, у которых результаты подсчета имеют большие отклонения.

    2. Ознакомление с определением количества форменных элементов крови у птиц

    Методы подсчета форменных элементов крови, используемые у млекопитающих, непригодны для исследования крови у птиц. Это объясняется тем, что эритроциты и тромбоциты птиц в циркулирующей крови имеют ядро и в обычных условиях не дифференцируются. Кроме того, они не разрушаются раствором уксусной кислоты. Поэтому до последнего времени применяли очень трудоемкий метод. Сейчас предложены методы дифференцированного подсчета количества эритроцитов, лейкоцитов и тромбоцитов в одной и той же счетной камере. Наиболее удачной является методика Фоминой.

    После пояснения преподаватель сам заряжает один меланжер, из которого все студенты заряжают свои счетные камеры, производят дифференцированные подсчеты по прилагаемой методике.

    3. Ознакомление с безмеланжерным методом определения форменных элементов крови у животных

    Преподаватель дает пояснения, как нужно подсчитывать форменные элементы крови безмеланжерным методом, после этого студенты самостоятельно проделывают эту работу и сравнивают результаты с данными меланжерного метода исследований. Занятия заканчиваются проверкой знаний студентов по пройденному материалу.

     Контрольные вопросы

    1. Каково нормальное содержание лейкоцитов у животных?

    2. Каково нормальное содержание форменных элементов крови у птиц?

    3. Каковы причины увеличения и уменьшения количества лейкоцитов, и какими терминами они обозначаются?

    4. Как вычислить количество лейкоцитов в 1 мм крови?

    5. Преимущества и недостатки безмеланжерного метода подсчета эритроцитов и лейкоцитов.

 

Приготовление и окраска мазков крови

    Место проведения занятия - манеж-лаборатория.

    Учебных часов - 2 (31).

План занятия

    1. Ознакомление с подготовкой и хранением предметных стекол.

    2. Приготовление мазков.

    3. Фиксация и окраска мазков крови.

Материальное обеспечение

    Корова, иглы для взятия крови, предметные стекла в спирт-эфире и без спирт-эфира, шлифованные стекла для приготовления мазков, камера для окраски мазков, краска для окрашивания мазков, метанол для фиксации мазков, вата, спирт и другие принадлежности для фиксации и окраски мазков.

Ход занятия

    1. Ознакомление с методикой подготовки и хранения предметных стекол

    Преподаватель знакомит студентов с методикой подготовки и хранения предметных стекол. Стекла для мазков должны быть абсолютно чистыми. Стекла, не бывшие в употреблении, сначала моют в холодной воде, затем щеткой с мылом в теплой воде и на 2-3 часа помещают под струю водопровода. После этого вытирают насухо мягкой стираной тряпкой и сохраняют в банке с притертой пробкой в смеси спирта и эфира поровну.

    Если стекла были в употреблении, то подготовка их еще более кропотлива. Их очищают бензином от иммерсионного масла, моют щеткой в теплой воде с мылом, кипятят в растворе гидрокарбоната натрия и несколько часов выдерживают под струей водопроводной воды. Затем протирают насухо и помещают в спирт-эфир.

    Перед применением стекла пинцетом вынимают из спирт-эфира и насухо протирают полотняной тряпочкой. Нельзя стекла брать пальцами за рабочую поверхность, а можно брать только за края и концы.

    2. Приготовление мазков крови

    Для приготовления хороших мазков крови нужна большая тренировка. Поэтому после пояснения и показа преподавателем техники приготовления мазка студенты сначала тренируются на простых предметных стеклах. Потом, когда у них появятся некоторые навыки, преподаватель, раздает им по 1-2 предметных стекла из банки со спирт-эфиром для приготовления зачетного мазка, идущего на фиксацию и окрашивание. Студенты эти мазки высушивают и подписывают.

    3. Фиксация и окраска мазков крови

    Все мазки крови фиксируют и окрашивают согласно прилагаемой методике. Занятия заканчиваются проверкой знаний студентов по пройденному материалу.

     Контрольные вопросы

    1. Как правильно подготовить предметные стекла для приготовления мазков крови?

    2. Как хранить предметные стекла для мазков?

    3. Какова техника приготовления мазка?

    4. Как должен выглядеть правильно приготовленный мазок?

    5. Как нужно фиксировать мазок?

    6. Какими способами окрашивают мазки?

    7. Как хранить неокрашенные и окрашенные мазки?

 

Морфологические особенности клеток крови у животных и птиц

    Место проведения занятия - манеж-лаборатория.

    Учебных часов - 2 (32

План занятия

    1. Морфологические особенности эритроцитов, лейкоцитов и тромбоцитов у сельскохозяйственных животных.

    2. Морфологические особенности эритроцитов, лейкоцитов и тромбоцитов у птиц.

     Материальное обеспечение

    Микроскопы, мазки крови здоровых животных (крупного рогатого скота, лошадей, овец, собак, свиней) и птиц, иммерсионное масло, плакаты по морфологии форменных элементов крови у животных и птиц.

