Антибіотикотерапія: визначення чутливості до антибіотиків, схеми та методи застосування антибіотиків в птахівництві.
Визначення чутливості, стійкості і толерантності мікроорганізмів до антибіотиків та хіміотерапевтичних препаратів методом серійних розведень, диско-дифузним методом, з застосуванням поживних середовищ.
Антибіотики - це продуковані живими організмами речовини, здатні вибірково вбивати мікроорганізми або пригнічувати їх зростання і розмноження. У промислових масштабах антибіотики отримують шляхом біосинтезу мікроорганізмами - продуцентами, або за допомогою хімічного синтезу(напівсинтетичні антибіотики), модифікуючи хімічним шляхом молекули антибіотиків, отриманих в результаті біосинтезу. Розшифровка хімічної будови природних антибіотиків дозволяє отримувати препарати-аналоги шляхом хімічного синтезу(наприклад, хлорамфенікол, левоміцетин).
Впровадження в клінічну практику значної кількості нових антибактеріальних препаратів привело не лише до істотного підвищення ефективності лікування інфекційних хвороб, але і до появи у мікроорганізмів нових механізмів резистентності. Це, у свою чергу, зажадало посилення вимог до стандартизації існуючих методів оцінки антибиотикорезистентності і розробки нових підходів до інтерпретації результатів.
Основною метою досліджень на антибиотикорезистентність є виявлення придбаної стійкості до антибактеріальних препаратів у мікроорганізмів - збудників інфекційних хвороб. Підтвердження наявності у мікроорганізму природної чутливості або стійкості до антибіотиків не є метою практичних досліджень. Чутливість мікроорганізмів до антибіотиків і інших хіміопрепаратів визначають двома групами методів : дискодиффузійним (метод дифузії в агар із застосуванням паперових дисків з антибіотиками) і методом розведень антибіотика в щільному або рідкому поживному середовищі. Вибір методу залежить від мети дослідження і можливостей лабораторії. Дискодиффузионний метод слід розглядати як якісний. Завдяки простоті виконання, він є основним для практичних лабораторій. Метод розведення - точніший кількісний спосіб. Його застосовують в особливо важливих практичних випадках і в науково-дослідній роботі.
Критерії оцінки чутливості, стійкості і толерантності мікроорганізмів до антибіотиків і хіміотерапевтичних препаратів
Використовувані поняття чутливості і стійкості мікроорганізмів до антибіотиків і хіміотерапевтичних препаратів засновані на клінічній точці зору. Відповідно до цього підходу, критерієм чутливості мікроба є концентрація антибіотика(хіміопрепарату) в організмі тварини(людини) в осередку інфекції в ED/мл або мкг/мл, який досягається при терапевтичних дозуваннях препарату. З цим критерієм порівнюють мінімальну ингибируюшую зростання мікроорганізму концентрацію антибіотика(МІК в ED/мл або мкг/мл), визначувану при вирощуванні мікроба на поживному середовищі з антибіотиком. Якщо МІК антибіотика для мікроорганізму in vitro менше або дорівнює концентрації цього антибіотика в організмі людини, то цей мікроорганізм чутливий до антибіотика; при протилежному співвідношенні мікроорганізм стійкий до антибіотика.
Відповідно до інструкції після уніфікованих методів, в клінічній практиці мікроорганізми розподіляють на ряд груп у міру чутливості до антибіотиків:
група - «чутливі» мікроорганізми, коли зазвичай вживані дози антибіотика достатні для досягнення лікувального ефекту;
група - «среднечувствительные» мікроорганізми, коли тільки підвищені(максимально переносимі) дози антибіотика можуть забезпечити лікувальний ефект;
група - «Помірно стійкі» мікроорганізми, коли лікувальний ефект може бути досягнутий тільки при нагоді концентрації препарату у вогнищі або введенні безпосередньо в осередок інфекції;
група - «стійкі» мікроорганізми, коли не можна розраховувати на лікувальний ефект.
На практиці зазвичай визначають три групи мікроорганізмів по чутливості до антибіотиків: «чутливі», «среднечувствительные» і «стійкі». Конкретні критерії їх визначення методом серійних розведень антибіотиків представлені в таблиці. 39.
В деяких випадках, при тривалій хіміотерапії інфекцій, які викликаються грампозитивними бактеріями(стрептококами, ентерококами та ін.), спостерігається відсутність дії бактерицидних антибіотиків(пеніциліну та ін.), яка санує, на тлі виділення бактерій, чутливих до використовуваного антибіотика по мінімальній інгібірувальній зростання концентрації. Цей прояв толерантності(терпимості) бактерій до антибіотика.
Толерантність бактерій до антибіотика - це втрата ними чутливості до бактерицидної дії антибіотика при збереженні чутливості до бактеріостатичної дії антибіотика. Умовно критерієм толерантності мікроорганізму до антибіотика вважають перевищення мінімальної бактерицидної концентрації(МБК) антибіотика до його мінімальній інгібірувальній зростання концентрації(М І К) в 32 вражай і більше.
Таблиця. Групи мікроорганізмів по мірі чутливості до антибіотиків(МІК в мкг/мл або ЕБ/мл)*
Антибіотики |
Групи мікроорганізмів |
|||
чутливі |
среднечутливі |
помірно стійкі |
стійкі |
|
Пеніцилін G |
0,25 |
16 |
128 |
> 12 |
Пеніцилін V |
0,25 |
4 |
128 |
>128 |
Метицилін |
2 |
|
|
|
Ампіцилін |
0,25 |
16 |
128 |
> 128 |
Карбенициллин |
|
16 |
128 |
> 128 |
Цефалоспорин |
2 |
16 |
128 |
> 128 |
Стрептоміцин |
4 |
|
128 |
> 128 |
Канаміцин |
4 |
|
128 |
> 128 |
Неоміцин |
4 |
|
128 |
> 128 |
Гентаміцин |
0,5 |
4 |
64 |
>64 |
Левоміцетин |
1 |
8 |
– |
>64 |
Тетрациклін |
1 |
4 |
64 |
>64 |
Еритроміцин |
1 |
4 |
64 |
>64 |
Линкомицин |
1 |
4 |
64 |
>64 |
* Після уніфікованих методів визначення чутливості мікроорганізмів до хіміотерапевтичних препаратів.
Дискодиффузионным методом визначають вказані групи чутливості мікроорганізмів, виходячи з різних діаметрів затримки зростання бактерій навколо дисків з антибіотиками.
Визначення чутливості бактерій до антибіотиків і хіміотерапевтичних препаратів дискодиффузионным методом
Для дослідження необхідно використати стандартні поживні середовища: вітчизняні середовища АГВ, № 1, № 2; зарубіжні - агар Mueller - Hinton 2. Сухе поживне середовище АГВ для визначення чутливості мікроорганізмів до антибіотиків исполь-зуется відповідно до настанови по застосуванню. Середовища № 1 і № 2 виготовляють в лабораторії по їх пропису: середовище № 1 - бульйон Хоттингера (120-140 % амминного азоту) - 1 л, агар-агар 15 г, натрію фосфат двозаміщений 3 г, рН 7,2-7,4; середовище № 2 - мясопептонный бульйон(1:2) 1 л, агар-агар 15 г, натрію фосфат двозаміщений 3 г, рН після стерилізації 7,2-7,4. Для гемофільних бактерій, що не ростуть на вказаних середовищах, додатково додають 5 % дефібринованої або гемолізованої крові. Агар МиеПег-Нттоп 2 може застосовуватися і для визначення чутливості до сульфаніламідів. Чашки Петрі з поживним середовищем перед вживанням підсушують впродовж 30-40 хв. Стандартні диски з антибіотиками промислового виробництва використовуються тільки до закінчення терміну їх придатності. Після розкриття флакон з дисками можна зберігати протягом тижня в рефрижераторі при температурі 10± 1 "З.
На поверхню підсушеного поживного середовища в чашці Петрі наносять 1 мл досліджуваної культури(18-20-ти годинної бульйонної культури або стомільйонної суспензії з агарової культури), рівномірно розподіляють шляхом похитування чашки і видаляють надлишок піпеткою. У екстрених випадках для отримання орієнтовних результатів допускається безпосередній посів клінічного матеріалу. Щільні субстрати(мокрота, гній, кал та ін.) мають бути заздалегідь гомогенізовані(розтерті), січу і ексудат засівають з облогу після центрифугування. Матеріал наносять на чашку ватним тампоном. Після виділення чистої культури дослідження повторюють вже з нею. Після посіву чашки підсушують при кімнатній температурі в течію(10- 15) хв. Диски з антибіотиками накладають пінцетом на рівній відстані один від одного і на 2 см від краю чашки(на 1 чашку не більше 6 дисків). При нагоді, використовують для накладення дисків спеціальний пристрій - диспенсер. Чашки відразу ставлять в термостат догори дном і інкубують при °З в течію(18-20) годину.
Для обліку результатів чашки поміщають догори дном на темну матову поверхню і освітлюють настільною лампою під кутом 45°. Допускається облік у світлі, що проходити. За допомогою лінійки вимірюють діаметри зон затримки зростання навколо дисків, включаючи діаметр дисків, з точністю до 1 мм. Не слід звертати увагу на дуже дрібні колонії в межах зони гальмування зростання. При нерізко обкреслених краях зон або зонах з подвійними контурами слід вимірювати діаметр зони по найбільш чіткому контуру. За наявності великих колоній по периферії зони межа її визначається по внутрішньому краю цих колоній. Якщо великі колонії розподілені по усій зоні, то слід перевірити культуру на чистоту і випробування повторити. Оцінку результатів проводять по таблиці. 39, відповідно до використовуваного середовища і видів бактерій.
Для контролю точності і відтворюваності результатів, а також якості поживних середовищ, дисків і методики, проводять випробування чутливості до антибіотиків еталонних штамів Escherichia coli АТСС 25922, Staphylococcus aureus АТСС 25923, Pseudomonas aeruginosa АТСС 27853.
Вибір методу і проведення оцінки антибиотикорезистентности мікроорганізмів
Сучасні стандартизовані методи оцінки антибиотикорезистентности подразделяют на методи серійних розведень і дифузійні.
Методи серійних розведень засновані на прямому визначенні основного кількісного показника, що характеризує мікробіологічну активність антибіотика, - величини мінімальної пригнічуючої концентрації (МПК), визначуваної як: мінімальна концентрація, що пригнічує видиме зростання досліджуваного мікроорганізму. Для визначення величини МПК задані концентрації антибіотика вносять в поживне середовище, яке потім засівають культурою досліджуваного МПК організму; після інкубації оцінюють наявність або відсутність видимого росту.
З принципових чинників, що обмежують точність методів серійних разів- ведень, слід зазначити дискретність використовуваних концентрацій антибіотиків. При використанні традиційного методу двократних розведень, що фіксується експериментатором МПК не відповідає істинній величині цього показника. Істинна величина МПК знаходитиметься в проміжку між зафіксованою експериментатором концентрацією і концентрацією, в 2 вражай їй що поступається і не вызвающей інгібіцію видимого зростання. Так, при інгібіції зростання мікроорганізму у присутності 2.0 мкг/мл анти-биотика і при його наявності у присутності 1.0 мкг/мл препарату, точне значення М ПКбуде! знаходитися в проміжку між цими величинами. При більш високих значеннях що фіксується експериментатором МПК, наприклад при 64.0 мкг/мл, істинне значення цієї величини виявляється злокалізованим в еше ширшому діапазоні : від 64,0 до 32,0 мкг/мл
Від характеру покладу використовуваного поживного середовища, розрізняють методи серійних розведень в агарі або бульйоні.
