Критерии удовлетворительного состояния помещений цсо

Зона	Помещения	Время контроля	Допустимое количество микробных тел
			На 1 м3 воздуха	На 100 см3 поверхности
Нестерильная	Приемная, моечная, подготовительное отделение, стерилизационная (загрузочная сторона стерилизаторов)	До начала работы	750	250
		Во время работы	1500	500
Стерильная	Стерилизационная (разгрузочная сторона стерили-заторов), помещение для хранения стериль-ного материала	До начала работы	500	100
		Во время работы	750	150

• Контроль качества дезинфекции

Качество дезинфекционных мероприятий устанавливается контролем, который проводится визуальным, хими­ческим и бактериологическим методами. В практических условиях указанные методы используют одновременно.

Визуальный контроль. Выясняют санитарное состояние объекта, своевременность проведения дезинфекционных мероприятий, обоснованность выбора объектов и методов обеззараживания, полноту обеззараживания поверхностей помещений, отдельных вещей, предметов и объектов, количество вещей, взятых для камерной дезинфекции.

Химический контроль. Этот вид контроля исполь­зуют для определения содержания действующих веществ, соответствия концентрации рабочих растворов концентрациям, предусмотренным инструкциями. При отборе проб отмечают дату их взятия, когда и кем приготовлен дезинфицирующий раствор, какая концентрация указана на этикетке. При контроле заключительной дезинфекции пробы для химического анализа лучше всего отбирать в то время, дезинфекторы находятся в очаге. Особенно важно проб из более концентрированных растворов дезинфицирующих препаратов, применяемых в очагах туберкулеза, грибковых болезней, вирусного гепатита. Само определение количества действующего вещества в раство­рах или сухих препаратах проводится в лабораторных условиях. Обнаружение во взятых пробах меньшего, чем дуется, количества действующего вещества служит доказательством плохого выполнения дезинфекции.

При контроле за проведением профилактической дезинфекции, а в некоторых случаях (при отсутствии бактериологической лаборатории) и при проведении очаговойI дезинфекции может быть применен и о д - к р а х м а л ь н ы й метод контроля за применением хлор - содержащих препаратов. Метод основан на цветной реакции с крахмалом. При взаимодействии с раствором йодида калия хлор вытесняет из раствора йод и занимает его место. Выделившийся йод окрашивает крахмал в сине-бурый цвет.

Бактериологический контроль. Этот контроль дезин­фекции в очагах кишечных инфекций проводят путем обнаружения санитарно-показательной кишечной палочки методами смыва или соскобов. Бактериологический контроль качества заключительной. Дезинфекции проводят внезапно для персонала, занимающегося обработкой, или его осуществляют врач или дезинструктор (помощник эпи­демиолога), организующий обработку очага. При текущей и профилактической дезинфекции качество контролируют в любое время. После окончания заключительной дезинфек­ции пробы берут не.позже чем через 30—45 мин.

При контроле заключительной дезинфекции пробы берут со столовой и чайной посуды, ложек, ножей, белья, обеденного стола, игрушек, ручек дверей жилых комнат и уборных, ручек сливного бачка уборной, водопровод­ных кранов, выключателей, матрацев, подушек. При конт­роле качества текущей дезинфекции, кроме перечисленных выше предметов, смывы берут с ветоши для мытья посуды и столов, рук и халатов медицинского персонала, ванн, мочалок, щеток, ветоши для уборки. При контроле в пищеблоках больниц и детских учреждений смывы берут со столовой посуды, тазов для готовой продукции, ножей для вареного мяса, вареных овощей и хлеба, ветоши для мытья посуды и столов, разделочных столов и досок для вареной рыбы и мяса, вареных овощей, раздаточ­ных столов и окон, мясорубок для вареного мяса, водо­проводных кранов, дуршлагов, рук и халатов работников пищеблока.

