Тема 12. Основні паразитози птиці.

Основні методи лабораторної діагностики, боротьби і профілактики гельмінтозів птиці

Лабораторна діагностика протозоозів птиці та арахно-ентомозів, сучасні методи боротьби і профілактики

Аскарідіоз — Ascaridiosis.

Етіологія. Захворювання викликається нематодою Ascaridia galli, що паразитує в тонкому відділі кишечника курей, індичок, цесарок, іноді гусаків і качок. Розмір самця 26—70 мм, самки — 65— 100 мм. Яйця овальної форми, завдовжки 0,08 мм і шириною 0,05 мм. Аскарідій розвиваються без участі проміжного господаря. Після запліднення самка відкладає в тонкому відділі кишечника яйця, які виділяються в зовнішнє середовище. Свіжовиділені яйця для птиці не заразливі. Для досягнення інвазивної стадії в яйці повинна сформуватися личинка.

Яйця розбиваються при температурі 13—40 °С. Чим вище температура, тим швидше личинка линяє. Зимою яйця не развиваются, але залишаються життєздатними. Прямі сонячні промені діють на них згубно.

Птиця заражається через шлунково-кишковий тракт. У шлунку або кишечнику яйця руйнуються і личинки, що звільнилися, упроваджуються між ворсинками в просвіти ліберкюнових залоз слизистої оболонки тонкого відділу кишечника. Тут протягом 17—18 днів відбувається їх тканинна фаза розвитку, після чого вони знов виходять в просвіт кишечника, де і розвиваються до статевозрілої форми. Цикл розвитку аскарідій в організмі курей триває 35— 58 днів, у курчат місячного віку — 30—35 днів. У організмі курей аскарідій живуть близько року.

Епізоотологія. Захворювання частіше "зустрічається в господарствах, де мають місце порушення зоогігієнічних умов змісту і годування птиці. Залежно від різних кліматичних умов і сезону року терміни появи хвороби і тривалість інвазії не однакові.

Зараження курей аскарідіямі в багато в чому залежить від системи змісту. При ізольованому вирощуванні молодняка і дорослих курней аскаридіоза серед курчат, як правило, не буває. Зараженість гельмінтами може досягти найвищого ступеня при сумісному змісті різновікового птиці, а також при цілорічному комплектуванні молодняком маткових пташників. Вирощування курчат в батареях до 45-денного віку і клітинний зміст курей-несучок виключають можливість масового розповсюдження аскаридіоза.

Клінічні ознаки залежать від віку птиці, ступеня її зараження і характеру годування. У дорослих особин захворювання іноді протікає безсимптомно. Найбільш характерними ознаками хвороби, особливо у молодняка, є анемія видимих слизистих оболонок, гребеня і кінцівок, відставання в зростанні, вз'ерошеність пір'я, відсутність апетиту, млявість і ін. Іноді наголошується пронос з кров'ю. У хворих курей помітно знижується яйценоскість.

Патологоанатомічні зміни. На місці локалізації личинок аскарідій слизиста оболонка кишечника набрякла і нерідко пронизана точковими кровиливами. Такі зміни можна спостерігати впродовж 17 днів після зараження. Потім молоді аськарідій виходять в просвіт кишечника і запальні процеси стихають. Вже в початковій стадії аскаридіоза у хворого птиці наголошуються атрофія скелетної мускулатури і паранхіматозних органів, блідість слизистих оболонок, шкірного покриву і сережок. Останні стають сухими і зморщуються. При сильному ступені інвазії кишечника статевозрілими аскарідіямі може спостерігатися розрив його стінок з подальшим виходом гельмінтів в черевну порожнину і розвитком перитоніту. У окремих випадках гельмінти можуть виявлятися в подскорлупній частині яйця або в жовтковій протоці печінки.

Діагноз ставлять на підставі клінічних ознак, результатів патологоанатомічного дослідження і виявлення яєць у фекаліях при дослідженні методом Фюллеборна або Дар-лінга, а також даних посмертного розтину.

При мікроскопічному дослідженні посліду курей необхідно мати на увазі, що за формою яйця аськарідій дуже схожі з яйцями гетеракисов, хоча вони і декілька більше. У разі потреби диференціювання їх слід вимірювати. При розтині тонкого відділу кишечника виявляють статевозрілі форми паразитів.

Заходи боротьби і профілактики. Для лікування аськаридіоза курей використовують в основному фенотіазін і соли піперазіна.

Фенотіазін призначають в суміші з кормом в дозі: курчатам з 15-денного до 2-місячного віку — 2,5—3 г на 1 кг маси тіла, курчатам старшого віку і дорослим курям 2—2,2 г/кг. При цьому в перший день дають 2/3 лікувальної дози, в другій — 1/3. Птиці годують натщесерце. Разову кількість корму зменшують на 25 %. Слабкі кури виділяють в окрему групу і обробляють індивідуально фенотіазіном в болюсах. У малих дозах він впливає на личинок аськарідій, що тільки що вийшли з яєць, і, отже, володіє високою профілактичною дією. Тому в період табірного змісту птиці препарат призначають в дозі 0,2—0,3 г на 1 кг маси птиці з кормом щодня протягом 25—30 днів. Після 2-місячної перерви курс лікування повторюють. Фенотіазін можна давати з кормом раз в тиждень протягом теплого періоду року в дозі 0,1 г на голову.

У практиці вітчизняного і зарубіжного птахівництва при аскаридіозі курей широко застосовують піперазину гексагидрат, піперазину сульфат, піперазину адіпінат, піперазину фосфат, піперазину дітіокарбомат і ін. Ці з'єднання ефективні за наявності ⁴ молодих і статевозрілих форм аскарідій. Препарати використовують з кормом або водою без голодної дієти і подальшої дачі проносного. З'єднання не токсичні, добре даются птиці з кормом і не викликають зниження яйце носкості.

Піперазину сульфат і піперазину адіпінат при аскаридіозі курей дають з кормом або водою курчатам 2—3-місячного віку в дозі 0,3—0,5 г, дорослому птиці — 1 г на голову. Через добу лікування повторюють. При дачі препаратів з питною водою їх заздалегідь розчиняють в теплій воді з розрахунку 5 г на 1 л води з урахуванням добової потреби курей у воді.

Враховуючи, що в практиці птицеводства частіше зустрічається одночасна інвазія птиці аськарідіямі і гетера кицями, рекомендується призначати піперазін у поєднанні з фенотіазіном. При цьому на 1000 кури беруть 500 г піперазину адіпіната, 750 г фенотіазіна» і 25 кг комбікорму. Наступного дня лікування повторюють.