Ход занятия

    Преподаватель сначала объясняет морфологические особенности клеток крови у животных и птиц различных видов. Далее напоминает правила обращения с микроскопом, раздает мазки крови животных одного вида. Студенты рассматривают клетки крови в окрашенных мазках. Когда они найдут все разновидности клеток, встречающихся у здоровых животных этого вида, преподаватель собирает первые и раздает вторые мазки и т. д. Таким образом, студенты просматривают все мазки, с помощью преподавателя осваивают морфологические особенности клеток крови у разных животных и птиц. Занятия заканчиваются проверкой знаний студентов по пройденному материалу.

     Контрольные вопросы

    1. Классификация форменных элементов крови у животных и птиц.

    2. Особенности эритроцитов и тромбоцитов у животных и птиц.

    3. Есть ли различия у лейкоцитов птиц и животных?

 

Выведение лейкограммы

    Место проведения занятия - лаборатория

    Учебных часов - 2 (33).

План занятия

    1. Выведение лейкоцитарной формулы.

    2. Особенности лейкоцитарной формулы у здоровых животных разных видов.

Материальное обеспечение

    Микроскопы, иммерсионное масло, мазки крови здоровых животных (крупного рогатого скота, лошади, собаки) и мазки крови, сделанные и окрашенные самими студентами на прошлом занятии. Плакаты по морфологии форменных элементов крови у животных разных видов.

Ход занятия

    1. Выведение лейкоцитарной формулы

    После пояснения преподавателя студенты выводят лейкоцитарную формулу по «своим» мазкам, т. е. по мазкам, которые сами приготовили, фиксировали и окрашивали на прошлом занятии. Если у кого мазок оказался неудачным или совсем отсутствует (возможно, студент пропустил прошлое занятие и не успел отработать), то преподаватель даст им подходящий мазок из коллекции кафедры. После выведения лейкоформулы преподаватель проверяет результаты. Те, у кого обнаруживаются большие отклонения, выводят лейкоформулу повторно.

    2. Особенности лейкоформулы у здоровых животных разных видов

    После выведения лейкоформулы по мазку крови крупного рогатого скота преподаватель дает студентам мазок крови лошади, и они выводят лейкоформулу. Преподаватель проверяет результаты исследований и проводит сравнительную оценку лейкоформулы у этих животных.

    При наличии достаточного времени преподаватель раздает и третий мазок для выведения лейкоформулы. Занятия заканчиваются проверкой знаний студентов по пройденному материалу.

     Контрольные вопросы

    1. Что называется лейкоформулой?

    2. В каком порядке записывают отдельные виды лейкоцитов в лейкоформуле?

    3. Методика выведения лейкоформулы.

    4. Каковы особенности лейкоформулы у животных разных видов?

 

Изменение лейкограммы при патологии

    Место проведения занятия - лаборатория.

    Учебных часов - 2 (34).

План занятия

    1. Особенности лейкоцитарной формулы при хронических воспалительных процессах.

    2. Особенности лейкоцитарной формулы при лейкозе.

     Материальное обеспечение

    Микроскопы, иммерсионное масло, мазки крови при острых и хронических воспалительных процессах и при лейкозе, плакаты по морфологии лейкоцитов у разных видов животных.

    Ход занятия

    По заданию преподавателя студенты выводят лейкоцитарную формулу сначала по первому мазку крови, потом по второму и третьему. При необходимости преподаватель помогает студенту определить разновидность клеток крови. Во всех случаях результагы подсчета заранее известны преподавателю, что позволяет контролировать качество работы студентов. Далее преподаватель проверяет результаты подсчета по каждому мазку и дает подробный анализ изменений картины крови при этих патологических процессах.

    Занятия заканчиваются проверкой знаний студентов по пройденному материалу.

     Контрольные вопросы

    1. Чем характеризуются изменения лейкоцитарной формулы при острых воспалительных процессах?

    2. Особенности лейкоформулы при гельминтозах.

    3. Изменения лейкоформулы при бронхопневмонии.

    4. Изменения лейкоформулы при лейкозах.

 

Курсовая работа

    Учебных часов - 28,

    том числе - 21 в учебно-опытном хозяйстве СГАУ и 7 - в клинике

    Работу студенты выполняют после прохождения программного курса клинических исследований, лабораторного анализа мочи и морфологических исследований крови.

    эту работу, студенты получают представление о том, как производится полное клинические исследование животных, и как увязываются данные лабораторных исследований с клиническими показателями. Одновременно с этим студенты получают определенные навыки в оформлении некоторых разделов истории болезни, заполнении бланков и состаачении графиков дополнительных исследований.

    Таким образом, настоящая работа является подготовительным этапом для выполнения курсовых работ (историй болезни) по другим клиническим дисциплинам. Работа выполняется под руководством преподавателя. На кафедре составляется подробный график проведения этих занятий и заранее доводится до сведения студентов. Данная тема делится на 4 занятия.

Занятие первое

    Место проведения занятия - учебно-опытное хозяйство СтГАУ.