Для взятия смывов готовят ватные талоны на палоч­ках, вмонтированных в ватную пробку, и стерилизуют в бумажных пакетах. При отборе проб тампон вынимают из пакета и смачивают в 1 % растворе тиосульфата натрия или в среде обогащения. Смывы с помощью тампонов производят не менее чем с 10 предметов в квартирах и не менее чем с 30 предметов в детских дошкольных и лечебно-профилактических учреждениях. Каждый смыв производят с площади не менее 200—300 см² на 2—3-х смежных участках обследуемого объекта. При заборе проб с игрушек, посуды смывы осуществляют с поверхности всего объекта.

Смывы с каждого объекта производят одним тампоном. После взятия смыва с поверхности ватную пробку из пробирки с питательной средой удаляют и заменяют проб­кой с тампоном, погружая последний до дна, при этом края пробирки обжигают над пламенем горелки. На про­бирке отмечают порядковый номер и под тем же номером заносят в список предмет, с которого взята проба. В этом списке также отмечают: а) адрес; б) фамилию, имя, отчество и возраст больного; в) диагноз; г) дату заболе­вания; д) дату госпитализации; е) дату и время дезин­фекции; ж) дату и время забора проб; з) способ дезин­фекции посуды, белья (обработка дезинфицирующим раствором или кипячением); и) номер наряда; к) фами­лии дезинфекторов.

Отбор проб с белья, обеззараживаемого путем зама­чивания в дезинфицирующих растворах, проводят следующим образом. При наличии на белье фекальных загряз­нений из бака или другого сосуда, в котором оно обез­зараживалось, по истечении срока выдержки извлекают три штуки белья с различных уровней сосуда: верх, середина, низ (дно). С помощью платиновой петли (пред­варительно обожженной над пламенем горелки) забирают небольшой комочек фекалий и засевают на чашку Петри со средой Эндо. Такой же отбор кусочков фекалий произ­водят с каждой из трех штук белья в отдельности с соответствующей отметкой на чашках Петри, откуда взято белье.

С белья без видимых загрязнений производят соскобы скальпелем с мест, чаще всего подвергающихся загряз­нению: с простыни — на середине, с кальсон — на внутрен­ней поверхности вдоль шва, с рубашки — на нижней части ее и т. д. При этом скальпель держат под углом к поверх­ности белья и перемещают его только в одном направле­нии, не допуская перевертывания лезвия. Соскоб делают с поверхности 100 см².

После взятия пробы погружают в пробирку с мясо-пептонным бульоном. При контроле качества обработки белья хлорсодержащими растворами в питательный буль­он добавляют 1 мл 1% раствора стерильного тиосульфата натрия. Засеянные в очаге пробирки и чашки Петри в тот же день доставляют в лабораторию и помещают в термо­стат при температуре 37°С на 24 ч. По истечении указан­ного срока: а) посев из чашек Петри исследуют на кишечную палочку по общепринятой методике; б) из про­бирок производят высев на чашки со средой Эндо и поме­щают в термостат при температуре 37°С на 24 ч, после чего ведут исследования на кишечную палочку по обще­принятой методике.

Одноэтапная методика исследования смывов с исполь­зованием среды Хейфеца основана на возможности учета роста кишечной палочки в посевах по изменению цвета среды (без выделения чистой культуры и ее идентифи­кации). Среда Хейфеца дает возможность получить окон­чательные результаты через 18—24 ч после посева смывов.

Удовлетворительную оценку качества дают при отсут­ствии роста кишечной палочки во всех исследованных пробах, неудовлетворительную оценку — при обнаружении кишечной палочки хотя бы в одной из проб.

При инфекциях дыхательных путей, включая туберкулез, при контроле ведут поиск стафило­кокка. Контрольные смывы делают так же как и при кишечных инфекциях. Тампон отмывают в 20 мл стериль­ной водопроводной воды в широкогорлой пробирке с бу­сами, в течение 10 мин. Для выделения стафилоккока пере­носят 0,1 мл отмытой жидкости на дно стерильной чашки Петри и заливают 8—10 мл остуженного 2% мясопептонного или казеинового агара. Осторожным покачиванием распределяют пробу в агаре. Посевы инкубируют при 37°С, 24 ч, выдерживают в течение суток при комнат­ной температуре и учитывают рост колонии стафилококка на ангаре. Оценка результатов такая же, как и при ки­шечных инфекциях.