Піперазин і фенотіазін застосовують також в дозі 0,2 г кожного препарату на 1 кг маси птиці через 20 днів; після випуску її на вигін, потім щодня протягом 1—5 міс і надалі по одному разу на місяць до вкомплектування ферми молодняком.

З імпортних препаратів задоволена високою антгельміптной активностю володіють тетрахлоретілен в дозі 1— 2 мл і бутенденхлорід в дозі 3—5 мл> на курку. Відмічена висока ефективність препарату нілверм в дозі 80 мл на 1 кг маси птиці(з кормом)..

Встановлені ангельмінтниє властивості сирого гарбуза. При тривалому згодовуванні помітно знижується зараженість птиці аскарідіозом і гетеракидозом.

До заходів загальної профілактики слід віднести: підвищення стійкості організму курей до зараження гельмінтозу-мі, особливо за рахунок повноцінного білкового і вітамінного годування; ізольоване вирощування курчат і-; дорослих курей, правильне біотермічне знезараження посліду, при польовому змісті птиці періодична' зміна ділянок через кожні 10— 30 днів і повторне іспользування не раніше, чим через два літні місяці.. Годування, зміст і водопій птиці повинні бути організовані на високому санітарному рівні.

Пташники, вигульні дворики і інвентар ретельно очищають і дезінвазують кип’ятком. Або гарячим розчином ксилонафта-5, ортохлорфенолом і ін.

Гетеракідоз — Heterakidosis.

Етіологія. Збудник — нематода Heterakis gallinarum. Мешкає головним чином в сліпій кишці курей індичок,, цесарок і диких птахів багатьох видів.. У водоплавного птиці реєструється досить рідко. Довжина тіла самки-8—12 мм, самця 6—12 мм. Самець має дві нерівні спікули, хвіст забезпечений бічними крилами. Спереду від клоаки є великий хітиновий присосок. У задньому кінці стравохід закінчується добре помітним розширенням — бульбусом. Рот оточений трьома тубами. Самка відкладає яйця завдовжки 0,050—0,070 мм і шириною 0,030— 0,040 мм. Яйця мають двоконтурну оболонку з яскраво вираженою прозорістю на одному з полюсів. Зрілі яйця коричневого кольору з дрібною зернистістю.

Цикл розвитку гетеракисов відбувається без участі проміжного господаря. Самки після запліднення відкладають в проствіті кишечника яйця, які в зовнішньому середовищі при оптимальній температурі і вологості стають інвазивними за два тижні. У організмі господаря личинки не мігрують. Вилупившись з яйця, вони проникають в сліпий відділ кишечника, де і відбувається їх розвиток до статевозрілої стадії. Статевої зрілості гетеракиси досягають приблизно через місяць.

У організмі інвазійних курчат -паразити живуть близько року. Зараження курей і індичок відбувається при попаданні в шлунково-кишковий тракт з кормом або водою інвазованих яєць. Через 1—2 ч в тонкому відділі кишечника личинки виходять з оболонок, а через Добу досягають відростків сліпої кишки і проникають в товщу її стінки і кишкові залози. На 5—7-й день личинки знов виходять в просвіт відростків сліпої кишки, де через 24—34 дні перетворюються на зрілих паразитів.

Епізоотологія. В окремих випадках зараженість курей гетеракідозом досягає 100 %. Птиця заражаються в будь-якому віці, проте молодняк сприйнятливіший. Джерелом інвазії є хворий птиця, розсіюючий яйця в зовнішньому середовищі. У зимовий час в пташниках яйця гетеракисов не розбиваються, але залишаються життєздатними і З настанням теплих днів стають інвазивними.

Клінічні ознаки. Наголошуються порушення функцій травлення, з'являється пронос, відсутній апетит, розвивається загальна слабкість, затримується зростання і розвиток молодняка. Несучки знижують яйценоскість.

Патологоанатомічні зміни. На розтині виявляють запалення сліпих кишок. У товщі їх стінок формуються невеликі вузлики. В період виходу личинок утворюється так .називаемий гетеракідозний тифліт.

Діагностика. За життя діагноз ставлять на підставі виявлення в посліді яєць гетеракисов. Дослідження проводять методом Фюллеборна. У від лікування від яєць аськарідій, яйця гетеракисов декілька дрібніше і менш округлої форми. Посмертна діагностика проводиться шляхом розтину полеглого птиці з подальшим гельмінтологічним дослідженням кишечника.

Заходи боротьби і профілактики. Профілактичні і лікувальні заходи такі ж, як при аськаридіозі.

Амідостоматоз — Amidostomosis.

Етіологія. У гусаків паразитує Amidostomum anseris, у качок — Amido-stomum boschadis. Збудники схожі між собою. Амідостоми паразитують під внутрішньою оболонкою м'язового шлунку.

Самець паразита досягає 9,5—14 мм довжини, а самка— 15,6—21,3 мм. Передній кінець паразита забезпечений хитинізі.-рованої капсулою, на дні якої розташовано три зуби. Хвостовий кінець самця має дволопатеву бурсу, підтримувану ребрами, і дві однакові спікули, кожна з яких розщеплена на три галузь, а між ними розташовується рулем. Хвіст самки пальцевидної форми. У передній частині тіла амідостоми розташована вульва, отвір якої покритий кутікулярним виступом. Яйця овальної форми завдовжки 0,1 мм, шириною 0,064 мм.

Розвиток амідостом проходить без зміни господарів. З послідом яйця виділяються назовні. Личинка розвивається в зовнішньому середовищі протягом 3—5 діб, потім виходить з яйця і легко пересувається по траві, з якою її заковтує птиця.

Перші п'ять днів личинки мешкають в залізистому шлунку, потім проникають під кутикулу мязевого. Через 17—22 дні з них формуються взрослі особини. На пасовищі в літній період личинки амідостом зберігають життєздатність до 93 днів. Взимку вони гинуть. Тривалість життя гельмінта в організмі птиці складає 12—15 днів'.

Клінічні ознаки. Хворі гусята і каченята гинуть переважно у віці від 1 до 3 міс. Дорослий птиця вражається значно рідше і в основному є джерелом інвазії. Хворі особини стають млявими, малорухливими. При значному скупченні амідостом в м'язовому шлунку різко знижується засвоюваність корму і порушується травлення, затримуються зростання і розвиток птиці. У випадках затяжного перебігу хвороби вказані прізнаки-усилюються і не рідко хвороба закінчується загибеллю молодняка. Смертність може досягати 15—20%, а при порушенні вітамінного або мінерального обміну — 30—40 %.