    Учебных часов - 7.

     Материальное обеспечение: поголовье в родильном отделении, инструменты для фиксации и клинических исследований животных и для взятия крови. Стеклянные баночки для сбора мочи студенты приносят сами.

    Методика проведения. Сначала преподаватель объясняет порядок выполнения работы, сообщает необходимые сведения о животных, затем разбивает студентов на группы по 2 человека и выделяет каждой группе одно животное. Студенты проводят полное клиническое исследование «своего» животного, берут кровь и собирают мочу для лабораторных анализов. Данные клинических исследований они записывают в свою тетрадь, материал для лабораторных исследований доставляют в лабораторию кафедры.

Занятие второе

    Место проведения занятия - учебно-опытное хозяйство

    Учебных часов - 7.

     Материальное обеспечение. То же, что и в первый день.

    Методика проведения. Каждая группа студентов под руководством преподавателя продолжает клиническое исследование животных.

Занятие третье

    Место проведения занятия - учебно-опытное хозяйство СтГАУ.

    Учебных часов - 7.

     Материальное обеспечение. То же, что на первом и втором занятиях.

    Методика проведения. Под руководством преподавателя студенты каждой группы заканчивают исследование животного, получают кровь и мочу для исследования.

     Занятие четвертое

    Место проведения занятия - лаборатория.

    Учебных часов - 7.

     Материальное обеспечение. Определяют НЬ, СОЭ, подсчитывают

    эритроциты, лейкоциты, ЦП, СГЭ и исследуют мочу (физические,

    химические показатели и наличие осадков). Преподаватель помогает

    студентам сделать заключение о состоянии здоровья исследованных

    животных.

Заключение

    Полное оформление курсовой работы студенты проводят во внеурочное время. Хотя одно животное исследуется двумя студентами, но курсовую работу пишет и представляет каждый из них самостоятельно. Курсовая работа представляется на проверку не позднее, чем через 1-2 недели после завершения всех исследований. При неудовлетворительной оценке студенты не допускаются к экзамену, а работа выполняется ими повторно на других животных.

 

Определение СОЭ, билирубина и сахара в крови

    Место проведения занятия - манеж-лаборатория.

    Учебных часов - 2 (35)

План занятия

    1. Определение скорости оседания эритроцитов

    2. Определение биллирубина в сыворотке крови.

    3. Определение сахара в крови.

Материальное обеспечение

    Корова, лошадь, иглы и пробирки для взятия крови, аппарат

    Панченкова, эритроседиометр Неводова, комплект посуды и реактивов, реактивы для определения биллирубина, сахара, ФЭК, сыворотка крови.

    Ход занятия

    Студенты выполняют намеченную работу, а преподаватель руководит и по ходу работы дает пояснения. Студенты сначала берут кровь от лошади и крупного рогатого скота, заряжают приборы для определения скорости оседания эритроцитов, записывают время постановки опыта, составляют график регистрации скорости оседания эритроцитов и периодически отмечают по истечении времени… После постановки опыта по определению скорости оседания эритроцитов, не дожидаясь окончания этой работы, студенты приступают к определению биллирубйна в сыворотке крови, а потом определяют сахар в крови. Методики этих исследований прилагаются, а их результаты заранее известны преподавателю. После определения биллирубина и сахара студенты показывают преподавателю полученные результаты. Затем они моют всю посуду (пробирки и пр.) и приводят свои рабочие места в порядок. Занятия заканчиваются проверкой знаний студентов по пройденному материалу.

     Контрольные вопросы

    1. Какова скорость оседания эритроцитов у различных животных?

    2. Как заряжается аппарат Панченкова?

    3. Как изменяется СОЭ при патологических состояниях у животных?

    4. Какова диагностическая ценность изменения СОЭ?

    5. Каков уровень биллирубина в норме у различных животных?

    6. Какие существуют методы определения биллирубина в сыворотке крови?

    7. Какие виды биллирубина бывают в крови в норме и при патологии?

    8. Каков уровень сахара у животных различных видов в норме и при патологических исследованиях?

 

Определение белка, кислотной емкости и каротина крови

    Место проведения занятия - лаборатория.

    Учебных часов - 2 (36).

План занятия

    1. Определение общего белка в сыворотке крови.

    2. Определение каротина в сыворотке крови.

    3. Определение кислотной емкости крови.

Материальное обеспечение

    Сыворотка крови коровы, рефрактометр ИРФ-22, РЛ-2, ФЭК, вода дистиллированная, вата, посуда и реактивы для определения каротина и кислотной емкости крови.

Ход занятия

    Преподаватель дает краткое пояснение по каждому вопросу, и студенты самостоятельно определяют концентрацию белка, каротина и кислотной емкости крови. Методики определения прилагаются отдельно. Преподавателю заранее известны результаты исследований.

    Преподаватель контролирует, а потом принимает работу каждого студента. Если работа засчитывается, то студенты моют посуду и наводят порядок на своих рабочих местах. Если 'обнаруживаются неточные результаты, то этот раздел работы студенты выполняют повторно. Занятия заканчиваются проверкой знаний студентов по пройденному материалу.