• Контроль стерильности

Контроль стерильности. Контроль стерильности простерилизованных предметов проводят в специально оборудованных помещениях, ис­ключающих возможность вторичного обсеменения с соб­людением правил асептики. Посев исследуемого материа­ла проводят в боксированных помещениях. Боксы обору­дуют приточно-вытяжной вентиляцией (с преобладанием притока над вытяжкой), в них подается стерильный воз­дух. В боксе и предбокснике устанавливают настенные и потолочные лампы ультрафиолетового излучения, ко­торые размещают на высоте 2—2,5 м от пола.

Объектами бактериологического контроля в лечебно-профилактических учреждениях являются: хирургические инструменты, шприцы, иглы, стоматологические инстру­менты, системы переливания крови многократного исполь­зования, зонды, катетеры, бужи, резиновые перчатки и другие изделия из резины и пластиков, хирургический шовный материал (кетгут, шелк), различная аппаратура, перевязочные материалы, операционное белье. Все пред­меты, подлежащие контролю, направляют в лабораторию в упаковке, в которой осуществляли стерилизацию (па­кеты, биксы, мягкая тара). Перед доставкой в лаборато­рию простерилизованные изделия в упаковке дополни­тельно завертывают в стерильную простыню или наволочки.

После культивирования при отсутствии роста микроорганизмов во всех средах выдают заключение о стерильное контролируемого изделия. При прорастании питательной среды хотя бы в одной пробирке проводят повторный контроль стерильности удвоенного количества образцов данной| партии.

Если при повторном посеве новых образцов прорастав не наблюдается, то исследуемая партия считается стерильной.

Работа на паровых и воздушных стерилизаторах, а также применение газового метода и химических раствор должны строго документироваться в специальных журналах, где отмечается дата обработки, перечисляются названия и количество предметов, подвергшихся стерилизации, название применяемых средств, дозировки, температур давление, время выдержки и другие параметры обработки, а также приводятся результаты контроля бактериологическим, термическим и химическим методами.

• Контроль работы дезинфекционных камер

Все вновь выстроенные и смонтированные дезинфек­ционные камеры перед пуском их в работу, а также каме­ры, находящиеся в эксплуатации, должны систематически подвергаться проверке технического состояния и контролю за правильностью и эффективностью их работы. Для проверки технического состояния камеры необхо­димо осмотреть и проверить термометры, психрометры, манометры, вентили, форсунку, предохранительные клапа­ны и др.

При проведении термического контроля используют максимальные термометры. Их следует размещать в спе­циальных мешочках в трех горизонтальных плоскостях — на уровне воротников одежды (верхняя зона), карманов (средняя зона) и в нижней зоне, соответствующей поло­жению полы верхней одежды. В каждой из этих плоскостей желательно размещать не менее 5 термометров (всего 15 штук) по углам и в центре.

При одновременном проведении термического и био­логического контролей тест-объекты, тест-инсекты разме­щают вместе с термометрами. Тесты для биологического контроля получают в бактериологической лаборатории в специальных мешочках. Эти мешочки с тестами закладыва­ют в другие мешочки больших размеров, в которые кладут также термометры.

После того как тесты и термометры уложены в большие мешочки, последние затягивают шнуром и располагают в контролируемых местах. Для этого их прикалывают к комплекту одежды булавками или привязывают концом шнурка к плечикам, крючкам одежды и т. д. По истечении дезинфекции вещи выгружают, термометры и тесты выни­мают. Показания термометров записывают в протокол конт­роля камеры, а тесты направляют для исследования в лабораторию.

Эталоном (тест-объектом) для проверки эффективности дезинфекции вещей, зараженных вегетативными формами микробов, служит культура золотистого стафилококка, которая по термоустойчивости превышает устойчивость кишечной палочки, гемолитического стрептококка и других вегетативных форм микробов.