Поклад від об' єму використовуваного рідкого поживного середовища, виділяють методи серійних макро- і мікророзведень.
Різновидом методу серійних розведень є також метод, заснований на використанні тільки двох концентрацій антибіотиків, що відповідають пороговим(тобто концентраціям, що відділяють чутливі мікроорганізми від проміжних і проміжні від резистентних). Метод забезпечує отримання якісних результатів, що дозволяють віднести досліджуваний мікроорганізм до певної категорії чутливості.
Нині існують дві основні модифікації дифузійного методу: дискодиффузионный і эпсилометрии(Е-тест).
Дискодиффузионный метод заснований на реєстрації діаметру зони інгібіції зростання досліджуваного мікроорганізму навколо круглого носія антибіотика(паперового диска). Утворення зони інгібіції зростання відбувається в результаті дифузії антибіотика з носія в поживне середовище. У певних межах величина діаметру зони інгібіції зростання жорстко пов'язана з величиной МПК. Дискодиффузионный метод дозволяє лише побічно судити про величину МПК. Основним результатом є віднесення мікроорганізму до однієї з категорій чутливості.
У эпсилометрическом методі як носій використовується вузька смужка полімеру(0,5 х 6,0 см), просочена різними концентраціями антибіотика(від мінімальних до максимальних). Інгібіція зростання мікроорганізму навколо смужки носія відбувається тільки в тій зоні, де концентрація антибіотика, дифундуючого з носія, вище МПК. Результатом дифузії антибіотика в поживне середовище є утворення навколо носія каплевидної зони інгібіції зростання. Величини концентрації антибіотика в кожній ділянці носія друкарським способом нанесені на тому, що відповідає відрізку зовнішній(зверненою до дослідника) поверхні носія. Величину МПК враховують в тому місці, де межа зони інгібіції зростання впритул підходить до носія. Детальні інструкції по проведенню Е-тесту додаються виготівником до набору реактивів, в зв'язку з цим деталі методу розглядатися не будуть.
Основними параметрами, що впливають на вибір методу оцінки антибиотикорезистентности являються :
точність;
відтворюваність;
трудомісткість;
вартість.
Методи визначення антибиотикорезистентности.
Метод серійних розведень
Постановка методу серійних розведень для оцінки антибиотикорезистентности включає наступні етапи:
приготування розчинів антибіотиків;
приготування поживних середовищ з розчинами антибіотиків;
приготування суспензії досліджуваного мікроорганізму, її стандартизація і инокуляция;
інкубація;
облік результатів;
інтерпретація.
Украй важливими для методу серійних розведень етапами є: приготування розчинів антибіотиків, поживних середовищ, змішування розчинів антибіотиків і поживних середовищ.
Діапазон концентрацій антибіотиків для оцінки чутливості
Антибиотики |
Энтеробактерии |
P.aeruginosa |
Стафшоккоки |
Стрептоккоки |
Аминогликозиды |
0,03-128 |
0,06-128 |
0,008-128 |
1-128 |
Пенициллин |
– |
– |
0,03-128 |
0,008-8 |
Оксациллин |
– |
– |
0,5-128 |
– |
Ампициллин |
0,25-128 |
– |
0,03-128 |
0,008-8 |
Ампициллин/ сульб3* |
0,25-128 |
– |
0,008-16 |
– |
Азлоциллин |
0,25-128 |
0,5-512 |
0,06-128 |
– |
Цефазолин |
0,25-128 |
– |
0,03-128 |
0,008-32 |
Цефалексин |
0,25-128 |
– |
0,5-64 |
0,12-128 |
Цефотаксим |
0,004-128 |
0,5-512 |
0,5-128 |
0,004-128 |
Цефтриаксон |
0,004-128 |
0,5-512 |
0,5-128 |
0,004-128 |
Цефтазидим |
0,004-128 |
0,25-64 |
2-128 |
0,03-128 |
Имипенем |
0,12-32 |
0,25-128 |
0,004-1 |
0,004-16 |
Хлорамфенікол |
0,25-128 |
– |
2-16 |
1-16 |
Ципрофлоксацин |
0,004-8 |
0,015-8 |
0,06-2 |
0,12-8 |
КлиндамициЯ |
– |
– |
0,03-8 |
0,008-12 |
Еритроміцин |
– |
– |
0,12-128 |
0,06-8 |
Фузидин |
– |
– |
0,03-8 |
0,5-128 |
Ріфампін |
– |
– |
0,004-4 |
0,008-64 |
Тетрациклін |
0,25-128 |
– |
0,05-128 |
0,03-128 |
Ванкоміцин |
– |
– |
0,03-8 |
0,12-16 |
Сульфаніламіди |
4-128 |
– |
– |
– |
Загальні зауваження по методах серійних розведень
Несмотря на то, что методы серийных разведений являются наиболее точными и информативными, их постановка в практических лабораториях сопряжена со значительными методическим трудностями. Прежде всего, речь идет о необходимости использования антибиотиков с четко известным уровнем активности, соблюдения жестких низкотемпературных режимов хранения, контроля качества питательных сред, трудоемкости приготовления рабочих растворов антибиотиков. этапов, но обеспечивает получение достоверных количественных результатов по уровню антибиотикорезистентности.
В то же время, использование коммерческих тест-систем на основе метода серийных микроразведений позволяет избегать трудоемких процедур по стандартизации подготовительных
Весьма экономичным и простым в исполнении является также вариант метода серийных микроразведений, основанный на использовании двух пороговых концентраций.
Диско-диффузионный метод
Виготовлення необхідних для постановки диско-диффузионного методу дисків в лабораторних умовах недоцільно. Це пов'язано з жорсткими вимогами до ис-ходным матеріалів(субстанціям антибіотиків, картону) і зі значною трудоем-костью методів контролю якості дисків.
Постановка диско-диффузионного методу оцінки антибиотикорезистентности включает наступні етапи:
– приготування поживних середовищ;
– приготування суспензії мікроорганізму і інокуляція;
– накладення дисків і інкубація;
– облік результатів.
Для отримання правильних результатів при постановці диско-диффузионного методу необхідно жорстко дотримуватися правил зберігання і використання комерційних дисків, інакше вміст в них антибіотиків може знизитися нижче допустимого рівня(передусім, в результаті зволоження) ще до закінчення терміну придатності. Диски повинні зберігатися при температурі °З, щільно укупоренными так, щоб гаранти-ровать неможливість попадання у флакон вологи, для додаткової гарантії у флаконах комерційних дисків міститься вологоуловлювач(силікагель). Флакони з дисками доцільно витягати з холодильника за 1 годину до початку роботи і витримувати закритими при кімнатній температурі(це забезпечує вирівнювання температури дисків і довкілля і, відповідно, запобігає утворенню конденсату вологи після відкривання флаконів).
Медикаментозна обробка птиці
Традиційно медикаментозну обробку птахи використовують для профілактики захворювань, що викликаються бактеріями, простими і грибками. Медикаментозна обробка проти кокцидиоза(прості) і аспергиллеза(грибкові) детально описана у відповідних статтях розділу «Хвороби птаха». Тому ми зупинимося детальніше на бактерійних захворюваннях. Традиційно профілактику і лікування бактерійних захворювань проводять за допомогою антибіотиків різних груп.
При складанні програми антибиотикотерапии слід враховувати:
склад патогенної мікрофлори. Визначається за підсумками бактериальных посівів трупів курчат або задохликов в інкубаторі. Залежно від результатів, а також виходячи з досвіду роботи фабрики, можуть застосовуватися як антибіотики широкого спектру дії(энрофлоксацин, эксинель і так далі), а так і спеціалізовані (тилан для мікоплазми);
чутливість мікрофлори. Визначається по затримці зони зростання мікроорганізмів. Вибирається антибіотик з найбільшою реакцією. Необхідно постійно робити подібний аналіз, оскільки чутливість мікроорганізмів до одних і тих же антибіотиків може знижуватися;
спосіб застосування. Найбільш традиційна випойка антибіотиків з водою, може також застосовуватися ін'єкційний(Эксинель) або аерозольний(тилан);
Доза препарату. Може бути профілактичною, а може бути лікувальною залежно від ситуації на фабриці. Рекомендуємо в перші дні вирощування, коли курчата ще погано п'ють, застосовувати 1,5-2-кратне дозування препарату.
Терміни застосування. Звичайний цей початок вирощування(перші 3-5 днів) і повторення у віці 24-28 днів. Крім того, антибіотики випаюються з лікувальною метою при виникненні захворювання, але не пізніше необхідного терміну виведення препарату з організму.
Таблиця 3.2.5. Приклад схеми обробки антибіотиками
Вік птаха |
1 варіант |
2 варіант |
0- 5 днів |
Эксинель одноразово в ин-кубаторе 1 доза/голову |
Энрофлоксацин з водою 1 г/л води |
24-27 день |
Тилан з водою 1 г/л води |
Аерозольна обробка 5% розчин тилана(3 г на 1 м3) |
Одним із засобів поліпшення імунної реакції птаха в умовах зараження патогенною мікрофлорою є добавка препарату Сел-плекс(Олл-тек). Що міститься в нім селенометионин є незамінним джерелом селену в умовах захворювання птаха. Селен використовується для вироблення ферментів, що розщеплюють токсини мікрофлори і зменшують токсикоз птаха, а відповідно відмінок і втрату продуктивності. Позитивний ефект від добавки відбитий в таблиці 3.2.6:
Таблиця 3.2.6. Ефект застосування Сел-плекс
Умови |
Жива вага в 42 дні, грам |
Конверсія корму |
Відмінок, % |
Контроль |
2047 |
1,95 |
16,7 |
Контроль + Сел-плекс |
2283 |
1,82 |
5,0 |
Контроль + Е. коли |
1896 |
2,09 |
36,7 |
Контроль + Е. коли + Сел-плекс |
2098 |
1,93 |
15,0 |
Останнім часом широке поширення отримали різні альтернативи антибіотикам.
1) Пребиотики - речовини, сприяючі измененению складу мікрофлори в шлунково-кишковому тракті. При цьому деякі з них(органічні кислоти) змінюють кислотність, створюючи умови для кращого розвитку корисної мікрофлори і пригноблення патогенною, інші (фруктоолигосахариды) є джерелом специфічних поживних речовин для зростання корисної мікрофлори(біфідобактерії). Особливою групою коштують маннаноо-лигосахариды, перешкоджаючі колонізації шлунково-кишкового тракту патогенною мікрофлорою - адсорбуючи патогенні мікроорганізми(Е. коли, сальмонелла). В результаті досягається зниження кількості патогенних бактерій, покращується імунний статус і покращується продуктивність . Приме-ром позитивного ефекту маннаноолигосахаридов являється застосування препарату Био-Мос(таблиця 3.2.7).