     Контрольные вопросы

    1. Какими методами определяется концентрация белка и белковых фракций в сыворотке крови, и в каких единицах она выражается?

    2. Каков уровень белка и его фракций в норме и при различных патологических состояниях?

    3. Какими методами определяется кислотная емкость крови?

    4. Каков нормальный уровень кислотной емкости у различных животных?

    5. Что такое ацидоз и алкалоз?

    6. Сколько каротина в норме у животных разных видов?

    7. Как изменяется концентрация каротина и каковы причины этих изменений?

 

Определение макроэлементов в сыворотке крови

    Место проведения занятия - лаборатория. Учебных часов - 2 (37).

План занятия

    1. Определение кальция в сыворотке крови.

    2. Определение неорганического фосфора в сыворотке крови.

Материальное обеспечение

    Сыворотка крови коровы, реактивы и оборудование для определения кальция и неорганического фосфора в сыворотке крови, согласно отдельно прилагаемым методикам.

Ход занятия

    Студенты проводят определение кальция и неорганического фосфора в сыворотке крови, согласно прилагаемым отдельно методикам. Результаты исследований этих проб сыворотки крови заранее известны преподавателю. Ход самостоятельной работы контролируется преподавателем.

    После окончания исследований преподаватель принимает работу у каждого студента. Потом студенты моют посуду и приводят свои рабочие места в порядок. Занятия заканчиваются проверкой знаний студентов по пройденному материалу.

     Контрольные вопросы

    1. Какова норма кальция в сыворотке крови животных разных видов?

    2. Какова норма неорганического фосфора в сыворотке крови разных видов животных?

    3. Как изменяется уровень кальция при патологических состояниях?

    4. Каково соотношение кальция и фосфора у здоровых животных?

    5. Как изменяется уровень фосфора при патологических состояниях?

 

Коллоквиум по системе крови

    Место проведения занятия - лаборатория.

    Учебных часов - 2 (38).

Ход занятия

    Сначала преподаватель предлагает студентам сложить в сумки записи; лекций, практических занятий, учебную, дополнительную и другую литературу. Потом он задает студентам вопросы по данному разделу. Если студент не ответил или дал неполный ответ, то преподаватель спрашивает у другого студента. За ответы преподаватель ставит оценки в журнале по пятибалльной системе. В конце разбора каждого вопроса преподаватель делает краткое резюме. Студенты, не сдавшие коллоквиум на занятии, сдают его во вне учебное время.

     Контрольные вопросы

    1. Клиническое значение исследования системы крови, история ветеринарной гематологии и достижения науки в этой области.

    2. Общая характеристика состава крови и механизм развития ее форменных элементов.

    3. Схема и показания гематологических исследований.

    4. Способы получения крови и количественные методы определения ее форменных элементов.

    5. Морфологические особенности эритроцитов и их патологические изменения.

    6. Морфологические особенности лейкоцитов и их патологические изменения.

    7. Лейкоцитарная формула, ее определение и изменения.

    8. Лейкоцитозы и их диагностическое значение.

    9. Лейкопении и их диагностическое значение.

    10. Лейкоцитарный профиль по Мошковскому.

    11. Гематологический профиль по Домрачеву-Восканяну.

    12. Определение физических свойств крови.

    13. Определение химического состава крови.

    14. Семиотика анемических состояний у животных и классификация анемии.

    15. Синдром постгеморрагической анемии.

    16. Синдром гемолитической анемии.

    17. Синдром генопластической анемии.

    18. Синдром геморрагических диатезов.

 

Устройство и оборудование рентгеновского кабинета

    Место проведения занятия - рентгеновский кабинет.

    Учебных часов - 2(39).

План занятия

    1. Ознакомление с рентгенодиагностическим кабинетом.

    2. Ознакомление с устройством рентгеновской аппаратуры.

    3. Ознакомление с техникой работы в рентгеновском кабинете и мерами защиты от рентгеновских лучей.

Материальное обеспечение

    Защитные фартуки и перчатки из просвинцованной резины.

Ход занятия

    1. Ознакомление с рентгенодиагностическим кабинетом

    Преподаватель знакомит студентов с ветеринарным рентгенодиагностическим кабинетом, имеющимся в институте.

    Рентгеновским кабинетом называется совокупность помещений, где располагается рентгеновская аппаратура и вспомогательное оборудование, предназначенное для рентгенологического исследования. Различают рентгеновские кабинеты, которые назначены для диагностических и терапевтических целей. У нас на кафедре имеется только рентгенодиагностический кабинет. Работа всех ветеринарных рентгеновских кабинетов контролируется соответствующими учреждениями (санэпидстанцией и рентгеностанцией) Министерства здравоохранения РФ. Рентгенодиагностические кабинеты включают в себя процедурную, комнату с пультом управления, фотолабораторию, комнату врача.