Для контроля камер, обеззараживающих вещи из оча­гов туберкулезной инфекции, используют тесты, обсеме­ненные 2 млрд. взвесью четырехсуточной культуры кисло­тоупорного сапрофита — микобактерии В-5. Тест-объек­том для проверки эффективности обеззараживания вещей, зараженных споровыми формами, служит культура антракоида.

Проверку инсектицидного эффекта осуществляют с помощью тест-инсектов. В качестве инсектов берут вшей и их гниды. По получении ответов лабораторного иссле­дования тестов проводят анализ результатов термического и биологического контроля и дают заключение о состоя­нии и работе камеры. В случае неудовлетворительного термического или биологического контроля дают заклю­чение о причинах недочетов и предложения по их устране­нию.

• Таблицы (приложения 1, 2,)

4. Вид занятия: практическое

5. Продолжительность занятия: 10 часов

6. Оснащение: Таблицы, кодограммы, нормативные документы.

7. Содержание занятия.

7.1.Контроль исходного уровня знаний.

Тестовые вопросы (выбрать один правильный ответ)

Тест 1. В высушенном состоянии в темноте микобактерии туберкулеза выживают:

1. 20-40 минут; 2) 2-4 часа; 3) 1-2 месяца; 4) до 1 года; 5) до 5 лет.

Тест 2. На предметах быта (столы, стекло, металл и др.) при комнатной температуре вирус гепатита В сохраняется: 1) 20 минут; 2) до 5 часов; 3) около 2 дней;

4) до 1 месяца; 5) несколько месяцев.

Тест 3. На предметах быта при комнатной температуре вирус гепатита А сохраняется: 1) 20-40 минут; 2) 2-4 часа; 3) до суток; 4) 1-2 недели; 5) несколько недель.

Тест 4. Холерный вибрион сохраняется на поверхности овощей и плодов при отсутствии инсоляции: 1) 1-2 минуты; 2) до 30 минут; 3) до 10 часов; 4) 24 часа; 5) 2-8 дней.

Тест 5. В некипяченой воде холерный вибрион сохраняется: 1) 1-2 минуты; 2) до 30 минут; 3) до 36 часов; 4) 5-7 дней; 5) до 18 дней.

Тест 6. Механизм действия хлора и хлорсодержащих препаратов основан на:

1. снижении поверхностного натяжения дезинфекционных растворов;

2. разрушительном действии на клетку с помощью своих водородных и гидроксильных ионов (реакций гидролиза);

3. взаимодействии с протеинами клетки (реакции окисления);

4. реакции коагуляции белков;

5. разрыхлении белковой оболочки.

Тест 7. Механизм действия поверхностно-активных веществ (ПАВ) основан на:

1. взаимодействии с протеинами клетки;

2. реакции коагуляции белков;

3. обезвоживании протоплазмы, растворении и расщеплении белков;

4. снижении повехностного натяжения дезинфекционных растворов;

5. разрушительном действии на клетку с помощью водородных и гидроксильных ионов.

2. Разбор с преподавателем узловых вопросов темы.

3. Самостоятельная работа студентов под контролем преподавателя.

Выполняя следующие упражнения, укажите какие утверждения верны, а какие ошибочны. Объясните ошибку каждого неверного, по Вашему мнению, утверждения.

1. Для дезинфекции используют: а) хлорамин; б) ДТ СГК; в) микроцид-ликвид;

г) карбофос; д) формалин; е) неопин; ж) пиретрум; з) хлордезин; и) лизол; к) пе- роксид водорода; л) сульфидофос (байтекс).

2. Профилактическая дезинфекция проводится:

а) в казарме;

б) в квартире после госпитализации больного с инфарктом миокарда;

г) в помещениях железнодорожного вокзала;

д) в квартире при оставлении инфекционного больного дома;

е) в салоне самолета;

ж) в боксе после выписки инфекционного больного;

з) в парикмахерской;

и) в отделении инфекционной больницы;

к) на молокозаводе (пастеризация молока );

л) в квартире хронического бактерионосителя.