Таблиця 3.2.7. Порівняння ефективності Био-Моса і Авиламицина(Великобританія)
Показники |
Биомос |
Авиламицин |
Посаджено птахи, гол. |
87400 |
90000 |
Знято птахи з відгодівлі, гол. |
83388 |
85878 |
Відмінок,% |
2,94 |
3,75 |
Вибраковування,% |
1,04 |
1,6 |
Жива вага, г |
2,11 |
2,11 |
Середній вік, днів |
39,1 |
39,0 |
Конверсія корму |
1,69 |
1,75 |
Індекс ефективності |
303 |
294 |
2) Пробіотики - живі культури корисної мікрофлори(лактобактерії, біфідобактерії і так далі), що заселяються в шлунково-кишковий тракт і витісняють патогенну мікрофлору. Ефективність роботи пробіотиків багато в чому залежить від способу їх застосування, оскільки живі культури часто гинуть при грануляції корму, можливе їх введення з водою.
3) Спеції і лікувальні трави. Більшість вживаних препаратів зі змістом орегано, часнику, перцю, розмарину роблять антибактеріальний і имунностимулирующий ефект і можуть бути рекомендовані в якості підтримувальної терапії. Ефект застосування цих препаратів приведений в таблиці 3.2.8.
Таблиця 3.2.8. Ефективність застосування альтернативних продуктів
Препарати |
Жива маса, г |
Споживання корму, г |
Конверсія корму |
|||
21 день |
42 дня |
21 день |
42 дня |
21 день |
42 дня |
|
Контроль |
584 |
1950 |
1018 |
3922 |
1,89 |
2,05 |
Органічні кислоти |
607 |
1978 |
1044 |
3955 |
1,85 |
2,04 |
Пробіотики |
603 |
2056 |
1064 |
4037 |
1,89 |
2,00 |
Спеції |
619 |
2104 |
1088 |
4078 |
1,9 |
1,98 |
ЛІКУВАННЯ І ПРОФІЛАКТИКА ХВОРОБ ПТИЦІ
Розвиток інфекційних захворювань залежить від 3 чинників.
Резистентність птиці - може бути підвищена за рахунок використання засобів внутрішнього захисту організму.
Кількість хвороботворних агентів, що потрапили в організм, - може бути максимально понижено при використанні системи біозахисту(зовнішній захист організму).
3) Здібності інфекції викликати захворювання. Цей параметр дуже мало залежить від нас і тому повинен постійно контролювати-ця для забезпечення адекватної роботи перелічених вище систем захисту.
3.2.1. БІОЗАХИСТ
Біозахист - комплекс заходів спрямованих на зниження потенційної можливості появи захворювань.
Основні 5 принципів біозахисту.
Обов'язкове дотримання заходів по біозахисту кожним з працівників підприємства без виключення;
Дотримання принципу «брудної» і «чистої» зони. Птах і площадка вирощування розглядається як «чиста» зона, а усе інше за межами - як «брудна» зона. Будь-яке переміщення з «брудної» зони в «чисту» повинне контролюватися з метою запобігання занесенню захворювання.
Мінімальна різниця у віці птаха на одному майданчику.
Проведення санітарної обробки майданчиків(санперерва) після вирощування.
Контроль за біобезпекою усіх матеріалів що поступають на майданчик ззовні.
1. Обов'язкове дотримання заходів по біозахисту кожним з працівників підприємства без виключення.
Кожен з працівників підприємства відповідає за певну ділянку системи біобезпеці на своєму підприємстві. Приклад розподілу відповідальності наведений в таблиці 3.2.1.
Таблиця 3.2.1. План по профілактиці інфекційних захворювань
№ з/п |
Найменування заходів |
Виконавці |
1. |
Птахофабрика працює в режимі «закритого» типу, посеще-ния виробничої зони особам, не задіяним в технологічному процесі, - строго заборонено |
Директор, головний ветлікар |
2. |
Комплектація однієї виробничої ділянки одновоз-растной птахом |
Гл. технолог |
3. |
Строго проводити вакцинопрофілактику проти инфекцион-ных хвороб птахів згідно інструкції про заходи по профілактиці інфекційних хвороб(ИБК, БГ, НБ) |
Головний ветлікар |
4. |
Строго дотримуватися вимог біобезпеки і ветеринарно-санітарних вимог до птахофабрики |
Головний вет-врач, робітники |
6. |
Дотримуватися міжциклічної профілактичної перерви меж-ду посадками птаха |
Головний ветлікар Гл. технолог |
7. |
Забезпечити робітників птахофабрики спецодягом |
Директор |
8. |
Контролювати епізоотичне благополуччя господарства -поставщика інкубаційного яйця і території, на якій воно знаходиться |
Головний ветлікар |
9. |
Строго проводити обробку транспорту перед в'їздом на територію птахофабрики |
Головний ветлікар |
10. |
Робітником птахофабрики, що живе в приватному секторі, строго забороняється зміст свійської птиці |
Робочі птахофабрики |
11. |
Проводити постійний контроль клінічного стану птаха |
Головний ветлікар |
12. |
Строго проводити утилізацію трупів в котлах Лапса |
Головний ветлікар |
13. |
Забезпечити проведення лабораторно-діагностичних ис-следований матеріалів(кров, трупи) в лабораторії хозяй-ства і державній лабораторії ветеринарної медици-ны |
Головний ветлікар |
14. |
Проводити контроль епізоотичної ситуації в частці сек-торе, прилеглому до птахофабрики |
Головний ветлікар |
15. |
Проводити серед робітників птахофабрики роз'яснювальну роботу про заходи профілактики інфекційних хвороб птахів |
Головний ветлікар |
Дотримання принципу «брудної» і «чистої зони».
Мінімальна різниця у віці птиці на одному майданчику.
Птах на вашій фермі має бути максимально захищений від попадання усіх можливих збудників захворювань. Розпочинати подібний захист необхідно з вибору розташування ферми.
По ветеринарно-санітарних нормах відстань до найближчої птицефа-брики має бути не менше 2 км, а відстань між зонами однієї птахофабрики - не менше 500 м. На одній зоні можна розміщувати до 250 ТОВ голів курчат-бройлерів з різницею у віці не більше 7 днів. Усі ці нормативи повинні дотримуватися для недопущення занесення інфекції ззовні на територію птахофабрики і перехресного перенесення захворювання усередині фабрики. Територія як фабрики, так і виробничої зони має бути організована так, щоб потоки «чистих» надходжень : курчат, підстилки, корму - були відокремлені від шляхів вивезення «брудної» продукції : птахи на забій, посліду, паде-жа. Перетин цих шляхів створює ризик для перезаражения птаха і возник-новения захворювань.
Правила біобезпеки на фабриці
Птахофабрика працює в закритому режимі, стороннім особам, не за-действованным в технологічному процесі, вхід на територію производ-ственных ділянок строго забороняється.
Обслуговуючому персоналу дозволяється вхід на територію птицевод-ческого господарства тільки через ветеринарно-санітарний пропускник, а в'їзд транспорту - через постійно діючі дезбарьеры. Усі інші входи у виробничі зони птахофабрики постійно закриті.
Перед входом на виробничу територію усі працівники зобов'язані у ветеринарно-санітарному пропускнику зняти і залишити у вбиральні(у шафі, закріпленій за кожним працівником бригади) свій одяг, взуття і надіти чистий робочий спецодяг. Після закінчення роботи спецодяг зняти і надіти свій одяг і взуття. Усі працівники господарства до і після роботи повинні приймати душ. Виходити в спецодягу і спецвзутті, а також виносити її за межі птахівницької зони категорично запре-щается.
Відвідування бригади відвідувачами допускається тільки по дозволу головного ветеринарного лікаря господарства. Ці особи зобов'язані пройти санитарну обробку у ветеринарно-санітарному пропускнику і надіти спецодяг і взуття. Для цієї мети в санпропускнику зберігають спеціальний резерв спецодягу і взуттю.
Усім особам, окрім обслуговуючого персоналу, що входить на територію комплексу, категорично забороняється стикатися з птахом і кормами.
Біля входу в пташники, інкубаторій, забійний і кормовий цехи, склади і дру-гие приміщення для дезинфекції взуття обладнали дезинфекційні кювети в усю ширину проходу, які регулярно заповнюють дезинфікуючими розчинами.
У кожному птахівницькому приміщенні вікна, дверей, вентиляційні от-верстия обладнали рамами з сіткою щоб уникнути зальоту дикого птаха. Також ведеться постійна боротьба з мишоподібними гризунами.
Щоб уникнути занесення збудників інфекцій на територію птицефабри-ки робітникам і службовцям цього господарства забороняється придбавати птаха для особистого користування в господарствах і на ринку.
Комплектування стада птахів здійснюють з одного джерела - племенно-го птахівницького господарства, благополучного по заразних хворобах птахів.
Інкубаційні яйця або курчата приймаються господарством на підставі документів, що підтверджують благополуччя господарства-постачальника по ин-фекционным хворобах птахів, з вказівкою вакцинації її проти хвороби Нью-Кастла, інфекційного бронхіту і інших хвороб. Після отримання яйця проводиться дезинфекція парами формальдегіду яйця в тарі і другий раз яйця в лотках. Після звільнення інкубаційних або вивідних залів про-водится миття і дезинфекція камер і залів згідно інструкції.
на так, щоб потоки «чистих» надходжень : курчат, підстилки, корму - були відокремлені від шляхів вивезення «брудної» продукції : птахи на забій, посліду, паде-жа. Перетин цих шляхів створює ризик для перезаражения птаха і возник-новения захворювань.
Правила біобезпеки на фабриці
Птахофабрика працює в закритому режимі, стороннім особам, не задіяним в технологічному процесі, вхід на територію виробничих ділянок строго забороняється.
Обслуговуючому персоналу дозволяється вхід на територію птахопідприємства тільки через ветеринарно-санітарний пропускник, а в'їзд транспорту - через постійно діючі дезбар’єри. Усі інші входи у виробничі зони птахофабрики постійно закриті.
Перед входом на виробничу територію усі працівники зобов'язані у ветеринарно-санітарному пропускнику зняти і залишити у вбиральні(у шафі, закріпленій за кожним працівником бригади) свій одяг, взуття і надіти чистий робочий спецодяг. Після закінчення роботи спецодяг зняти і надіти свій одяг і взуття. Усі працівники господарства до і після роботи повинні приймати душ. Виходити в спецодягу і спецвзутті, а також виносити її за межі птахівницької зони категорично запре-щается.
Відвідування бригади відвідувачами допускається тільки по дозволу головного ветеринарного лікаря господарства. Ці особи зобов'язані пройти санитар-ную обробку у ветеринарно-санітарному пропускнику і надіти спецодяг і взуття. Для цієї мети в санпропускнику зберігають спеціальний резерв спецодеж-ды і взуттю.
Усім особам, окрім обслуговуючого персоналу, що входить на територію комплексу, категорично забороняється стикатися з птахом і кормами.
Біля входу в пташники, інкубаторій, забійний і кормовий цехи, склади і дру-гие приміщення для дезинфекції взуття обладнали дезинфекційні кювети в усю ширину проходу, які регулярно заповнюють дезинфікуючими розчинами.
У кожному птахівницькому приміщенні вікна, дверей, вентиляційні от-верстия обладнали рамами з сіткою щоб уникнути зальоту дикого птаха. Також ведеться постійна боротьба з мишоподібними гризунами.
Щоб уникнути занесення збудників інфекцій на територію птицефабри-ки робітникам і службовцям цього господарства забороняється придбавати птаха для особистого користування в господарствах і на ринку.
Комплектування стада птахів здійснюють з одного джерела - племенно-го птахівницького господарства, благополучного по заразних хворобах птахів.