Патологоанатомічні зміни. У кутикулі м'язового шлунку виявляють некротичні ділянки, особливо в місці переходу залізистого шлунку в мязевий. Темно-коричнева кутикула легко розривається і відшаровується. При відторгненні за нею тягнуться тонкі нитки амідостом, іноді виявляють клубки цих гельмінтів. У тонкому відділі кишечника паразитів виявляють значно рідше.

Діагноз ставлять на підставі гельмінтоовоськопічного дослідження методом Фюллеборна. Виявлення темно-коричневих плям у верхній третині кутикули м'язового шлунку є підставою для підозри на захворюваність птиці амідостоматозом.

Лікування. Для лікування хворого амідостоматозом птиці застосовують четирех-хлорістий вуглець, який ін'єктують безпосередньо в зоб або вводять в стравохід за допомогою м'якого гумового зонда. Гусятам до місячного віку препарат вводять в дозі 1 мл, від 1- до 2-місячного — 2, від 2- до 3-місячного — 3, від 3- до 4-місячного — 4 і дорослому птиці — 5—10 мл.

Ефективне групове згодовування фенотіазіна по такій же схемі, як і при аськаридіозе курей.

Заходи боротьби і профілактики. Молодняка необхідно містити окремо від дорослого птиці в чистих приміщеннях. По можливості слідує частіше міняти вигули. Для цієї мети бажано використовувати поля після прибирання злакових.

Планову профілактичну дегельмінтизацію проводять двічі в рік: через місяць після постановки на зимовий зміст і за місяць до випуску птиці на випаси і водоймища. Крім того, дегельмінтізууют перед перекладом її на нову ділянку.

Через 10—14 днів після висновку на пасовищі молодняк дегельмінтизують солями піперазину, поки амідостоми не досягли статевозрілої стадії. Цим профілактуєтся розсіювання інвазії в зовнішньому середовищі і перезаражені птиці. Піперазину сульфат або піперазину адіпінат рекомендується використовувати в дозі 1 г на 1 кг маси птиці протягом трьох днів вранці натщесерце. При цьому виганяє до 90 % гельмінтів. Для повного звільнення гусей від амідостом курс лікування повторюють-через два тижні. Піперазину дітіокарбомат застосовують в дозі 0,5 г на 1 кг маси тіла птиці одноразово вранці з кормом. Гусаки неохоче поїдають цей препарат, тому його слід присмачувати добре поєдаємі кормами. Після дегельментізації птиці витримують в приміщенні або на ізольованому сухому майданчику протягом трьох днів. Що весь виділився за це время послід знезаражують в гноєсховищах або спалюють.

Стрептокароз — Streptocarosis.

Етіологія. Збудник — нематода Streptocara crassicanda, що паразитує під кутикулою м'язового шлунку водоплавних птахів. Тіло паразита тонке, ниткоподібне, безбарвне. Довжина самця 3,5—4,5 мм, ширина — 0,09— 0,13, самки — відповідно 6,27—11,2; і 0,13—0,20 мм.

Стрептокари розвиваються за участю проміжних господарів — гаммарусов (рачки-бокоплави). У хворого птиці з послідом виділяються яйця паразита, що містять личинку, що сформувалася. При температурі води у водоймищі 16—26 °С личинка в організмі гаммаруса стає інвазивною через 19—25 днів. Інвазивні личинки досягають в довжину 3—4 мм і локалізуються в спинній частині гаммаруса. У циклі розвитку стрептокар можуть буть і резервуарні господарі. Ними часто бувають риби, які заковтують гаммарусов з інцистірованими личинками паразита.

У організмі птиці личинки перетворюються на дорослого паразита протягом 9—10 днів. Весь цикл розвитку стрептокари від яйця до статевозрілого стану завершується за 28—35 днів залежно від температури. Тривалість життя цих нематод в організмі птиці близько року.

Стрептокарозом хворіють домашні і дикі качки в будь-якому віці. Найбільш сприйнятливі до зараження і важко хворіють каченята в перші-1,5 міс життя. У гусаків ця інвазія зустрічається рідше. Випадкове зараження стрептокарами зареєстроване у

кури захворювання має осередкове розповсюдження. . Ведучу-роль в епізоотології захворювання ярем гаммаруси, у величезній кількості поєдаємі птицею, особливо каченятами.

Гаммаруси живуть близько двох років, тому і личинки стрептокар можуть знаходитися у них весь цей час. Зимою качки маткового стада повністю звільняються від стрептокар, але у водоймищі інвазія зберігається в рачках-бокоплави і рибі до весни наступного року. Отже, зараження качки починається з перших же днів виходу на воду. Кількість рачков-бокоплавів різко збільшується що сприяє масовому захворюванню качок.

До кінця літа і початку осяй інвазія поступово знижується.

Клінічні ознаки захворювання спостерігаються в основному у качат до 3-місячного віку. При сильному зараженні птиця стає малорухливим, не реагує на зовнішні роздратування. Пір'я скуйовджене, лапки і видимі слизисті оболонки бліді. Апетит поганий або відсутній.

Патологоанатомічні зміни. Кутикула м'язового шлунку уражена в різному ступені. При сильній інвазії кутикула має вид буро-коричневих рихлих сирних накладень, що легко зіскоблюються. Слизиста оболонка шлунку гіперемірована, покрита точковими і плямистими крововиливами, місцями укрита виразками. Під кутикулою і в її ділянках, що розпадаються, видно стрептокари. Відзначають також анемію слизистих оболонок і паренхіматозних органів.

Діагностика. Захворювання встановлюють на підставі знаходження яєць паразита в пробах посліду методом Щербовіча з насиченим розчином Гіпосульфіту (тіосульфата натрію). У яйцях розміром 0,039X0,019 мм правильної овальної форми міститься згорнута личинка.

При дослідженні кутикули або некротичних шматочків під лупою видно стрептокари у формі тонких волосків сіруватого відтінку. Їх потрібно відрізняти від амідостом, які іноді паразитують у качок в м'язовому шлунку. Для цього гельмінтів досліджують під мікроскопом.

Заходи боротьби і профілактики. При виникненні в господарстві захворювання качок дегельмінтизують і переводять на водоймище, вільне від гаммарусов. Застосовують четиреххлорістий вуглець, який вводять в зоб за допомогою зон та в дозі 2 мл на 1 кг маси птиці одноразово вранці до годування.

Для профілактики захворювання качок використовують глибокі проточні водоймища. Молодняка містять ізольовано від дорослого птиці на благополучних водоймищах.

Періодично досліджують гаммарусов на зараженість личинками гельмінтів, а також проводять гельмінтологічний розтин трупів полеглого птиці і овоськопічеське дослідження посліду.