    Общие требования к рентгеновскому кабинету. Помещение рентгеновского кабинета должно быть сухим, высотой не менее 3,5 м. Пол должен быть сделан из материала: дерева или линолеума по деревянному настилу. Помещение оборудуется принудительной приточно-вытяжной вентиляцией с подогревом, 6-кратным обменом воздуха в час. Желательно рентгеновский кабинет оборудовать в одноэтажном здании без подвалов. Причем, в смежных частях здания не должно быть жилых комнат. Температура в кабинете должна быть в пределах +20°С. В рентгеновском кабинете должна иметься надежная защита от рентгеновских лучей и электрического тока, в каждой комнате - углекислотные огнетушители.

    Процедурная - та часть рентгеновского кабинета, в которой проводятся рентгеновские процедуры. Она должна иметь естественное освещение с отношением площади окон к площади пола 1: 6. Не допускается заделка окон наглухо, заклеивание оконных стекол бумагой и закрашивание их непрозрачной краской. Кроме этого, помещение должно иметь две системы электрического освещения: общее и рабочее. Рабочее освещение должно снабжаться энергией от той же сети, что и аппарат, а общее освещение - от другой сети. Все окна и двери должны быть оборудованы защитными средствами от рентгеновских лучей, иметь темные шторы из светонепроницаемого материала для создания в комнате абсолютной темноты. Согласно ныне действующей инструкции, площадь процедурной должна равняться 42 м2, т. е. рассчитана на современный стационарный аппарат с двумя рабочими местами, точнее с двумя рентгеновскими трубками. На каждый дополнительный рентгеновский аппарат площадью должна быть увеличена на 10 м2.

    Комната с пультом управления - та часть рентгеновского кабинета, из которого производится управление аппаратом. Основное назначение этого помещения - вывести рентгенлаборанта из зоны действия прямого и рассеянного ионизирующего излучения. Комната управления сообщается с процедурной при помощи смотрового окна с защитным просвинцованным стеклом и защитной дверью.

    Процедурная и комната управления оборудуются надежной двусторонней (селекторной) связью для переговоров врача и лаборанта.

    В этой комнате находится пульт управления, устанавливается стол для рентгенлаборанта, который производит регистрацию всех прошедших через кабинет пациентов, ведет учет документации и т. д. Для хранения защитной спецодежды (фартуки, перчатки из просвинцованной резины) в комнате управления должны иметься специальные шкафы. Площадь комнаты 10 м2 на основной аппарат и по 2 м2 на каждый дополнительный аппарат.

    Фотолаборатория - помещение, предназначенное для химической обработки рентгеновских снимков. Для создания абсолютной темноты окна и двери должны иметь темные шторы из светонепроницаемого материала. В лаборатории должны иметься фонари для красного и белого

    света, установлены автоматическая проявочная машина (танки для проявления), сушильный электрический шкаф, рабочий стол, негатоскоп, шкаф для хранения рентгеновских пленок и фотореактивов. Площадь комнаты - 10 м2 на основной аппарат и по 2 м2 на каждый дополнительный аппарат.

    2. Ознакомление с устройством рентгеновской аппаратуры

    Преподаватель знакомит студентов с устройством стационарного аппарата, установленного в рентгеновском кабинете. В нашем рентгеновском кабинете установлен стационарный медицинский рентгеновский аппарат РУМ-20, который состоит из следующих узлов:

    1) универсальный штатив;

    2) стол для снимков со штативом;

    3) опора для вертикальных снимков;

    4) приспособление для томографии;

    5) высоковольтное генераторное устройство;

    6) ширма защитная малая;

    7) пульт управления;

    8) распределительный щит и рубильник.

    Аппарат питается от трехфазной сети переменного тока напряжением 380 В. Мощность, потребляемая аппаратом, 40 кВт в режиме снимков и до 2 кВт в режиме просвечивания. Рабочее напряжение при снимках от 40 до 145 кВ, а при просвечивании от 40 до 100 кВ. Анодный ток 15-400 мА при съемках и 2-10 мА при просвечивании.

    3. Ознакомление с техникой работы в рентгенкабинете

    Рентгеновские кабинеты до ввода их в эксплуатацию должны быть приняты комиссией в составе представителей рентгенстанции, санэпидстанции, пожарной инспекцией и той организацией, к которой относится данный рентгеновский кабинет.

    В рентгеновском кабинете должна быть надежная защита от рентгеновских лучей и электрического тока.

    Защита от рентгеновских лучей. Защитные устройства от рентгеновских лучей делятся на стационарные и нестационарные.

    Стационарными защитными устройствами называются такие, которые не могут перемещаться (защитные покрытия стен, пола и т. д.)

    Расчет толщины стационарных защитных устройств производится с учетом пятикратного запаса по мощности дозы.

    Нестационарными защитными устройствами называются такие, которые могут быть перемещены (ширмы, защитные кожухи трубок, перчатки, фартуки, чепчики и др.). Расчет толщины нестационарных защитных средств производится без учета пятикратного запаса на мощности дозы.