Інкубаційні яйця або курчата приймаються господарством на підставі документів, що підтверджують благополуччя господарства-постачальника по ин-фекционным хворобах птахів, з вказівкою вакцинації її проти хвороби Нью-Кастла, інфекційного бронхіту і інших хвороб. Після отримання яйця проводиться дезинфекція парами формальдегіду яйця в тарі і другий раз яйця в лотках. Після звільнення інкубаційних або вивідних залів про-водится миття і дезинфекція камер і залів згідно інструкції.
Устаткування, інвентар, спецодяг, взуття і інші предмети марки-руют і закріплюють за кожним пташником. Передавати вказані предмети з одного пташника в інший забороняється. Обо-ротну тару, що поступає в господарство, обов'язково піддають механічному очищенню, миттю і де-зинфекции і тільки після цього завозять на виробничу територію господарства.
Для обслуговування птаха закріплюють постійний персонал, що пройшов медичне обстеження і відповідну зоотехнічну і ветеринар-ную підготовку.
З метою створення імунної зони навколо птахівницьких господарств птаха усіх категорій господарств в радіусі не менше 5 км піддають вакцинації і іншій обробці відповідно до плану протиепізоотичних мероприя-тий цього господарства.
Територію птахофабрики постійно тримають в чистоті. У кожного поме-щения обладнали відповідні місткості для відмінка, який специаль-ным транспортом, закріпленим за цією зоною, щодня відвозять в цех утилізації в котлах Лапса.
Відпрацьовану і забруднену воду з пташників і з ветеринарно-санітарних об'єктів знезаражують на санітарно-очисній станції.
За відсутності системи каналізації обладнали цементовані колодязі-відстійники для збору відпрацьованої води. У цих колодязях воду хло-рируют і вивозять в спеціально відведене місце.
Перед розміщенням чергової партії птаха передбачають межци-кловые профілактичні перерви: при підлоговому вирощуванні молодня-ка птахів за технологією 1 -47 днів - 14 днів.
В період профілактичної перерви між виведенням птаха і размеще-нием нової партії приміщення і устаткування очищають і дезинфікують. Увесь дрібний інвентар, використовуваний в цьому приміщенні, також миють і дезинфікують. Стіни, двері, полу, перекриття і систему вентиляції тща-тельно очищають(див. Технологічну схему підготовки).
Дезинфекцію проводять відповідно до діючої інструкції по проведенню ветеринарної дезинфекції, дезинвазії, дезинсекції і дерати-зации і здійснюють контроль її якості(див. Технологічну схему под-готовки).
У кожну бригаду(чи ділянка), що окремо стоїть, поміщають партії толь-ко одновікового птаха.
Розкриття полеглого птаха проводять в день відмінка, результати розтину з вказівкою причин відмінка заносять в спеціальний журнал.
У сумнівних випадках патологічний матеріал направляють для иссле-дования у ветеринарну лабораторію.
В цілях дотримання особистої гігієни обслуговуючого персоналу в кожному птахівницькому приміщенні є ємність з дезинфікуючою жидко-стью.
В період вирощування систематично спостерігаємо за станом здоро-вья молодняка, контролюємо поведінку кожної партії молодняка, поедае-мость корму, споживання води, динаміку приросту, стан пір'яного по-крова. У разі відхилення від фізіологічних норм з'ясовуємо і усуваємо
причини, ці відхилення, що зумовили. При необхідності проводимо соот-ветствующие лабораторні дослідження.
Для профілактики заразних хвороб(хвороба Нью-Кастла, інфекційний бронхіт, хвороба Гамборо та ін.), окрім загальних ветеринарно-санітарних заходів, проводимо вакцинацію птаха з урахуванням епізоотичної обстановки хо-зяйства і населених пунктів(см Вакцинація), що оточують його.
Під час забою бригада вилову заходить на бригаду через «брудні» ворота у своєму спецодягу. У випадку якщо проводиться технологічна отборка, бригада по вилову птаха має бути тільки в чистому спецодягу. Хаотиче-ские переміщення по ділянці робітників бригади вилову забороняється. При відвідуванні інших установ(їдальня, склад та ін.) робочі бригади повинні змінити одяг.
Робочі бригади по очищенню переміщаються через «брудні» ворота у своєму спецодягу. Одяг робітників повинен відповідати санітарним нормам. При відвідуванні інших установ(їдальня, склад та ін.) робочі бригади повинні змінити одяг.
Робочі бригади миття відвідують бригаду у своєму спецодягу. При по-сещении інших установ(їдальня, склад та ін.) робочі бригади повинні змінити одяг.
Робочі бригади по техобслуговуванню, робітники газової служби, робочі електропостачання, бригада по капітальному будівництву та ін. вспомога-тельных служб мають право вільного переміщення по території ділянки без зміни одягу у тому випадку, якщо на ділянці немає птаха або проводиться миття пташників.
У випадку якщо на ділянці по вирощуванню птаха була проведена волога дезинфекція пташників(частково або повністю), усе посети-тели при вході повинні змінити взуття і одяг(допускаються одноразо-вые комбінезони).
У випадку якщо на бригаді проводиться завершальна дезинфекція парами формальдегіду, усі відвідувачі ділянки по вирощуванню бройлерів повинні змінити одяг і взуття при вході в чисту зону.
Щоденне прання спецодягу обов'язкове для робітників усіх служб.
4. Проведення санітарної обробки майданчиків(санперерва) після вирощування
Таблиця 3.2.2. Технологічна схема санації птахівницьких бригад перед посадкою добового молодняка
Назва роботи |
Мета |
Заходи |
Ответствен-ный і контро-лирующий |
Подготов-ка до забою |
Подгото-вить брига-ду до прове-дению забою і санації |
За 5 днів до забою викосити траву на территории бригади, вирубати кущі, очистити отмостки від трави. Скошену траву зібрати і вивезти. За 1 день до забою прибрати з пташників дезкилимки і умивальників. Посуд для випойки вимити з дезраствором і прибрати. Забій птаха робити згідно вказань головного зоотехніка. Після закінчення забою віддаляються залишки кор-ма з кормових ліній і бункерів, прово-дится демонтаж кормових бункерков. Сітки для сануголков виносяться в пред-птичник до початку очищення |
Ответствен-ный: бригадир. Контролирую-щий: ветлікар |
Видалення птаха з птич-ника і волога дезин-фекция по посліду |
Осадження пилу і зниження микро-биальной загрязнен-ности |
Після видалення птаха і видалення остат-ков комбікорму з пташників проводиться зволоження стелі, стін, інвентаря, устаткування, підстилки гарячим 2% рас-твором кальцинованої соди. Пташник закривають на 6 ч. Система поения постійно має бути за-полнена водою |
Ответствен-ный: дезин-фекционная бригада. Контролирую-щий: бригадир |
Очищення помеще-ния від по-мета |
Видалити послід терри-тории бригади максималь-но швидко і в повному об'ємі |
Включає очищення, підмітання, по-грузку посліду і використаної підстилки. З підлоги віддаляється послід спочатку за допомогою трактора, потім ручна доочистка кутів і важкодоступних місць. Послід і використану підстилку вы-возить в закритому транспорті за системою «чорних» доріг на пометохранилище для біотермічного знезараження. Сітки для сануголков очищаються і виносяться в спеціально очищене місце в пташнику. Пульти управління, газогенератори дви-гателя очистити від пилу стислим повітрям, протерти 1% розчином «Виркон», закрити плівкою. Підмітається передпташник і доро-ги біля пташника. Випалення пера біля венти-ляторов. Опускаються лінії поения і в них закачується дезраствор. Після видалення посліду і сміття з території бригади, усі працівники повинні переодягнутися в чистий одяг і взуття, брудні речі стираються і дезинфікуються, взуття миється і об-рабатывается дезраствором. Проводиться прибирання санпропускника |
Ответствен-ный: бригада очищення. Контролирую-щий: ветлікар |
Назва роботи |
Мета |
Заходи |
Ответствен-ный і контро-лирующий |
Подготов-ка птични-ков до миття |
обеспече-ние про-ведения миття |
Мойці підлягає увесь інвентар, имеющий-ся на ділянці вирощування. Опускаються лінії напування і годування. Припливні клапана мають бути закриті, а клапана стельових вентиляторів відкриті. Спіралі ліній корм-ления виймаються на 20-25 см і фиксируют-ся в цьому положенні. Виймається спіраль з системи подання корму в пташник. З торцевих і бічних вентиляторів снима-ются чохли або плівка, віддаляються деревян-ные планки |
Ответствен-ный: бригадир. Контролирую-щий: бригадир миття |
Мойка |
Вологе видалення загрязне-ний поме-щений і оборудо-вания |
Починається миття зовні: миються ворота, стіни, припливні клапана, вентилятори, теплогенераторные, отмостки, кормові бункери. За наявності миються шахти потолочной вентиляції. Пташник замочується зсередини гарячою водою з кальцинованою содою, починаючи із стелі, шахт стельової вентиляції, стін, устаткування, заканчи-вая підлогою, і оставляется на 1,5-2,5 години. Під час замочування пташників при вимкненій напрузі миються електричні дроти. Додаткові годівниці миються горя-чей водою(65-70 °С) під тиском 70-75 атм. Потім їх миють у бочці з чистою теплою водою, споліскують в розчині «Виркон З», Годівниці складаються в спеціально відмитий кут і накриваються п/э плівкою. Мойка пташника робиться гарячіше во-дой(65-70 °С) під тиском 70-75 атм., починаючи із стелі, стельової вентиляції, стін припливних клапанів, вентиляторів, потім робиться миття технологическо-го устаткування і передпташників. Промы-ваются лінії поения від дезраствора під максимальним тиском. Пола миється в останню чергу; вода зганяється в стік, стік вичищається від бруду і миється. Потім миється «чорна» дорога, відмінковий майданчик, контейнери для відмінка і мусо-ра. Стічні жолоби на дорогах вимиваються і вичищаються, відкачуються і вичищаються септичні колодязі, дезблоки. У останній день миття миється централь-ная, «чиста» дорога |
Ответствен-ный: бригада миття. Контролирую-щий: ветлікар |
Назва роботи |
Мета |
Заходи |
Ответствен-ный і контро-лирующий |
Подготов-ка до випалення і вологій дезин-фекции |
|
У пташниках робиться заміна неис-правных лампочок, на плафони надіваються поліетиленові пакети. Пола і стічні жолоби мають бути пол-ностью сухими. Лінії поения і кормле-ния піднімають на максимальну висоту. Кормові бункери відкриваються знизу |
Ответствен-ный: бригадир Контролирую-щий : бригадир миття |
Випалення |
Провести термиче-скую дезин-фекцию по-верхностей і спалити максималь-ное количе-ство пера |
Випалення проводять 2 людини. Обпалюються пола і 0,5 м стіни внизу, передпташник, стоки, сітки для сануголков, залізо для зливу, майданчики перед птични-ками, ворота, кормові короби. Після закінчення випалення закачується 2% розчин формаліну в лінії поения. Закры-вается вентиляція, в пташнику устанавли-вается температура 25 °С. |