У деяких птахівничих господарствах гаммарусов виловлюють і використовують в корм птиці. Щоб запобігти зараженню качок, виловлених гаммарусов в датшом випадку необхідно висушити, обварити кип'ятком або обробити 2 %-ним розчином піросульфата натрію або 4 %-ним розчином гашеного вапна винищити протягом 10" днів. Оброблені таким чином гаммаруси як корм для птиці можна зберігати протягом 3—4 міс.

Тетрамероз — (Tetramerosis) вражає качок і гусаків.

Етіологія. Збудник — нематода Tetrameres fissispina, Tetrameridae, що належить до сімейства. Самка паразита має майже кулясту форму тіла завдовжки 2,5—4 мм. Вся її порожнина наповнена петлями матки, що містять безліч яєць (довжина — 0,43— 0,057 мм і ширина 0,025—0,032). На полюсах яєць є невеликі кришки. Самка темно-червоного або коричневого забарвлення.

Самці тонкої ниткоподібної форми завдовжки 3—4 мм і шириною 0,09—0,14. Їх кутикула забезпечена чотирма рядами шпильок. Хвостовий кінець забезпечений двома спікулами. Тіло безбарвне. Самки мешкають в стінках залізистого шлунку. Самці живуть в просвіті шлунку, упроваджуючись в товщу слизистої оболонки.

Цикл розвитку тетрамеруса протікає із зміною господарів. Проміжним господарем для цієї нематоди є бокоплав. Самка відкладає яйця в просвіт шлунку птиці, після чого вони з послідом потрапляють у воду. Тут їх заковтують бокоплави, в кишечнику яких з яйця виходить личинка. Через 2—3 дні вона проникає в тіло рачка і тут досягає інвазивної стадії. Період її дозрівання залежить від температурних умов і триває 8—18 діб. Зараження качок відбувається при заковтуванні бокоплавів, що містять Інвазивні личинки гель мінта. Формування личинки в організмі птиці до статевозрілої стадії триває близько 18 діб.

Клінічні ознаки при тетраметроянді не характерні. Зазвичай відзначають порушення травлення, відставання в зростанні і розвитку, виснаження.

Патологоанатомічні зміни. Залізистий шлунок збільшений, слизиста оболонка катарально запалена, іноді усіяна круглими утвореннями, що нагадують гематоми. Ці вогнища є ділянки локалізації самок паразита.

Діагноз ставлять методом послідовного промивання посліду і виявлення яєць гельмінтів. При розтині в залізистому шлунку знаходять самок паразитів, які зазвичай не перевищують розміру просяного або конопляного -зерна. При натисканні темних плям пальцями на поверхню виступає самка паразита, що нагадує краплю крові.

Заходи боротьби і профілактики. Профілактика грунтується на запобіганні спілкуванню птиці з проміжними і резервуарними господарями паразита.

При виникненні хвороби всіх качок -следує піддати лікуванню і після закінчення 10 днів перевести на нові водоймища, на яких не випасалась хворий птиця. Якщо в господарстві не було тетрамероза, то повертати її на колишнє водоймище можна через рік, а в господарства, неблагополучні по даному захворюванню, - через два.

При неможливості зміни водоймищ необхідно літом і осінню проводити профілактичну дегельмінтизацію чітиреххлорістим вуглецем в дозі "2 мл на 1 кг маси тіла витчи. Препарат вводять безпосередньо в зоб за допомогою шприца або через стравохідний зонд ^- у шлунок.

Незначний терапевтичний ефект дає фенотіазін при використанні протягом 5—6 днів в дозі 0,5 г на 1 кг маси тіла птиці. Декілька кращий результат отримують, застосовуючи теперазіна сульфат в дозі 1 г на 1 кг маси тіла птиці три раз через два дня.

Гусятам препарат застосовують в дозі '3—5 мл, а дорослим — в дозі 5— 10 мл на голову.

Ехінуроз — Echinuriosis.

Етіологія. Збудник — нематода Echinuria uncinate, що паразитує в стінці залізистого шлунку качок і гусей, де вона утворює пухлиноподібні вузлики розміром з просяне зерно і більше. Ехінурії — досить дрібні нематоди. Самці завдовжки 10—13 мм при максимальній ширині 0,417—0,576. Самки завдовжки 15,4—20,5 мм при максимальній ширині 1,01—1,39.

Розвиток паразита проходить за участю проміжного господаря, різних видів дафній (водяних бліх). Дорослі самки паразита виділяють яйця, що містять згорнуту личинку. Дафнії, поїдаючи послід птахів, заковтують яйця ехінурії. У тілі проміжного господаря личинка стає інвазивною через п'ять днів при температурі 26—30 °С. У організмі качок інвазивні личинки через 40—50 днів стають статевозрілими паразитами. Весь цикл розвитку ехінурії триває близько 2 міс. Живуть нематоди у птиці декілька місяців.

Ехінурії паразитують в основному у домашніх і диких качок і гусаків. Найбільш сприйнятливі 1,5—2-місячні каченята. Іноді ці нематоди зустрічаються у курей.

Качки заражаються ехінуріями на водоймищах при поїданні дафній з інвазивними личинками паразита. Найбільш небезпечними відносно ехінуріоза є дрібні ставки, що добре прогріваються сонцем, з багатою рослинністю.

Ехінуріоз поширюють хворі домашні і дикі качки, в організмі яких статевозрілі нематоди зимують. Навесні такий птиця стає джерелом інвазування нового покоління дафній.

Дафнії живуть близько 3—4 міс і в зимовий період гинуть. Водоймища таким чином очищаються від ехінуріозної інвазії. З настанням теплих днів знов починається швидкий розвиток дафній, які з кормом поглинають яйця ехінурії і стають джерелом зараження молодняка водоплавного птиці. Інвазія наростає до середини літа. Восени спостерігається загасання її.

Клінічні ознаки. Наголошуються загальна слабкість, виснаження, анемічність слизистих оболонок і шкірних покривів, іноді жолтушність. У важких випадках у птиці пропадає апетит. Хворі відстають в зростанні і розвитку. При сильному зараженні качат" хвороба протікає в гострій формі і супроводжується загибеллю (до 50 % і вище). У дорослих качок ехінуріоз переходить в хронічну форму, закінчуючись зазвичай одужанням.