    Защита от электрического тока. Металлические части рентгеновского аппарата и других электрических устройств должны быть заземлены. Мытье полов в рентгеновском кабинете производится после окончания работы, но ни в коем случае перед началом ее.

    Технический осмотр аппарата необходимо проводить не реже одного раза в месяц.

    Помещение рентгеновского кабинета может использоваться по его прямому назначению. Проведение в кабинете каких-либо других работ, не связанных с использованием аппарата, не разрешается.

    К работе в рентгеновском кабинете допускаются лица не моложе 18 лет. Самостоятельная эксплуатация и техническое обслуживание рентгеновской аппаратуры разрешается только лицам, получившим специальную подготовку.

    Все лица, работающие в рентгеновском кабинете, должны пройти вводный инструктаж по технике безопасности. Повторные инструктажи должны проводиться не реже одного раза в год.

    Лица, работающие в рентгеновском кабинете, не должны служить объектом экспериментальных исследований и подвергать себя, в частности свои руки, освещению рентгеновскими лучами.

    Рабочий день у врача-рентгенолога и рентгенлаборанта сокращен и строго регламентирован. У них 5-часовой рабочий день, 30-часовая рабочая неделя. Из 30-часовой рабочей недели за аппаратом они должны находиться не более 7,5 час. Более того, работа ограничена и по объему. Для ветеринарных врачей-рентгенологов нет конкретных указаний по объему работы, за исключением сокращения рабочего дня. Поэтому за основу нужно брать нормативы, предложенные для медицинских врачей-рентгенологов. Правда, эти нормативы не могут быть механически переняты, но и в то же время дают основание для ориентировочного определения объема работы. Так, норма нагрузки за рабочий день у медицинских врачей-ренгенологов 37-42 рентгеновские единицы. За одну рентгеновскую единицу принята такая нагрузка, которая создается при рентгеноскопии грудной клетки одного человека, времени на это затрачивается около минуты. Есть более трудоемкие методы рентгеновских исследований, в таких случаях количество исследований сокращается. Так, например, проводить рентгеноскопию желудка разрешается не более, чем у четырех человек за рабочий день.

    Абсолютной защиты от рентгеновских лучей нет. Допустимой дозой считается 0,1 рентгена за рабочую неделю. Занятия заканчиваются проверкой знаний студентов по пройденному материалу.

     Контрольные вопросы

    1. Каково устройство рентгеновского кабинета?

    2. Устройство стационарного рентгеновского аппарата РУМ-20.

    3. Возникновение, свойства и биологическое действие рентгеновских лучей.

    4. Меры защиты от рентгеновских лучей и электрического тока.

 

Рентгеноскопия

    Место проведения занятия - рентгеновский кабинет.

    Учебных часов - 2 (40

План занятия

    1. Ознакомление с методами фиксации животных при рентгенологических исследованиях.

    2. Рентгеноскопия внутренних органов без применения контрастных веществ.

    3. Рентгеноскопия внутренних органов с применением котрастных веществ.

Материальное обеспечение

    Защитные фартуки и перчатки из просвинцованной резины, контрастное вещество с высоким атомным весом, кефир, чашечка для кефира с контрастным веществом, ложечка, молодняк крупного рогатого скота, собака.

Ход занятия

    1. Ознакомление с методами фиксации животных при рентгенологических исследованиях

    Преподаватель дает пояснения о методах фиксации животных в рентгеновском кабинете. При рентгенологических исследованиях животных нужно фиксировать. Желательно фиксировать их в стоячем положении. Удобнее всего исследовать лошадей и мелких животных. Труднее исследовать крупный рогатый скот. У передвижной ветеринарной рентгеновской установки РУВ-1 имеется специальный фиксационный станок, который дает возможность фиксировать и крупных и мелких животных.

    2. Рентгеноскопия внутренних органов без применения контрастных веществ

    Сначала преподаватель дает пояснения, потом проводит рентгеноскопию шеи, органов грудной и брюшной полостей животных без применения контрастных веществ. При этом он дает дополнительные пояснения, а студенты слушают и наблюдают за рентгеновским изображением органов на экране аппарата.

    При рентгеноскопии изображение исследуемого объекта получается на флуоресцирующем экране. Он покрыт специальным составом, который светится под действием рентгеновских лучей. Но экран светится слабо. Изображение можно рассмотреть лишь в затемненном помещении после 10-15-минутной темновой адаптации.

    3. Рентгеноскопия внутренних органов с применением контрастных веществ

    После необходимой темновой адаптации преподаватель проводит рентгеноскопию органов пищеварения у собаки с применением

    контрастного вещества. Студенты наблюдают на экране аппарата

    прохождение контрастного вещества по пищеводу и накопление в желудке, а преподаватель дает пояснения. Занятия заканчиваются проверкой знаний студентов по пройденному материалу.

     Контрольные вопросы

    1. Как фиксируют животных при рентгеноскопии различных частей тела?

    2. Рентгеноскопия, ее достоинства и недостатки.

    3. Контрастные вещества и методика их применения.

    4. Какие патологические процессы можно установить при рентгеноскопии без применения и с применением контрастных веществ?