Ответствен-ный: бригада миття. Контролирую-щий: ветлікар |
Волога дезин-фекция |
Провести хімічну дезинфек-цию по-верхностей для уни-чтожения возбудите-лей заболе-ваний. |
Проводиться в тій же последовательно-сти, що і миття. Розчини повинні мати температуру 70 °З, оскільки в гарячому виді вони мають високу активність. Для цього використовують 3% розчин їдкого натру або 3% розчин формаліну з расче-та 1 л на 1 м2. Паралельно з дезинфекцією в пташнику проводиться зовнішня дезинфек-ция території каустичною содою з рас-чета 4л на м2. Потім грунт на відстані 2 м від пташника посипається вапном пу-шенкой 2 кг на м2. Тверді покриття доріг дезинфікуються тими ж розчинами |
Ответствен-ный: дезин-фекционная бригада Контролирую-щий : бригадир |
Білення |
Дополни-тельная де-зинфекция поверхно-стей підлоги |
Білення робиться гашеним вапном. Лінії поения і годування накриваються п/э плівкою, біляться стелі, стіни, цо-коля, пола, зливні жолоби, пола в пред-птичниках, поріг перед передпташниками, теплогенераторные, отмостки септичні колодязі, дез. блоки, отмостки і цоколя санпропускника. Септичні колодязі засипаються хлорним вапном |
Ответствен-ный: бригада миття. Контролирую-щий: бригадир |
Продовження таблиці 3.2.2 |
|||||||||||
Назва роботи |
Мета |
Заходи |
Ответствен-ный і контро-лирующий |
||||||||
Завезення под-стилки |
Обеспече-ние сухий выровнен-ной под-стилкой |
Перед завезенням підстилки робиться по-сыпание пола известью-пушонкой з розрахунку 0,3-0,5 кг/м2(тільки на суху полу). У стоки засипається хлорне вапно, після чого сто-ки закриваються плівкою або залізом. Завезення лушпиння робиться через задні ворота пташника. Підстилковий матеріал має бути сухим без грудок і механічних при-месей. Лушпиння розподіляється рівномірно по усьому пташникові шаром 3-10 см і выравни-вается, особливо довше поения |
Ответствен-ный: бригада. Контролирую-щий: бригадир |
||||||||
Монтаж оборудо-вания |
|
Лінії поения і годування вирівнюються по висоті, лушпиння довше поения за-стилается папером, лінія поения повинна проходити посередині постеленого паперу. Каплеуловители і автоматичні годівниці мають бути очищені від залишків винищити і дезинфектантов. Додаткові кормуш-ки розставляються в шаховому порядку на відстані 50-100 см Повітряні клапана щільно закриваються, задні ворота уплот-няются і забиваються плівкою. Робиться монтаж знятого устаткування. Устанавли-вается температура в пташнику 25-26 "З не менше 20 ч. Вологість не менше 75-80% |
Ответствен-ный: бригада. Контролирую-щий: бригадир |
||||||||
Аэро-зольная дезин-фекция |
Обробка пташника парами формаліну для обезза-раживания |
У пташник вносять увесь інвентар і посуд для выпойки ветеринарних препаратів. Система поения додатково заполня-ется 2% розчином формаліну. Аэрозоль-ная дезинфекція проводиться тільки при 70-80% вологості і температурі не нижче 25°С. Якщо вологість не відповідає тре-буемой нормі, в пташник методом аерозоля задувають додатково за допомогою аэро-зольного генератора гарячого туману воду згідно з таблицею: |
Ответствен-ный: начальник дезотряда. Контролирую-щий: бригадир, ветлікар |
||||||||
|
|
Початкова |
Розмір пташника |
|
|
||||||
|
|
вологість, % |
108x18 |
98x18 |
80x14 |
|
|
||||
|
|
30 |
89 |
70 |
39 |
|
|
||||
|
|
35 |
80 |
63 |
35 |
|
|
||||
|
|
40 |
72 |
56 |
31 |
|
|
||||
|
|
45 |
63 |
49 |
27 |
|
|
||||
|
|
50 |
54 |
42 |
23 |
|
|
||||
|
|
55 |
45 |
35 |
19 |
|
|
||||
|
|
60 |
36 |
28 |
15 |
|
|
||||
|
|
65 |
27 |
21 |
12 |
|
|
||||
|
|
70 |
18 |
14 |
8 |
|
|
||||
|
|
75 |
9 |
7 |
4 |
|
|
||||
181 |
|||||||||||
Закінчення таблиці 3.2.2 |
|||||||||||
Назва роботи |
Мета |
Заходи |
Відповідальний і контроли-рующий |
||||||||
Аэро-зольная дезин-фекция |
|
Задувається 37-40% розчин формаліну з розрахунку 30 мл на 1 м2 за допомогою аэро-зольного генератора гарячого повітря. Температура в пташнику підтримується впродовж 24 ч. ЗАХОДИ БЕЗПЕКИ при газуванні: - перед проведенням дезинфекції в радіусі 10 м слід розмістити на підстилці поліетиленову плівку з метою уловлювання крапель препарату; - не входити в приміщення без захисної маски(ніс, очі), оснащеної специаль-ным фільтром, пристосованим для ис-пользуемого препарату. - мінімум 2-3 ч необхідно провітрювати. 24 ч після застосування не можна входити в по-мещение без маски. Після обробки пташників грунт на рас-стоянии 2 м від пташника посипається изве-стью пушенкой 2 кг на м2. Після ретельного прибирання і миття бригад-ного будиночка проводять його аерозольною де-зинфекцию «Септодором» або «Виркон З». З пташника ветлабораторией беруться смы-вы на якість дезинфекції |
|
||||||||
Разгаза-ция і черінь-готування пташника до посадки |
|
За день до посадки пташник вентилюють для видалення пари формаліну, произво-дят закачування корму в автоматичні годівниці. Пташник прогрівається до нор-мативной температури посадки 32-34 °З(у літній час за 24 ч до посадки, в зимове - за 36 ч). Під високим тискам промы-вается лінія поения від залишків формали-на. Заправляються дезковрики, чашки для обробки рук в пташниках. Розставляються чашки для газації однохлористим йодом. Після підготовки пташника проводиться аерозольна дезинфекція пташника одно-хлористим йодом з розрахунку 0,5-0,7 мл на 1 м2. |
Ответствен-ный: бригада. Контролирую-щий: головний технолог, глав-ный інженер, головний вет-врач |
||||||||
5. Контроль за біобезпекою усіх матеріалів, поступающих на майданчик ззовні
Якість добових курчат
Курчата, що поступають, повинні досліджуватися(не менше 10 голів на пар-тию) на наявність: жовток - на сальмонеллу, псевдомону, эшерихию коли, ста-филококк; печінка - на сальмонеллу, псевдомону, эшерихию коли; кишечник -на сальмонеллу, эшерихию коли; легені - на аспергілез. По закінченню 3-5 днів потрібне дослідження рівня імунітету на вірусні захворювання(Гамборо, Нью-Кастла, інфекційний бронхіт) за допомогою специализиро-ванных аналізів(ИФА, РЗГА і так далі).
Контроль якості корму, води, підстилки
Корм, вода і підстилка поступають на ділянку вирощування ззовні і можуть бути потенційним джерелом захворювання. Для попередження цього не-обходимо контролювати:
Корм - тваринні корми на бактерійну обсемененность, комбікорми на загальну токсичність.
Воду - на зміст нітратів і нітриту, а також різних домішок
Підстилку - на присутність спор Аспергилл.
Підкислення кормів
У випадку якщо корми, що поступають, зберігатимуться впродовж деякого часу(більше 2 тижнів), доцільна добавка препаратів органічних кислот для попередження розвитку патогенної мікрофлори(сальмонелл) і розвитку грибків.
Гризуни і інші шкідники
Сторонні птахи, як дикі, таки домашні, а також інші тварини яв-ляются джерелом таких захворювань, як грип птаха і хворобу Нью-Кастла. Гризуни і жучки є джерелом поширення сальмонеллы, Е. Colli, вірусу інфекційної бурсальной хвороби і пташиної холери(пастерелеза). Мухи можуть переносити хвороба Марека і глисти. Гризуни також можуть послу-жить причиною таких прямих економічних втрат, як споживання корму, псування мішків з комбікормом, ізоляційних матеріалів і дротів.
Виконуйте наступні заходи для попередження попадання гризунів і комах на ферму і контакту їх із стадами птаха.
Реалізуйте ефективні програми контролю над гризунами і комахами.
Екрануйте місця, привабливі для гніздування диких птахів, і уни-чтожайте їх(дерева, кущі, бункери з комбікормами і так далі).
Старайтеся, щоб біля контейнерів з комбікормом не було його розсипів.
Відразу прибирайте і спалюйте полеглого птаха або позбавляйтеся від нього дру-гим надійним способом. На кожній фермі має бути надійне місце, призначене для зберігання полеглого птаха до тих пір, поки вона не буде знищена. Вантажівки, що перевозять полеглого птаха, ніколи не повинні въез-жать на «чисту» територію ферми.
/ Проводьте відстріл дикого птаха.
3.2.2. Внутрішній захист птаха Основними складовими внутрішнього захисту організму птаха яв-ляются :
імунна система птаха;
вакцинація для профілактики вірусних захворювань;
медикаментозна обробка птаха.
Імунна система птаха
Імунна система птахів складається із специфічних і неспецифічних ме-ханизмов. Неспецифічні імунні механізми - це засоби для боротьби із захворюваннями, які птах отримує з народженням. До них відносяться:
а) температура тіла — висока температура тіла птаха перешкоджає віз-
никновению багатьох захворювань. Шумлячий(эмфизематозный) карбункул, до-
торый часто виникає у худоби, — не є проблемою для птаха. Якщо тим-
пература тіла птаха знижується, може виникнути небезпека захворювання;
б) анатомічні особливості — багато хвороботворних організмів не
можуть проникнути через шкіру і слизову мембрану або поглинаються у ви-
діленому слизу. Недолік поживних компонентів(дефіцит біотвань) або
інфекційні захворювання підривають цілісність шкірного покриву тіла
дозволяючи проникати хвороботворним організмам;
в) нормальна мікрофлора — шкіра і кишечник підтримують щільність
популяції мікробів. Ця стабільна мікрофлора запобігає попада-
ние інвазивних хвороботворних організмів. Неправильне використання
антибіотиків або погана санація можуть порушити баланс мікрофлори. На
підтримці нормальної мікрофлори грунтується дія пре- і про-
біотиків.
г) епітелій респіраторного тракту — в респіраторному тракті знаходиться
епітелій(ворсинки), який запобігає попаданню хвороботворних ор-
ганизмов і пил. Якщо повітря в пташнику поганої якості (велике количе-
ство пилу і аміаку), цій системі буде важко впоратися з інфекцією;
д) інші чинники, що впливають на природжену резистентність, — це пі-
тание, довкілля(уникайте високих і низьких температур), вік
(молоді і старі птахи чутливіші до захворювань), воспалитель-
ные процеси, метаболічні чинники і інтерферон.
Чому хороші умови утримання дуже важливі, ставати зрозуміло при вивченні неспецифічних імунних механізмів. Наприклад, чрезмер-ное використання антибіотиків або погана дезинфекція може привести до знищення нормальної мікрофлори; погане годування може привести до проникнення хвороботворних організмів через захисну оболонку птаха.
Специфічні імунні механізми(придбаний імунітет), з іншого боку, характеризуються специфічністю, гетерогенністю і па-м'яттю. Ця система ділитися на клітинні і неклітинні(гуморальні) компоненти.