Патологоанатомічні зміни. Витчи, полеглі від ехінуріоза, виснажені. Залізистий шлунок збільшений в 3— 5 разів в порівнянні з нормальним, стінка його стоншена. З боку серозної оболонки видно виступаючі білуваті щільні соєдінітельнотканнинні вузли величиною від просяного зерна до волоського горіха. У гусаків ехінуріозні вузлики розташовуються переважно на межі із стравоходом, у качок — в області переходу залізистого шлунку в мязевої.

При розрізі залізистого шлунку на внутрішній стороні вузлів знаходять отвори. Усередині свіжих вузлів міститься багато ехінурії, в старих — порожнина заповнена некротичною сирною масою. Іноді паразитів у вузликах немає або вони некротизовані. Слизиста оболонка покрита густим слизом, набрякла, бліда. Відзначають збільшення залізистого шлунку, застійну гіперемію серозної оболонки. Стінка шлунку і його слизиста оболонка потовщені. На переході залізистого шлунку в мязовій видні освіти величиною з горошину. Характерна мікроскопічна картина ехінуріозного поразки виявляється на 21-й день. При сильному зараженні соєдінітельнотканині вузли, зливаючись між собою, утворюють ходи в стінці шлунку. Багато вузлів розташовуються і в передній частині залізистого шлунку і в області закінчення стравоходу. М'язовий шлунок в'ялий, слизиста оболонка кишечника запалена.

Діагноз на ехінуріоз ставлять за клінічними ознаками і виявленням яєць паразита в посліді птиці при копрологіченим дослідженні методом флотації з гіпосульфітом. Яйця ехінурії розміром 0,037—0,040X0,018— 0,020 мм містять згорнуту спіраллю личинку. Найбільш точним є посмертний діагноз, - заснований на, виявленні характерних вузлів і ехінурії в залізистому шлунку. Ехінуріоз необхідно диференціювати від гистріхоза. Гистрохії також утворюють вузли, але на серозній поверхні, а не в товщі стінки залізистого шлунку. Крім того, в кожному вузлі знаходиться поодинці крупному паразитові, що перевершує за розміром ехінурії у декілька разів. Заходи боротьби і профілактики. Лікування малоефективне, оскільки стінка» соєденітельнотканевих вузлів, в яких знаходяться паразити, перешкоджає проникненню антгельмінтиків внутрь.

При спаласі ехінуріоза качок дегельментизують чітиреххлорістим вуглецем в дозі 2,0 мл на 1 кг маси тіла птиці і припиняють випас на неблагополучному ставку.

У основі профілактики захворювання лежать ті ж заходи, що і при: стрептокорозі тетрамирозі качок. У неблагополучних господарствах водоймища: залишають без птиці мінімум на рік.

Одним з найважливіших заходів є ізольований зміст молодняка на водоймищах, благополучних по гельминтозам, а також комплектація маткового стада осінню здоровими, незараженними качками.

Гельмінтози птиці, Трематодози

Простогонімоз

Простогонімоз — Prosthogonirrtosis.

Етіологія. Збудниками даного захворювання є трематоди з сімейства Plagiorchidae huhe, що паразитують в статевих органах, прямій кишці і клоаці свійських і диких птиці.

У свійської птиці частіше зустрічається P. ovatus. Тіло гельмінта плоске, груше видної форми, довжина 3—6 мм; ширина 1—2 мм. Є глотка і кишечник. Черевний присосок удвічі більше ротовою. У задній половині розташовуються сімянники. Дорсально від черевного присоска знаходиться яєчник. Матка гілляста. Довжина яйця складає 0,013 мм, ширина — 0,012 мм.

Розвивається паразит за участю проміжуточних (молюски) і додаткових (до перетворюються на метацеркаріїв, які зберігають життєздатність І після перетворення личинок бабок в імаго.

Зараження птиці відбувається при зкльовуванні бабок. Трематоди спочатку проникають в задній кінець яйцепровода, потім в його білкову частину, присмоктують до слизистої оболонки і, дратуючи її своїми шипиками і присосками, порушують фізіологічну функцію яйцепровода. Тривалість (розвитку паразита в господарі дефінітива залежить від вигляду і віку птиці, а також від місця його локалізації.

Патологоанатомічні зміни. Слизиста оболонка яйцепровода потовщена і гиперемійована. Частіше вона буває покрита густою, сметанообразной масою. У яйцепроводі знаходять деформовані яйця, часто беззскорлупі безжовткові. Іноді він розтягнутий і навіть розірваний. Секундарна інфекція, що нашаровується, часто ускладнює перебіг хвороби, викликаючи зміни, характерні для фібрінозного перитоніту. При слабкому ступені інвазії морфологічні зміни не виражені.

Клінічні ознаки. При високому ступені інвазії і низької опірності організму яйця формуються без шкаралупи, лише з подскорлупою оболонкою. Часто виходять тільки жовтки з невеликою кількістю білка. Згодом кури перестають нести яйця. Цей період триває близько місяця і при відповідному лікуванні кури можуть видужати. У випадках ускладнення у них пропадає апетит, випадає пір'я. Кури довго сидять в кублах. Живіт стає таким, що відвиснув і хворобливим. Температура тіла іноді підвищується до 43 °С, посилюється спрага, з'являється характерна «качина хода». Такий стан продовжується 2—7 днів, після чого птиця гине. В цілому захворювання триває 1—2 міс.

Діагноз ставлять на підставі результатів клінічних, патологоанатомічних і гельмінтоовоскопічних досліджень.

Заходи боротьби і профілактики. У неблагополучних після простоганімозу господарств, починаючи з червня, необхідно досліджувати послід. Перш за все досліджують курей, які несуть яйця з топкою шкаралупою. У разі виявлення хвороби всього дорослого птицю дегельмінтизуют. В період масового літа бабок (травень, червень) її необхідно закривати в приміщенні, а вікна затягувати щільною сіткою. Низовинні болотисті місця дренажують. Дрібні водоймища обробляють мідним купоросом (1: 5000). Пташники для курей необхідно будувати далеко від водоймищ на сухому місці.

З лікувальною метою застосовують чети-реххлористий вуглець в дозі 2—5 мл залежно від віку і загального стану хворого птаха. Індичкам препарат вводять двічі через 5—7 днів в дозі 8—12 мл на голову. Виділення паразитів починається через 18—20 ч і триває протягом 3—5 днів.

Високою ефективністю при даному захворюванні володіє гексахлоретан. Препарат призначають в дозі 0,5 г на голову протягом трьох днів. У випадках запущеної хвороби лікування часто буває безуспішним.

В період дегельмінтизації птиці витримують в спеціальних загородах не менші п'ять днів. Зібраний за цей час послід спалюють або піддають біотермічному знезараженню.