 

Рентгенография

    Место проведения занятия - рентгеновский кабинет.

    Учебных часов - 2 (40).

План занятия

    1. Ознакомление с методами укладки при рентгенографии.

    2. Рентгенография внутренних органов и костно-суставного аппарата.

    3. Обработка экспонированных рентгенограмм.

Материальное обеспечение

    Фартуки и перчатки из просвинцованной резины, рентгеновские кассеты и пленки, готовые фотореактивы (проявитель и закрепитель) для химической обработки рентгенограмм.

Ход занятия

    1. Ознакомление с методами укладки при рентгенографии Преподаватель дает пояснения и демонстрирует на животных

    различные виды укладки. Термин «укладка» означает положение

    исследуемого участка тела по отношению к кассете с пленкой и

    направлению рентгеновских лучей.

    Для получения снимков различных участков костно-суставного

    аппарата разработаны наиболее целесообразные укладки.

    2. Рентгенография внутренних органов и костно-суставного аппарата

    После пояснения преподавателя студенты получают несколько рентгеновских снимков внутренних органов и костно-суставного аппарата.

    Рентгенография - получение теневого рентгеновского изображения на пленке.

    Рентгенография производится на свету. При этом вместо экрана прикладывается рентгеновская кассета с рентгеновской пленкой.

    3. Обработка экспонированных рентгенограмм

    Преподаватель объясняет методику химической обработки экспонированных пленок и при красном свете в фотолаборатории студенты проявляют, промывают и закрепляют полученные на занятии рентгенограммы. Их работу контролируют преподаватели и лаборант.

    При рентгенографии под действием рентгеновских лучей на пленке образуется скрытое рентгеновское изображение, которое становится видимым при проявлении. При этом на пленке получается негативное изображение, т. е. те участки, которые на экране были светлыми, на пленке становятся темными и наоборот. Занятия заканчиваются проверкой знаний студентов по пройденному материалу.

     Контрольные вопросы

    1. Какие методы укладки применяются при рентгенографии костно-суставного аппарата?

    2. Методика рентгенографии животных.

    3. Рентгенодиагностика нарушений минерального обмена у животных.

    4. Методика обработки экспонированных пленок.

Интерпретация рентгенограмм

    Место проведения занятия - рентгенкабинет. Учебных часов - 2(42).

План занятия

    1. Методика изучения рентгеновских снимков.

    2. Изучение рентгеновских снимков костно-суставного аппарата в норме и при различных поражениях.

    3. Изучение рентгеновских снимков органов грудной полости в норме и при различных заболеваниях.

    4. Изучение рентгеновских снимков органов пищеварения и мочеполовой системы у здоровых и больных животных.

Материальное обеспечение

    Негатоскоп, набор рентгенограмм костно-суставного аппарата, органов грудной полости, пищеварения и мочеполовой системы в норме и при различных заболеваниях.

Ход занятия

    1. Методика изучения рентгеновских снимков

    Преподаватель объясняет методику изучения рентгеновских снимков, демонстрируя некоторые разновидности рентгенограмм.

    Рентгенограммой или рентгеновским снимком называют пленку, имеющую рентгеновское изображение какого-либо объекта.

    Все рентгенограммы должны быть подвергнуты маркировке. Так, при рентгенографии парных органов маркируют стороны (если конечности, то правая или левая, передняя или задняя), проекции (боковая, прямая или скошенная). После проявления, закрепления и сушки пленки подписывают номер рентгенограммы, вид. пол, возраст пациента и дату исследования. Таков первый, так называемый, производственный этап рентгенограммы. Далее начинается диагностический этап - изучение рентгенограммы.

    Чтобы не пропустить важные изменения, рентгеновский снимок нужно изучить по определенному плану, в определенной последовательности.

    I. Общий осмотр рентгенограммы.

    Изучение рентгенограммы начинают с общего осмотра. К нему относятся:

    1. Исключение дефектов пленки. При этом осматривают обе стороны пленки в отраженном свете под косым углом. Возможные дефекты пленки - отпечатки пальцев, царапины, пятна, нанесенные в процессе химической обработки и сушки снятой пленки.

    2. Установление объекта снимка (части тела, органа).

    3. Определение вида снимка (обзорные, прицельные или серийные). Если рентгенограмма охватывает изображение части тела (голова, сустав и пр.) или целого органа (легкие и т. д.), то ее называют обзорной. Если рентгенограмма сделана для небольшой части органа, где имеется только патологический процесс, то ее называют прицельной. Для изучения разных фаз деятельности органа прибегают к последователъным снимкам. Эти рентгенограммы называются серийными, а их совокупность - серией снимков.

    4. Определение проекции, в которой была проведена съемка, и правильное расположение рентгенограммы на негатоскопе. Рентгеновский снимок любой части тела подвешивают на негатоскопе в таком положении, как будто врач непосредственно смотрит на данную часть тела пациента со стороны, приложенной при съемке кассеты, т. е. против хода рентгеновского излучения.