Неклітинні компоненти включають імуноглобуліни(антитіла) і клітини, які їх роблять. Антитіла специфічні для чужорідного тіла(антигена), до якого вони прикріплені. Наприклад, антитіла проти хвороби Нью-Кастла
прикріпляються тільки до вірусу цього захворювання і не взаємодіють, на-пример, з вірусом інфекційного бронхіту(гетерогенність).
Існує три класи антитіл, які робляться в організмі птаха після дії хвороботворного організму : lg М, lg G і lg А, lg М з'являються через 4-5 днів після дії патогена і зникають через 10-12 днів, lg G з'являється після 5 днів, дости-гает піку активності на 2-3 тиждень, потім поступово зникає, lg G є важливим захисним антитілом і визначається більшістю систем сероло-гических тестів. Таким чином, якщо ви хочете визначити рівні титрів ан-тител після вакцинації, сироватку слід збирати через 2-3 тижні. Якщо сироватка обстежена раніше цього часу, рівні титрів антитіл все ще ростуть, що утрудняє трактування програм вакцинації, lg А з'являється після 5 днів після дії. Ці антитіла знаходяться у виділеннях слизу очей, кишечника і респіраторному тракті і забезпечують «місцевий» захист цих тканин. Клітини, які роблять антитіла, називаються В-лімфоцити. Ці клітини утворюються в печінці зародка, жовтковому мішку і кістковому моз-ге. Потім вони пересуваються у бурсу фабрициевой сумки(БФ) після 15 днів інкубації. БФ програмує ці клітини, які після потрапляють в кров, селезінку, сліпі відростки, кістковий мозок, залозу Гарднера і тимус. Разру-шение клоачної сумки в ранньому віці хворобами Гамборо або Марека порушує виробництво В-клеток. Таким чином, птах не зможе противо-стоять захворюванням і відреагувати правильно на вакцинацію.
Коли хвороботворний організм потрапляє в тіло, його захоплюють фаго-цитарные клітини(макрофаги). Макрофаги транспортують хвороботворний організм до В-лімфоцитів. В-клетки реагують і роблять антитіла через 5 днів після контакту. Період затримки виникає, для того, щоб В-клетки могли бути запрограмовані і піддалися клітинному розмноженню для збільшення їх кількості. Якщо птах піддається дії цієї ж бо-лезни другий раз, реакція відбувається швидше, при цьому виробляється більша кількість антитіл(імунологічна пам'ять). Ця особливість і є практичною основою вакцинації : вводячи ослаблений вірус, ми формуємо реакцію організму, і при повторному зараженні(польовим штам-мом) антитіла виробляються швидше і вірус нейтралізується.
Антитіла не вбивають віруси і бактерії безпосередньо, вони приєднуються до хвороботворного агента і блокують його рецептори. Внаслідок цього болез-нетворные організми не можуть прикріплятися до цільових рецепторів клітин птаха. Антитіла, що прикріпляються, також перешкоджають пересуванню антиге-на по організму, що полегшує руйнування його макрофагами.
Клітинний компонент включає усі клітини, які роблять сопро-тивление антигенам, окрім тих, які відповідають за виробництво анти-тіл. Клітини цієї системи, Т-лімфоцити, утворюються там же, де і В-клетки. Проте Т-лімфоцити програмуються в тимусе, а не клоачній сумці. Т-лімфоцити мають більше гетерогенну популяцію, ніж В-клетки. Некото-рые Т-клітини діють, виробляючи лимфокины(було визначено більше 90 різних лимфокинов); інші руйнують мікроорганізми безпосередньо; не-которые Т-клітини посилюють відповідь В-клеток, макрофагів, або інших Т-клітин(хелпери); інші знижують активність цих клітин(кілери).
Клітинна система була виявлена, коли помітили, що птахи з пошкодженою клоачною сумкою могли протистояти і знищувати хвороботворні ор-ганизмы. Птах може виробляти антитіла самостійно або отримувати їх від іншого птаха. Якщо птах виробляє антитіла внаслідок воздей-ствия чужорідного тіла самостійно, цей процес називається активним імунітетом. Це відбувається або після вакцинації, або після польового зараження. Активний імунітет може бути пошкоджений усім, що руйнує клітинні і гуморальні імунні системи.
Якщо курча отримує антитіла від курки через яйце, це пасивний імунітет. Ці антитіла не виробляються птахом. Материнські антитіла є присутніми в жовтку, білці і рідині яйця. Якщо у птаха високий рівень антитіл проти захворювання, курча буде захищено декілька тижнів. Од-нако якщо імунна система курчати не стимулюється, вона не зможе виробляти антитіла і клітини пам'яті. Птахівники повинні враховувати материн-ские антитіла у курчати при розробці програм вакцинації. Якщо птахів прищеплюють, коли материнські антитіла на високому рівні, вакцина може бути частково нейтралізована, що зменшить відповідь. І навпаки, якщо вакцинацію відкласти і рівні материнських антитіл опустяться на низький рівень, результатом може бути сильна реакція на вакцину. Імунна система пти-цы допомагає запобігти захворюванню і досягти вираження максимального потенціалу птаха. Ми повинні вивчити, як скористатися перевагою цієї системи при розробці програм профілактики захворювань.
Вакцинація птаха
Мета вакцинації у виробництві птаха - запобігання або мінімізація проблем, що виникають внаслідок зараження польовим штамом хвороботворного організму. Вакцини і програми вакцинації сильно відрізняються по своїй ефективності і часто по методу розробки. На складання конкретної схеми(програми) вакцинації впливають багато чинників. У зв'язку з цим неможливо дати одну основну рекомендацію. Згідно епідеміологічної об-становке у вашому господарстві і лабораторним дослідженням, ви можете раз-работать схему вакцинації для вашого птаха. Програма вакцинації має бути пристосована до географічної місцевості, в якій живе птах, з урахуванням загрози захворювань, властивих цій місцевості. При розробці про-граммы вакцинації обов'язково консультуйтеся з ветеринарними лікарями.
ют першими від 4-5 днів після дії. Для досягнення титрами защит-ного рівня знадобиться додатковий час.
Пригнічення імунітету. Імунний статус стада - важливий чинник, у курчат може бути пригнічений імунітет із-за інфекцій вірусами заболева-ния запалення Фабрициевой залози, Марека внаслідок споживання корму з високим рівнем мікотоксинів. Термін «пригнічення імунітет» відноситься до ситуації, коли неклітинні(антитіла) і клітинні компоненти імунної системи недостатньо добре функционирут. Це може привести до розвитку обмеженого захисту або зайвої реакції на вакцину.
Медикаментозна обробка птаха
Традиційно медикаментозну обробку птахи використовують для профілактики захворювань, що викликаються бактеріями, простими і грибками. Медикаментозна обробка проти кокцидиоза(прості) і аспер-гиллеза(грибкові) детально описана у відповідних статтях розділу «Хвороби птаха». Тому ми зупинимося детальніше на бактерійних захворюваннях. Традиційно профілактику і лікування бактерійних захворювань проводять за допомогою антибіотиків різних груп.
При складанні програми антибиотикотерапии слід враховувати:
склад патогенної мікрофлори. Визначається за підсумками бактериаль-ных посівів трупів курчат або задохликов в інкубаторі. Залежно від результатів, а також виходячи з досвіду роботи фабрики, можуть застосовуватися як антибіотики широкого спектру дії(энрофлоксацин, эксинель і так далі), а так і спеціалізовані(тилан для мікоплазми);
чутливість мікрофлори. Визначається по затримці зони зростання мікроорганізмів. Вибирається антибіотик з найбільшою реакцією. Необхідно постійно робити подібний аналіз, оскільки чутливість мікро-організмів до одних і тих же антибіотиків може знижуватися;
спосіб застосування. Найбільш традиційна выпойка антибіотиків з водою, може також застосовуватися ін'єкційний(Эксинель) або аерозольний(тилан);
Доза препарату. Може бути профілактичною, а може бути лікувальною залежно від ситуації на фабриці. Рекомендуємо в перші дні выращива-ния, коли курчата ще погано п'ють, застосовувати 1,5-2-кратне дозування препарату.
Терміни застосування. Звичайний цей початок вирощування(перші 3-5 днів) і повторення у віці 24-28 днів. Крім того, антибіотики випаюються з лікувальною метою при виникненні захворювання, але не пізніше необхідного терміну виведення препарату з організму.
Таблиця 3.2.5. Приклад схеми обробки антибіотиками
Вік птаха |
1 варіант |
2 варіант |
0- 5 днів |
Эксинель одноразово в ин-кубаторе 1 доза/голову |
Энрофлоксацин з водою 1 г/л води |
24-27 день |
Тилан з водою 1 г/л води |
Аерозольна обробка 5% розчин тилана(3 г на 1 м3) |
Одним із засобів поліпшення імунної реакції птаха в умовах зараження патогенною мікрофлорою є добавка препарату Сел-плекс(Олл-тек). Що міститься в нім селенометионин є незамінним джерелом селену в умовах захворювання птаха. Селен використовується для вироблення ферментів, що розщеплюють токсини мікрофлори і зменшують токсикоз птаха, а відповідно відмінок і втрату продуктивності. Позитивний ефект від добавки відбитий в таблиці 3.2.6:
Таблиця 3.2.6. Ефект застосування Сел-плекс
Умови |
Жива вага в 42 дні, грам |
Конверсія корму |
Відмінок, % |
Контроль |
2047 |
1,95 |
16,7 |
Контроль + Сел-плекс |
2283 |
1,82 |
5,0 |
Контроль + Е. коли |
1896 |
2,09 |
36,7 |
Контроль + Е. коли + Сел-плекс |
2098 |
1,93 |
15,0 |
Останнім часом широке поширення отримали різні альтернативи антибіотикам.
1) Пребиотики - речовини, сприяючі измененению складу мікрофлори в шлунково-кишковому тракті. При цьому деякі з них(органічні кислоти) змінюють кислотність, створюючи умови для кращого розвитку корисної мікрофлори і пригноблення патогенною, інші(фруктоолигосахариды) є джерелом специфічних поживних речовин для зростання корисної мікрофлори(біфідобактерії). Особливою групою коштують маннаноо-лигосахариды, перешкоджаючі колонізації шлунково-кишкового тракту патогенною мікрофлорою - адсорбуючи патогенні мікроорганізми(Е. коли, сальмонелла). В результаті досягається зниження кількості патогенних бактерій, покращується імунний статус і покращується продуктивність . Приме-ром позитивного ефекту маннаноолигосахаридов являється застосування препарату Био-Мос(таблиця 3.2.7).
Таблиця 3.2.7. Порівняння ефективності Био-Моса і Авиламицина(Великобританія)
Показники |
Биомос |
Авиламицин |
Посаджено птахи, гол. |
87400 |
90000 |
Знято птахи з відгодівлі, гол. |
83388 |
85878 |
Відмінок,% |
2,94 |
3,75 |
Вибраковування,% |
1,04 |
1,6 |
Жива вага, г |
2,11 |
2,11 |
Середній вік, днів |
39,1 |
39,0 |
Конверсія корму |
1,69 |
1,75 |
Індекс ефективності |
303 |
294 |
2) Пробіотики - живі культури корисної мікрофлори(лактобактерії, біфідобактерії і так далі), що заселяються в шлунково-кишковий тракт і витісняють патогенну мікрофлору. Ефективність роботи пробіотиків багато в чому залежить від способу їх застосування, оскільки живі культури часто гинуть при грануляції корму, можливе їх введення з водою.