Тема: Гельмінтози птиці, Цестодози

Дрепанідотеніоз — Drepanidotaeniosis.

Етіологія. Збудник — цестоди Drepanidotaenia lanceolata D. przewals-kii сімейства Hymenolepididae.

Довжина цестоди 115—130 мм, ширина 8—11,5 мм. На головці є округлі присоски. На хоботку є вісім дрібних крюків. У гермафродітних члениках три семенника розташовані по одну сторону від середньої лінії тіла, яєчники і жовточники — по іншу. Отвір чоловічих статевих органів відкривається поряд з отвором жіночих статевих органів — на бічній поверхні членика. У задніх члениках знаходиться матка, суцільно заповнена зрілими яйцями. Їх розміри і форма залежать від терміну перебуванні у воді.

Проміжним господарем є циклопи, які заковтують яйця паразитів. У органах травлення рачка з оболонок яйця звільняється зародок, який потім проникає в тіло циклопа. Через місяць з нього розвивається зріла личинка. Птиця заковтує циклопа, що містить зрілу личинку. У кишечнику гусака або качки його тіло перетравлюється, личинка звільняється і головкою прикріпляється до слизистої оболонки кишечника, потім перетворюється на дорослу цестоду. Статевозріла цестода формується близько 19 діб.

Патогенез. Фіксуючись на слизистій оболонці кишечника, паразити порушують її цілісність і виділяють в організм птиці отруйні речовини, що утворюються в результаті їх життєдіяльності. Іноді паразити в значній кількості скупчуються в кишечнику і закупорюють його просвіт.

Клінічні ознаки. У важкій формі хворіє молодняк у віці від 15 днів до 3 міс. У хворого птиці погіршується апетит, вона швидко худне, насилу встає і поволі пересувається. Хода стає такою, що коливається. Сильний ступінь інвазії часто-приводе до виснаження і смерті птиці. В окремих випадках відхід може досягати 50—60 %.

Діагностика. Посмертний діагноз ставлять на розтині кишечника птиці і виявленні статевозрілих паразитів. При необхідності проводять копрологічне і мікроскопічне дослідження. З діагностичною метою можна дегельментизують 10—15 гусят розчином ареколіна в прийнятих дозах. Гельмінти починають виділятися через 20—30 хв.

Заходи боротьби і профілактики. У неблагополучних після дрепанідотеніозу господарств всього дорослого птицю дегельмінтизують до випуску на водоймища. Після дегельмінтизації її на 1—2 дні закривають в приміщенні. Виділений", за цей час послід спалюють.

Дорослого птаха містять на ізольованих водоймищах і не допускають контакту її з молодняком. Водоймища краще всього міняти в травні, червні і липні кожні 20 днів.

Нові ферми слід будувати поблизу глибоких озер, річок або проточних водоймищ, де мало проміжних господарів.

Через місяць після закінчення вигулу проводять поголовну лікувальну обробку птиці. У тих господарствах, де захворювання спостерігається щорічно, протягом року не слід випускати птиці на водоймища, що раніше використалися.

З лікувальною метою застосовують бромістоводородний ареколін. Розчин вводять за допомогою шприца і гумовою: трубки через ротову порожнину в зоб. Ареколін використовують в дозі 0,0003 г для молодняка і 0,0005 г — для дорослого птиці на 1 кг маси тіла. Перевищення дози неприпустимо. При масовій дегельмінтизації птиці дають водний розчин ареколіна в розведенні 1 : 2000 в дозі 1 мл/кг маси гусака або качки.

Перед лікуванням птиці витримують 15 ч на голодній дієті, а за 15— 20 мін до лікування вводять 1—2 краплі 10 %-ного розчину йоду з водою, що запобігає появі блювоти.

Застосовують також камалу і екстракт кореневища чоловічої папороті. Камалу краще розводити молоком і вливати через зонд або застосовувати у формі болюсов (з мукою або хлібом) в дозі-0,3 г на 1 кг маси тіла птиці. Екстракт кореневища чоловічої папороті використовують в дозі 1,0 г дорослому птаху і 0,2—0,6 г молоднякові. При даних способах лікування гельмінти виділяються без застосування послаблюючих засобів. Цей процес закінчується через 3—4 ч. Послід птиці і гельмінтів спалюють, а приміщення дезінфікують вогнем паяльної лампи.

При масової дегельмінтизації застосовують феліксан в дозі 0,45 г на 1 кг маси тіла птиці. Перед обробкою його змішують з невеликою кількістю корму, який дають птиці в ранці, до годування.

ВЕТЕРИНАРНА ГЕЛЬМІНТОЛОГІЯ

Загальні вимоги до лабораторних занять

Обов'язковою вимогою при вивченні гельмінтології та хвороб, спричинюва­них паразитичними червами, є тісний зв'язок теорії з практикою. Під час про­ведення лабораторних занять студенти закріплюють теоретичні знання лек­ційного курсу. Це одна з найактивніших форм засвоєння матеріалу дисциплі­ни. На цих заняттях студенти вивчають будову статевозрілих паразитів, їхніх яєць і личинок, ознайомлюються з проміжними та додатковими хазяями біо­гельмінтів, набувають практичних навичок з лабораторних методів діагнос­тики гельмінтозів (дослідження проб фекалій із застосуванням різних мето­дик, сечі, крові, зскрібків зі шкіри тощо). У процесі занять студенти вносять до своїх робочих зошитів (альбомів) відповідні записи та замальовки.

Лабораторні заняття мають бути забезпечені необхідним обладнанням і матеріалами: це мікроскопи, бінокулярні та штативні лупи, трихінелоскопи, емальовані кювети, бактеріологічні чашки, пробірки, скляні банки, скляні або пластмасові стаканчики, фарфорові ступки та товкачики, гумові сприн­цівки, препарувальні голки, пінцети, ножиці, скальпелі, скляні палички, металеві сита, марля, вата, дротяні петлі, піпетки, предметні стекла і на­кривні скельця, 50%-й розчин гліцерину, насичені розчини (кухонної солі, сульфату магнію, гіпосульфіту натрію), електрична або ручна центрифуга з центрифужними пробірками, компресори. Під час заняття студенти вивча­ють макро- і мікропрепарати, а для кращого засвоєння матеріалу розгляда­ють також рисунки, плакати, таблиці, що стосуються конкретної теми.

Зажиттєва діагностика гельмінтозів

Хвороби, спричинювані паразитичними червами, називають гельмінто­зами. Зажиттєву діагностику гельмінтозів тварин здійснюють комплексно з урахуванням результатів лабораторних досліджень, епізоотологічних даних і клінічних ознак хвороби. Все більшого застосування набуває імунобіологіч-на діагностика інвазійних хвороб, у тому числі й гельмінтозів. Певне допо­міжне значення у неблагополучних господарствах мають також досліджен­ня водних і сухопутних безхребетних тварин на наявність у них личинок паразитичних червів.