    5. Оценка качества снимка. Высокое качество снимка дает возможность установить более тонкие изменения, а низкое качество не позволяет установить даже более крупные, грубые изменения. Различают фотографическое и диагностическое качество снимка. Первое характеризуется в основном резкостью и контрастностью изображения. На хорошем снимке участки пленки, не прикрытые снимаемым объектом, отличаются равномерным и интенсивным почернением. На снимке хорошо видна структура органа и видно много деталей. Диагностическое качество зависит, конечно, и от фотографического качества и ряда других факторов. На снимке должно быть изображение всего органа без искажений и со всеми деталями, представляющими большой диагностический интерес.

    6. Выявление изменений в элементах рентгеновской картины исследуемого участка тела или органа.

    II. Детальное изучение рентгенограммы. Закончив общий осмотр рентгенограммы, врач приступает к детальному изучению всех изменений элементов снимка данного объекта. При этом врач вновь и вновь должен окинуть взором рентгеновское изображение в целом. Найденные изменения оцениваются во взаимосвязи друг с другом в рамках всей картины.

    III. Формулировка заключения. Сопоставляют чисто рентгенологические признаки со всеми клиническими данными и ставят более точный диагноз. Такая методика изучения рентгенограммы кажется очень трудоемкой, однако, это только на первый взгляд и на первых порах работы. Опытный специалист очень быстро проделывает весь этот путь.

    При взгляде на снимок он порой сразу охватывает важную деталь, которая, как нить, кратчайшим путем выводит его из диагностического затруднения. Но такая способность вырабатывается не сразу, а только на базе методически последовательного анализа множества разнообразных снимков.

    2. Изучение рентгеновских снимков костно-суставного аппарата в норме и при различных поражениях

    На основании изложенной методики преподаватель проводит демонстрационное изучение рентгенограмм костно-суставного аппарата сначала у здоровых животных, а потом при различных видах патологии. При этом преподаватель не просто рассказывает, а привлекает к изучению и самих студентов, задавая им попутные вопросы по выяснению отдельных элементов и признаков рентгенограммы.

    3. Изучение рентгеновских снимков органов грудной полости в норме и при различных заболеваниях

    Преподаватель проводит демонстрационное изучение рентгенограмм органов грудной полости у здоровых и больных животных. Изучение проводится с участием самих студентов.

    4. Изучение рентгеновских снимков органов пищеварения и мочеполовой системы у здоровых и больных животных

    Производится демонстрационное изучение рентгенограмм органов пищеварения и мочеполовой системы у здоровых и больных животных. При этом преподаватель больше задает вопросы и больше привлекает самих студентов к изучению рентгенограмм, стараясь направить их внимание на правильное определение как физиологических, так и патологических элементов изображения изучаемого объекта. Занятия заканчиваются проверкой знаний студентов по пройденному материалу.

     Контрольные вопросы

    1. Методика читки рентгенограмм.

    2. Патологические процессы в костях, сопровождающиеся уменьшением костного вещества.

    3. Патологические процессы в костях, сопровождающиеся увеличением костного вещества.

    4. Какие поражения суставов доступны рентгенологической диагностике?

    5. Рентгенологическая семиотика поражения органов пищеварения.

    6. Рентгенологическая семиотика поражения органов грудной полости.

    7. Какие методы рентгенологических исследований применяются для диагностики поражений мочеполовой системы?

Рекомендуемая литература

    1. Клиническая диагностика внутренних незаразных болезней животных / Уша Б.В., Беляков И.М. - 3-е изд., 1998.

    2. Клиническая диагностика внутренних незаразных болезней животных / Смирнов А.М. и др. - 2-е изд., перераб. и доп. - М.: Агропромиздат. 1988. - 512с.

    3. Клиническая диагностика внутренних незаразных болезней сельскохозяйственных животных / Смирнов А.М. и др. - Л.: Колос., 1981. - 447с.

    4. Диагностика незаразных болезней животных с применением вычислительной техники. - М.: Агропромиздат, 1989. - 360 с.

    5. Практикум по клинической диагностике с рентгенологией / Беляков И.М. и др. - М.: Колос, 1992. - 286 с.

    6. Практикум по диагностике внутренних незаразных болезней сельскохозяйственных животных / Смирнов А.М. и др. - 2-изд., перераб. и доп. - М.: Агропромиздат, 1985. - 225 с,

    7. Диагностика внутренних болезней домашних животных / Васильев А.В. - М.: Сельхозгиз, 1956. - 488 с.

    8. Линденбрантен Л.Д. Методика изучения рентгеновских снимков.

    9. Мурашко В.В. и др. Электрокардиография.- М.: Медицина, 1987. - 256 с.

    10. Липин В А. и др. Ветеринарная рентгенология. - М.: Колос, 1966. - 248 с.

    11. Рабочие программы по дисциплине «Клиническая диагностика с основами рентгенологии» для студентов 3 курса факультета ветеринарной медицины.

This file was created with BookDesigner program

bookdesigner@the-ebook.org

14.06.2008