3) Спеції і лікувальні трави. Більшість вживаних препаратів зі змістом орегано, часнику, перцю, розмарину роблять антибактеріальний і имунностимулирующий ефект і можуть бути рекомендовані в якості підтримувальної терапії. Ефект застосування цих препаратів приведений в таблиці 3.2.8.
Таблиця 3.2.8. Ефективність застосування альтернативних продуктів
Препарати |
Жива маса, г |
Споживання корму, г |
Конверсія корму |
|||
21 день |
42 дня |
21 день |
42 дня |
21 день |
42 дня |
|
Контроль |
584 |
1950 |
1018 |
3922 |
1,89 |
2,05 |
Органічні кислоти |
607 |
1978 |
1044 |
3955 |
1,85 |
2,04 |
Пробіотики |
603 |
2056 |
1064 |
4037 |
1,89 |
2,00 |
Спеції |
619 |
2104 |
1088 |
4078 |
1,9 |
1,98 |
Євроінтеграційний шлях розвитку України обумовлює в галузі птахівництва більш складні вимоги та завдання у справі охорони здоров’я птиці, забезпечення населення високоякісною продукцією птахівництва.
Продукти харчування тваринного походження повинні відповідати міжнародним стандартам якості та безпеки, бути вільними від залишків токсичних речовин, патогенних та умовно-патогенних мікроорганізмів. Найважливішу роль у вирішенні цих завдань відіграють заходи, спрямовані на забезпечення благополучної епізоотичної ситуації щодо інфекційних захворювань птиці. Особлива увага надається захворюванням, збудники яких є спільним для птиці і людей, оскільки продукти птахівництва, контаміновані патогенними та умовно-патогенними мікроорганізмами є потенційним джерелом інфекцій, токсикоінфекцій та токсикозів у людей. Не дивлячись на значні успіхи у промисловому птахівництві, надалі значних економічних втрат зазнають інфекційні захворювання, зокрема бактеріальної етіології. В зв’язку з погіршенням екологічної ситуації, вирощуванням та експлуатацією переважно високопродуктивної птиці, яка для реалізації свого генетичного потенціалу вимагає повну компенсацію затрат організму на продукцію, в останній час спостерігається зниження природної резистентності організму птиці. На цьому фоні реєструють загибель птиці і, як наслідок, мають місце спалахи бактеріальних інфекцій, обумовлених патогенною та умовно-патогенною мікрофлорою. Швидкі темпи розвитку птахівництва в Україні сприяють насиченню ринку якісною продукцією, але з другого боку, призводять загострення проблем профілактики та лікування бактеріальних захворювань птиці. В сучасному птахівництві з метою профілактики і терапії бактеріальних інфекцій широко застосовують різні групи лікарських засобів, що зумовлює виникненню стійких штамів мікроорганізмівБактеріальні хвороби приносять великі економічні збитки птахопоголів’ю, вимагають постійного контролю з боку спеціалістів ветеринарної медицини.
2.1. Наукові розробки та стратегії контролю бактеріальних інфекцій птиці. Згідно зі статтею 5 Директиви 2003/99/ЄС Європейського Парламенту і Ради Європи від 17 листопада 2003 року встановлені узгоджені програми моніторингу, оцінки ризиків та встановлення вихідних значень щодо зоонозів та зоонозних збудників на рівні держав-членів ЄС. Наукові експерти оперативної групи EFSA ухвалили технічні умови для дослідження стану моніторингу збудників бактеріальних інфекцій серед поголів’я птиці та узгодженої програми з гармонізованого моніторингу у країнах-членах ЄС. Стратегій контролю бактеріальних інфекцій та запобігання передачі збудників повинні включати всі етапи обігу харчових продуктів: виробництва, переробку, зберігання та реалізацію м'яса бройлерів – «від ферми до виделки» [5, 8, 50].
Перший етап контролю бактеріальних інфекцій проводять при вирощування птиці – в умовах птахогосподарств. Стратегічними заходами є здійснення біозахисту, знезараження посліду, засосування добавок до кормів із сполуками, що інгібують збудників і очищення питної води. Крім того, нові стратегії контролю зоонозів включають здійснення вакцинації, застосування пробіотиків, пребіотиків, антибіотиків та антимікробної альтернативи (тобто бактеріофагів, бактеріоцинів), які в поєднанні запобігають появі резистентних до антибіотиків штамів мікроорганізмів [51].
2.2. Вплив систем утримання на поширення бактеріальних інфекцій серед свійської птиці. Необхідною умовою контролю поширення бактеріальних інфекцій серед птиці є застосування ефекитивної системи вирощування та утримання птиці. Застосуванням так званих органічних систем вирощування птиці повязують з більш високим рівнем поширеності збудників серед поголівя птиці в порівнянні із звичайними системами. Дані цих спостережень можуть бути пов'язані з декількома факторами, які в комплексі характеризують органічні системи утримання птиці. Найбільш критичний серед них – високий ризик екологічного забруднення. 9
Ця тенденція викликає особливе занепокоєння у звязку із вводенням у в дію Директива Ради 1999/74/ЕС, яка регламентує стандарти утримання курей-несучок, скасовує звичайні кліткові системи утриманняна на користь альтернативних систем. Дослідники також вивчали взаємозв’язок між рівнем колонізації збудниками зоонозів поголів’я птиці в пташнику та кількістю пташників та території господарства. Дослідження проведене в Норвегії показало, що ризик колонізації поголів’я в різних пташниках взаємопов’язаний і зростає з кількістю окремих пташників, розташованих на одній території. Важливу роль відіграє перший пташник, який у випадку забруднення стає головним резервуаром інфекції і створює умови перехресного забруднення хреста для всіх пташників господарства [47-52].
2.3. Стратегії поточного контролю бактеріальних інфекцій при вирощуванні птиці. 2.3.1. Заходи біобезпеки. План проведення комплексу заходів біобезпеки корегують залежно від умов, обставин, можливостей та ресурсів і т.п. Застосування засобів біологічної безпеки здійснюється з метою захисту здоров'я птиці і запобігання передачі збудника захворювання шляхом створення фізичні бар'єрів та засобів гігієни. Такі заходи, як правило, застосовується в початковому етапі розведення в батьківських стадах в піраміді фондового виробництва, що запобігає широкому поширенню патогенів. В якості фізичних бар'єрів біозахисту використовують захисні екрани із сітки, які розміщують на вікнах, дверях, а також у у вентиляційних шахтах, які перешкоджають потраплянню комах – векторів передачі збудників бактеріальних інфекцій ззовні пташника всередину з вентиляційним повітрям. Дослідженнями встановлено, що близько 20% поверхні і 70% внутрішніх органів кімнатних мух можуть бути забруднені збудниками. Дослідженнями проведеним в Данії 70,2% виловлених навколо пташика мух були переносчиками бактеріальних інфекцій Подальші дослідження також піддтведжували високий ризик передачі збудників через комах [2, 16, 49].
10 Гігієнічні засоби біозахисту передбачають використання спеціального захисного одягу та взуття для кожного приміщення і обовязкових гігієнічних обробок між "чистими" і "брудними" зонами об'єктів обслуговування. Один із основних принципів ефективного біозахисту на етапі виробництва бройлерів є застосування принципу «все зайнято / все пусто» [5, 18, 19, 47, 61].
Дослідження зразків повітря на бактеріальну забрудненість показало, що повітря стає забруднене тоді, коли в приміщенні пташника утримувалася птиці, колонізована патогенами. Слід зазначити, що застосування заходів біозахисту при здійсненні контролю Крім того, заходи біологічної безпеки є ключовим моментом всіх існуючих національних програм контролю бактеріальних інфекцій, які впроваджені і виконуються у Швеції, Данії, Норвегії та Ісландії (Rosenquist et al., 2009; Hofshagen 2005; Hansson et al., 2007; Stern et al., 2003). Розбіжність отриманих результатів застосування заходів біозахисту можуть бути повязані із різними рівнями застосуванням гігієнічних заходів або з труднощамими у підтримці гігієнічним норм впродовж усього періоду вирощування птиці. Крім того, впровадження комплексних заходів біозахисту є трудомістким і дорогим процесом, оскільки вимагає забезпечення відповідним устаткування, використання дезінфікуючих засобів та інших антибактеріальних препараптів. Тому фермери мають можливість добровільно примати рішення щодо застосування заходів підвищеної біобезпеки при виробництві продукції птахівництва [48, 51, 58, 60].
В якості підстилки, що застосовують в пташниках, надають перевагу абсорбуючим нестерильним матеріалам: деревяна стружка, арахісова та рисова шолуха або інші подібні матеріали. Підстилка також розглядається як ризик-фактор потрапляння патогенів в основне виробниче середовище. Проведення попередньої перевірки та знезараження матеріалів перед застосуванням в якості підстилки дозволяє суттєво знизити рівень патогенів або навіть знищити їх (Ivanov, 2001; Line, 2002; Garrido et al., 2004; Rothrock 11 et al., 2008). Науковці наголошують про більш серйозну проблему і значну небезпеку поширення патогенів при тривалому багаторазовому використанні підстилки при утриманні декількох партій птиці. Є повідомлення, завдяки обробки підстилки квасцями вдалося знизити рівень забруднення її Сampylobacter spp. на порядок 3 log [59].
2.3.2. Питна вода. В науковій літературі описані випадки інфікування птиці через забруднену воду, як потенційний резервуар збудників бактеріальних інфекцій. Останні наукові дослідження підтверджують, що вода є важливий фактор ризику для здоров'я птиці (Pearson et al., 1993; Morris and Levin 1995; Gregory et al., 1997; Brennhovd et al., 1992). (Ten Veldhuis et al., 2010; Van Lieverloo et al., 2007). Згідно результатів цих досліджень знезараження питної води в умовах птахофабрик є важливою умовою забезпечення епізоотологічного благополуччя (Kapperud et al., 1993) [53] .
2.3.3. Нові стратегії управління бактеріальними інфекціями птиці. Використання терапевтичних антибактеріальних препаратів для лікування птиці при бактеріальних інфекціях в більшій мірі розглядається як ризик-фактор, що сприяє появі антибіотикорезистентних штамів збудників. Нові стратегії управління базуються на застосуванні пробіотичних препаратів. Однією з головних умов лікування інфекцій за допомогою пробіотиків є конкурентоспроможність антигоністичної мікрофлори, що входить до складу даних препаратів. Пробіотики рекомендовані до застосувування з перших діб життя птиці з метою колонізації кишковика і створеня захисного барєру по відношенню до патогенів (Nurmi and Rantala, 1973; Pivnick and Nurmi 1982). Відповідно до 62-го додатку правил ЄС № 1831/2003 про реєстрацію кормових добавок для годівлі тварин наступних, були затверджені деякі грампозитивні бактерії і дріжджі, які рекомендовано використовувати в якості корисних мікроорганізмів з метою нормалізації кишкової мікрофлори у курей та індиків під відгодівлі (табл. 1.1) [49]. 12
З метою забезпечення максимального результату конкурентної
спроможності пробітичних культур необхідно забезпечити умови
попереджаючого заселення кишечника даною мікрофлорою по відношенню
до патогенів. Ефетивний результат досягається при аерозольному розпиленні
водних розчинів пробіотиків серед поголівя птиці в умовах пташника (Mead,
2000; Patterson and Burkholder, 2003). При дотриманні відповідних умов
застосування пробіотичних препаратів в період відгодівлі птиці дозволить
запопобігти колонізації і поширенню патогенів. Проте, існує необхідність
підтвердження отриманих даних. Вакцинація, як потенційна стратегія
контролю бактеріальних інфекцій, потребує ретельних досліджень з метою
отримання підтвердження того, що набутий імунітет після імунізації може
зменшити ризики інфікування птиці [16, 56, 60].