Гельмінти локалізуються у різних органах і тканинах організму тварин. Більшість із них розвиваються у травному каналі та його залозах (печінці, підшлунковій залозі). Часто вони трапляються також у легенях, м'язах та

кровоносній системі. Заражені тварини виділяють у зовнішнє середовище яйця або личинки збудників хвороби.

З лабораторних методів діагностики гельмінтозів найчастіше застосову­ють гельмінтокопроскопічні обстеження (дослідження проб фекалій) тварин. Залежно від цільового призначення розрізняють гельмінтоскопічні (вияв­лення статевозрілих паразитичних червів або їх фрагментів), гельмінтоово-скопічні (виявлення яєць збудників хвороб) та гельмінтоларвоскопічні (ви­явлення личинок паразитів) дослідження. Для діагностики деяких інвазій­них хвороб досліджують також сечу, кров, м'язи, шкіру.

З метою встановлення ступеня поширення гельмінтозів на тваринниць­ких фермах застосовують якісні (встановлення видового складу паразитич­них червів) та кількісні методи дослідження, за допомогою яких оцінюють інтенсивність інвазії (слабка, середня, сильна), а також ефективність прове­дених дегельмінтизацій.

Результати гельмінтокопроскопічної діагностики залежать від правиль­ного відбору проб фекалій у хворих тварин та своєчасного їх дослідження. Краще брати фекалії (у кількості 10 — 20 г) з прямої кишки рукою, на яку надіта гумова рукавичка. Іноді практикують взяття свіжовиділених проб фекалій із чистої підлоги, якщо відомо, від якої вони тварини. З цією метою використовують пакети й мішечки з цупкого паперу. Рідкі фекалії збирають у невеличкі баночки. Усі проби етикетують, досліджують на місці або направ­ляють до лабораторії ветеринарної медицини.

Гельмінтокопроскопічні методи діагностики ґрунтуються на різниці щільності яєць, личинок паразитичних червів або їх фрагментів, з одного боку, і рідини, з якою змішують фекалії, — з другого. Залежно від співвід­ношення щільності зазначених компонентів розрізняють методи осадження, флотації та комбіновані.

Гельмінтоскопія. Фекалії вміщують у відповідні посудини з водою (кю­вети, тази) і відстоюють. Через 5 хв верхній шар рідини зливають, а до осаду знову доливають воду. Ці маніпуляції повторюють кілька разів. Потім осад досліджують макроскопічно та за допомогою штативної або бінокулярної лу­пи. Виявлені гельмінти (їх фрагменти) вибирають пінцетами або препару­вальними голками й визначають їх видовий склад. Паразитичні черви ве­ликих розмірів (збудники аскарозу, токсокари та ін.) можна виявити безпо­середньо у фекаліях.

Гельмінтоовоскопія. Запропоновано значну кількість методів дослі­джень фекалій, за допомогою яких можна виявити наявність яєць збудників (рис. 1.1-1.8).

Метод нативного мазка — найпростіший. Його застосовують за будь-яких умов при дослідженні фекалій усіх видів тварин. На предметне скло наносять краплю води і краплю гліцерину, вносять у них шматочок фекалій завбільшки з горошину і перемішують скляною або дерев'яною паличкою. Гліцерин очищає препарат і запобігає швидкому його висиханню. Після ви­далення твердих часточок вміст накривають накривним скельцем і дослі­джують під мікроскопом. Від однієї тварини рекомендується досліджувати 2 — 3 препарати. Метод застосовують для встановлення діагнозу на аскароз свиней, фасціольоз, трихуроз та інші хвороби тварин. У разі слабкої інвазії виявити яйця збудників інвазійних хвороб вдається не завжди.

Метод послідовного промивання (метод осадження). Невелику кількість фекалій (5 — 10 г) розмішують у склянці з 10-кратною кількістю води. Суміш фільтрують крізь металеве сито або марлю і дають їй відстоятися упродовж 5 хв. Після цього верхній шар рідини зливають, до осаду знову добавляють таку саму кількість води і відстоюють 5 хв. Після прояснення верхнього ша­ру рідини в склянці його зливають, а осад наносять на предметне скло (бак­теріологічну чашку) і досліджують під мікроскопом на наявність яєць тре­матод і збудників акантоцефальозів (рис. 1.9).

Метод Фюллеборна (метод флотації, або спливання) широко використо­вують для діагностики нематодозів і цестодозів тварин. У склянку вносять 5 г фекалій і, помішуючи скляною або дерев'яною паличкою, добавляють на­сичений розчин кухонної солі (на одну частину фекалій 15 - 20 частин роз­чину солі). Для його приготування у 1 л кропу розчиняють 400 г солі. Отри­маний розчин фільтрують крізь марлю або вату і після охолодження ви­користовують. Густина такого розчину становить 1,2. Суспензію фекалій фільтрують крізь металеві або марлеві ситечка в іншу склянку і відстоюють упродовж 40 — 50 хв (іноді достатньо ЗО хв). Яйця гельмінтів з невеликою щільністю спливають. За допомогою металевої петлі діаметром не більш як 1 см кілька крапель (частіше три) рідини переносять з поверхневого шару на предметне скло, після чого досліджують під мікроскопом (рис. 1.10).

Для дослідження фекалій методом флотації можна використовувати й інші флотаційні рідини (наприклад, насичений розчин сульфату магнію, насичені розчини гіпосульфіту натрію та інших солей).

Комбіновані методи ґрунтуються на принципах осадження і флотації. Вони дещо ефективніші порівняно з описаними методами досліджень. Од­нак через складність виконання їх рідше використовують у ветеринарній практиці.

Метод Дарлінга. Фекалії змішують з водою і центрифугують упродовж 1 — 2 хв. Після цього рідину з пробірки зливають, а до осаду добавляють су­міш однакових кількостей гліцерину і насиченого розчину кухонної солі. Йо­го ретельно перемішують і знову центрифугують 1 — 2 хв. При повторному центрифугуванні яйця паразитичних червів спливають на поверхню. Мета­левою петлею з поверхні знімають плівку, переносять її на предметне скло, накривають накривним скельцем і досліджують під мікроскопом.