2.3.4. Кормові і водні домішки. Кормові домішки можуть бути
представленя як органічними кислотами так і пробіотиичними препаратами.
Так, задавання каприлової кислоти в концентрації 0,7% забезпечувало
зниження рівня колонізації кишко вика патогенами на 3-4 log. Є дані, що 13
додавання таких жирних кислот як каприлова чи капринова кислоти до
коромового раціону бройлерів за три доби до забою не забезпечило
скорочення колонізації патогенами експериментально інфікованої птиці в 15
денному віці. Хоча при дослідженні in vitro було відмічено бактерицидний
ефект даних кислот на C. jejuni (Hermans et al., 2010). Досліденнями
Skanseng i. al. (2006) встанолвлено ефективність додавання до кормового
раціону курчат комбінації 1,5% мурашиної кислоти і 0,1% сорбіту натрію
забезпечило скорочення колонізацію бактеріальних інфекцій кишковика
курчат, а комбінація 2,0% мурашиної кислоти з 0.1% сорбіту натрію –
запобігти колонізації патогенами. Було проведено дослідження по
випробовуванню різних комбінацій органічних кислот в процесі випоювання
птиці. Вживання птицею підкисленої води забезпечувало бактеріостатичну
дію по відношенню до Campylobacter, досягалося зниження рівня колонізації
кишковика на 0,54-2 log (Chaveerach et al., 2004; Solis De Los Santos, 2008).
При додаванні до питаної води молочної кислоти протягм 10 годин голодної
дієти перед забоєм дозволило знизити рівень колонізації кишковика
Campylobacter spp. з 85% до 62% (Byrd et al., 2001). Випоювання птиці води з
концентрацією водневих іонів рН 4,0 не створювало негативного впливу на
здоровя птиці. В дослідженнях in vitro найбільш ефективний
бактеріостатичний та бактерицидний ефект на мікроорганізми роду
Campylobacter мали мурашина, оцтова, пропіонова, і хлористоводнева
кислоти, а в досліджені in vivo зазначені органічні кислоти ефективні в
певних комбінаціях та концентрація при задаванні з кормом та водою
(Chaveerach et al., 2002) [49-54].
Випоюванні птиці хлорованою водою розглядається як ефективний
метод попередження зараження птиці чи зниження рівня кишкової
мікрофори до 2 log. Незважаючи на ефективність застосування органічних
кислот, ці заходи не увійшли до офіційних методів контролю бактеріальних
інфекцій зважаючи на непослідовність в термінах досліджень та даних щодо
поширеності патогенів [24, 51, 54, 59]. 14
2.4. Протимікробні препарати та їх альтернативи. Все більше уваги
зосереджують дослідникм на стратерії застосування антибіотиків в
птахівництві. Науковці вважають, що головною проблемою даного напрямку
досліджень є неконтрольований розвиток стійкості штамів мікроорганізмів
до антибіотиків. З метою управління даною проблемою розглядаються різні
стратегічні підходи: 1) зниження кількості призначень антибіотиків при
лікуванні птиці і їх застосування; 2) застосування комбінації антибіотиків, які
відносяться до різних класів хіміотерапевничних засобів; 3) пошук нових
альтернативних препаратів з метою запобігання винекненню
антибіотикорезистентності штамів мікроорганізмів; 4) розробка нових
стратегій дозування та кратності задавання нових антибіотиків, схема
застосування яких дозволять запобігти селекції антибіотикорезистентних
штамів мікроорганізмів; 5) використанням речовин, здатних підвищити
протимікробну дію антибіотиків [49].
2.4.1. Бактеріофаги. Застосування специфічних дозбудників
бактеріальнпих інфекцій бактеріофагів застосовується як перспективний і
ефективний засіб зменшення колонізації птиці та забруднення потенційно
небезпечними збудниками м'ясних продуктів. В процесі переробки птиці в
умовах забійного цеху бактеріофаги з вмісту кишечника під час нутрування
можуть потрапити на поверхню тушки. В мязовфій тканині бактеріофаги
можуть виживати понад 10 діб і потенційно можуть потрапляти разом з
мясними продуктами людям в організм людини. Фаги проявляють здатність
зниживувати кількість патогенів. Ці дані підтверджуються результатами
експериментальних досліджень, якими встановлено зниження кількості
патогенів на порядок 2-5 log
10 .
в 1 г вмісту сліпих кишок [55].
2.4.2. Бактеріоцини. Бактеріоцини – це пептиди, які порушують
цілісність мембран бактеріальних клітин і тим самим проявляють
антимікробну активністю проти широкого спектру патогенних бактерій.
Бактерії кишечнику – продуценти бактеріоцинів мають селективну перевагу
над патогенними бактеріями-антагоністами (Riley and Wertz, 2002). На 15
відміну від антибіотиків, дія пептидів характеризується низькою
спорідненістю відносно різних клітин-мішеней. Цей спосіб впливу на
патогени не сприяє набуттю резистентності патогенів. Антимікробні пептиди
наступних генерацій привертають особливу увагу, оскільки вони можуть
проявляти інгібуючі властивості по відношенню до специфічних штамів в
популяції бактерій (Franzman et al., 2009; Ekstrand C. et al., 2006; Qiu et al.,
2003; Qiu et al., 2005). Протягом останніх років за допомогою бактерій-
коменсалів були виділені бактеріоцини специфічні проти певних видів
збудників. Ці пептиди проявляють стійкість до високих температурах,
широкого діапазону рН і показати високу ефективність щодо зменшення
рівня колонізації в кишечнику птиці бактеріальними патогенами. Наприклад,
при задаванні з кормом за 4 доби до забою птиці ентероцину E-760,
ізольованого з Enterococcus durans, вдалося значно зменшити рівень
колонізації патогенами кишковика птиці (P < 0.05). Тим не менш нагальними
і перспективними є дослідження щодо вивчення механізму дії, потенційної
токсичності даних пептидів при тривалому застосуванні і можливої селекції
штамів мікроорганізмів стійких до бактеріоцинів [51, 53, 55, 59, 61].
2.5. Вплив сезонності на поширеність бактеріальних патогенів
серед поголів’я птиці. За даними звіту (EFSA, 2010b) встановлено сезонну
варіацію поширеності бактеріальних патогенів серед поголів’я птиці. Пік
ізоляції збудників відмічено в літні місяці. Ці дані надходили з декількох
країн північної Європи: Швеція (Hansson et al., 2007a), Данія (Wedderkopp et
al., 2000), Норвегія (Hofshagen, 2010) і Нідерланди (Bouwknegt et all., 2003).
Ці спостереження підтверджені в ЄС (EFSA 2010b). Подібні спостереження
також були повідомлені з регіонів Франції (Refregier-Petton et al., 2001).
Північні країни звітували про підвищення рівня колонізації поголів’я птиці в
період з жовтня по березень. Національні дослідження проведені в
Великобританії, США, і Канаді не вставили сезонний вплив на поширеність
збудників бактеріальних інфекцій серед поголів’я птиці [48, 53, 59]. 16
В цілому звіт ЄС (EFSA, 2010b) демонструє незначну кількість
випадків впливу сезонності на поширеність збудників бактеріальних
інфекцій серед птиці. Окремі випадки свідчать про мінімальну різницю у
співвідношенні поширеності і колонізації патогенами між літніми і зимовими
місяцями. Причини, що обумовлюють вплив сезонності на поширення
патогенів достовірно не відомі, але головними чинниками вважають
температуру, режими користування вентиліцією та різницю в об’ємах
водокористування. До чинників, що обумовлюють ризики поширення
патогенів серед поголів’я птиці відносять: шляхи вертикальної передачі
збудника, сезонність, обслуговуючий персонал ферми, забруднення
збудниками кормів та води, комахи, дикі тварини (у тому числі гризуни) та
синантропна птиця, худоба, забруднення збудника території птахоферми,
щільність посадки птиці в пташнику, забруднення збудником повітря в
приміщенні пташнику, наявність зараженого поголів’я пташника, лікування
птиці антибактеріальними препаратами, кількість пташників на території
господарства та стан здоров’я птиці. Ефективними заходами контролю
поширення збудників бактеріальних інфекцій у кишечнику вважають
випоювання води та згодовування кормів з домішками, що проявляють
бактеріостатичну та бактерицидну, тим самим зменшуючи чи забезпечуючи
зведення до мінімуму рівень поширення збудників серед поголів’я птиці на
етапі вирощування (табл. 1.2). Перспективним напрямком контролю
бактеріальних інфекцій у вмісті кишечника в ЄС також є проведення
селективного розведення птиці з метою виведення нових порід, що
проявляють стійкість до зараження збудниками бактеріальних інфекцій у
вмісті кишечника. Наукові дослідження рекомендовано проводити у
промислових масштабах, вивчаючи реальну ефективность запропонованих
заходів та результати щодо зниження ризику для здоровя птиці. В
Співтоваристві проводиться робота щодо вдосконалення ветеринарного
законодавства на підставі даних постійного моніторингу збудників
бактеріальних інфекцій серед поголів’я птиці, контролю рівня контамінації 17
м’ясі бройлерів та збору технічної інформації про використання
антимікробних препаратів у програмах з контролю зоонозів свійської птиці
[5, 8, 48].
Висновок. На першому етапі роботи нами було
проведено детальний аналіз положень Регламентів ЄС та Директиви Ради ЄС
щодо заходів контролю бактеріальних інфекцій птиці в країнах-членах ЄС.
Директива 2003/99/ЄС Європейського Парламенту і Ради від 17 листопада
2003 року регламентує здійснення моніторингу зоонозів та зоонозних
збудників, встановлює узгоджені програми моніторингу, оцінки ризиків та
встановлення вихідних значень щодо зоонозів та зоонозних збудників на
рівні держав-членів ЄС.
Отже, стратегічними напрямками в системі контролю бактеріальних
інфекцій птиці в ЄС є: розробка національних програми управління ризиками
поширення; стандартизація методів відбору проб, часу між відбором проб та
тестуванням; контроль якості лабораторних методів дослідження, а також
продовження дослідження чутливості методів виявлення патогенів та
проведення моніторингових досліджень антибіотикорезистентності
циркулюючих штамів збудників.
Стратегічними заходами контролю бактеріальних інфекцій птиці є
здійснення біозахисту, знезараження посліду, засосування добавок до кормів
із сполуками, що інгібують збудників і очищення питної води. Крім того,
нові стратегії контролю даного зоонозів включають здійснення вакцинації,
застосування пробіотиків, пребіотиків, антибіотиків та антимікробної
альтернативи (тобто бактеріофагів, бактеріоцинів), які в поєднанні
запобігають появі резистентних до антибіотиків штамів мікроорганізмів.
Пріоритетними є застосування засобів та методів, які дозволяють
отримати екологічно чисту, безпечну та якісну продукцію птахівництва. В
Співтоваристві проводиться робота щодо вдосконалення ветеринарного
законодавства та збору інформації про використання антимікробних
препаратів у програмах з контролю зоонозів свійської птиці [3, 18, 19, 35, 36].
9.