Метод Котельникова і Хренова. 2 г фекалій від хворої тварини вмішують у склянку місткістю 50 мл з невеликою кількістю води, розмішують, посту­пово доливають воду і фільтрують крізь капронове сито в другу склянку, від­стоюють упродовж 5 хв, рідину зливають, а до осаду добавляють воду. Потім воду знову зливають, а осад окремими порціями поміщають на предметні стекла і накривають обробленою целофановою плівкою, крізь яку видно препарат і яка запобігає його висиханню. Плівки прямокутної форми (3x2 см) готують із гідрофільного целофану завтовшки 22 мкм. Для розм'як­шення їх занурюють на 24 год у бактеріологічну чашку з 50%-м розчином гліцерину або молочної кислоти. Через 10 хв препарат готовий для дослі­дження. Цей метод рекомендується для діагностики аскарозу й трихурозу свиней та деяких інших гельмінтозів тварин.

Гельмінтоларвоскопію застосовують для діагностики диктіокаульозу, мюлеріозу та інших протостронгілідозів жуйних тварин.

Метод Бермана. Проби свіжих фекалій (5 — 10 г) кладуть на сито або загортають у марлю і вміщують у пластмасові, капронові або скляні лійки, сполучені за допомогою гумових трубок (10 - 15 см завдовжки). На нижньому їх кінці закріплюють затискачі. Лійки заповнюють теплою (35 — 38 °С) водою. При дослідженні на легеневі гельмінтози фекалії овець витримують 2-4 год, телят — не менш як 10 — 12 год. Після цього затискач на трубці послаблюють, а отриману рідину центрифугують упродовж 2-3 хв. Отри­маний осад переносять на предметне скло і досліджують під мікроскопом. При масових дослідженнях фекалій до нижнього кінця гумової трубки при­єднують маленьку пробірку, на дно якої осідають личинки нематод. Для їх виявлення осад мікроскопують без попереднього центрифугування.

Метод Вайда. Фекалії від овець та кіз вміщують у бактеріологічну чашку і добавляють невелику кількість теплої води. Через ЗО — 40 хв фекалії видаляють, а осад, що залишився, досліджують під мікроскопом на наявність личинок диктіокаул, мюлерій та протостронгілід. У разі слабкої інвазії личинки збудників хвороби цим методом вдається виявити не зав­жди.

Запропоновано й інші методи гельмінтокопроскопічних досліджень. Од­нак вони здебільшого громіздкі у виконанні й тому не знайшли широкого застосування у практиці ветеринарної медицини.

Дослідження сечі застосовують для виявлення яєць нематод при встановленні діагнозу інвазійних хвороб, збудники яких паразитують в органах сечовиділення (капіляріоз, діоктофімоз тощо). Сечу відстоюють упродовж 5-10 хв. Верхній шар її зливають або відсмоктують спринцівкою, а осад досліджують під мікроскопом. Іноді сечу розбавляють водою (1 : 1), центрифу­гують упродовж 2-3 хв, а осад мікроскопують.

Дослідження шкіри проводять на наявність у ній личинок філяріат. У ділянці нижньої частини черевної стінки тварин вирізають невеликі шмато­чки шкіри завтовшки до 3 — 4 мм і вмішують на предметне скло у фізіологі­чний розчин. Препарувальними голками ретельно розщеплюють шматочки шкіри на дрібніші й залишають їх на кілька годин. Після видалення зали­шків шкіри препарат досліджують під мікроскопом.

Дослідження крові. Для виявлення мікрофілярій кров, узяту з яремної вени або кінчика вуха тварини, вносять у пробірку і відстоюють. Отриману сироватку центрифугують упродовж 8-10 хв, після чого осад досліджують під мікроскопом. При парафіляріозі на предметне скло беруть краплю крові з уражених ділянок шкіри, накривають накривним скельцем і мікроскопують.

Імунобіологічна діагностика. Ці методи набувають все більшого поширення в практиці ветеринарної медицини. Найперспективнішими є реа­кція непрямої гемаглютинації (РИГА) і ферментний імуносорбентний метод (ELISA), які є досить чутливими. Ефективними є також реакція імунофлуо-ресценції (РІФ), реакція зв'язування комплементу (РЗК) та ін.

Позитивні результати отримано при застосуванні полімеразної ланцюго­вої реакції (ПЛР). Іноді для діагностики ценурозу овець, ехінококозу жуйних тварин та деяких інших гельмінтозів застосовують алергічні шкірні реакції. Для постановки реакцій потрібні антигени, які готують за різними методи­ками з гельмінтів. Антигени вводять тваринам внутрішньошкірно у дозах 0,1 - 0,2 мл. При позитивній реакції у місці введення антигену через певний час (5 хв — рання реакція, 24 год -— пізня реакція) розвивається запалення і потовщення складки шкіри.

Діагностичні дегельмінтизації тварин здійснюють у разі, коли клінічні ознаки дають підставу запідозрити певне захворювання (аскароз свиней, токсокароз м'ясоїдних тварин, монієзіоз жуйних тощо), яке лабораторними методами досліджень не підтверджується. Здебільшого це спостерігається, коли паразитичні черви ще не досягли статевозрілої стадії в організмі тва­рини і не виділяють у зовнішнє середовище яєць або личинок.

Методи посмертної діагностики гельмінтозів

Посмертну діагностику гельмінтозів проводять при розтині туш і трупів тварин та виявленні в уражених органах і тканинах паразитичних червів і характерних патологоанатомічних змін. Багато інвазійних хвороб, спричи­нюваних дрібними паразитами, вдається діагностувати шляхом гельмінто­логічних розтинів тварин. Найдосконалішу їх методику запропонував ака­демік К.І. Скрябін.

При проведенні повного гельмінтологічного розтину за К.І. Скрябіним передбачається обстеження усіх без винятку органів і тканин тварини з метою виявлення і збирання паразитичних червів. Це найнадійніший метод, що дає змогу проводити як кількісний, так і якісний облік усіх гельмінтів, якими бу­ла заражена тварина. Його широко застосовують учені з науковою метою.

Метод повних гельмінтологічних розтинів окремих органів застосовують з метою добути відомості про ступінь інвазованості окремих органів певними видами паразитів. Наприклад, при фасціольозі досліджують лише печінку, при диктіокаульозі — легені, дрепанідотеніозі — тонку кишку.

Неповний гельмінтологічний розтин — звичайний патологоанатомічний метод розтинів, у процесі якого в органах і тканинах виявляють лише най­більших гельмінтів (монієзій, збудників параскарозу, аскаридій).

Неповний гельмінтологічний розтин — звичайний патологоанатомічний метод розтинів, у процесі якого в органах і тканинах виявляють лише най­більших гельмінтів (монієзій, збудників параскарозу, аскаридій).