3. В пароформалиновой камере обрабатывают:

а) постельные принадлежности из отделения инфекционной больницы;

б) постельное белье из хирургического отделения;

в) халаты медицинского персонала инфекционной больницы;

г) меховые изделия(шубы, шапки, дубленки и др.) из эпидемического очага;

д) кожаную обувь больных микозами стоп;

е) одежду из синтетических тканей инфекционного больного.

4. Паровым методом стерилизуют:

а) резиновые перчатки; б) эндоскопы, фиброэндоскопы; в) шприцы с пометкой 200*С; г) инъекционные иглы; д) катетеры; е) перевязочный материал; ж) шовный материал; з) кардиостимуляторы; и) хирургические инструменты из коррозиестойких материалов.

Решите ситуационные задачи.

Задача 1.

В центральную районную больницу 5 августа госпитализирован больной по пово-ду заболевания брюшным тифом. Больной живет в деревне, в доме сельского типа,

Уборная не канализованная.

Укажите кто проводит дезинфекцию, сроки, что подлежит дезинфекции, какое средство и в какой концентрации может быть применено.

Задача 2.

Больной дизентерией от госпитализации отказался, оставлен на лечение дома.

Квартира изолирована, со всеми удобствами.

Какие препараты следует использовать для текущей дезинфекции в квартире больного? Кто ее проводит? Методика обеззараживания отдельных объектов.

Задача 3.

Больной 40 лет с открытой формой легочного туберкулеза, проживает в двухкомнатной квартире с женой и ребенком 6 лет, квартира со всеми удобствами.

Расскажите методику проведения текущей дезинфекции в очаге туберкулеза.

Задача 4.

Больной, 26 лет, с открытой формой туберкулеза выехал в санаторий. Возможность провести дезинфекцию представилась только через 3 недели, когда вернулась из командировки жена больного. Квартира изолирована.

Нужно ли проводить дезинфекцию? Что подлежит дезинфекции? Какие дезинфекционные средства применить?

Задача 5.

В коммунальной квартире, где проживают две семьи, состоящие из 4 человек каждая 2 взрослых и 2 детей. Возраст детей 2 года, 3 года, 7 лет и 11 лет. Выявлен больной сыпным тифом.

Перечислите меры и способы дезинсекции в очаге, назовите препараты, использование аппаратуры. Какова роль дезинсекционных мероприятий в борьбе с сыпным тифом?

Задача 6.

1-2 августа в спортивном палаточном лагере зарегистрировано 2 случая заболевания ГЛПС. В результате эпидемиологического обследования установлено, что заражение могло произойти в лагерных палатках вследствие миграции полевок из окружающей территории. 5 августа проведена дератизация. Однако с 20 по 28 августа было выявлено еще 3 случая заболеваний ГЛПС спортсменов, размещенных в различных палатках. Не ислючается реализация трансмиссивного механизма передачи инфекции, оставшимися после дератизации эктопаразитами полевок (гамазиды) и аэрозольного механизма инфицирования пылью.

Какие дополнительные противоэпидемические мероприятия следует провести в целях разрыва механизма передачи инфекции и какими средствами?

Задача 7.

При осуществлении химического контроля за стерилизацией хирургических инструментов и перевязочного материала обнаружено, что химические тесты (мочевина с красителем), расположенные в контрольных точках на верхней полке

парового стерилизатора не изменили свое агрегатное состояние, а термохимичес-кие индикаторы фирмы «Винар», помещенные в те же контрольные точки, после сеанса стерилизации изменили свой цвет в сравнении с контролем.

Дайте заключение о качестве проведенной стерилизации, укажите возможные причины нарушения стерилизации. Какие дополнительные методы контроля за стерилизацией имеются? Назовите режим паровой стерилизации, необходимый для данных медицинских изделий?

Контроль освоения темы занятия.

Тесты первого уровня (один правильный ответ)

1. Определение дезинфекции:

а) система мероприятий, направленных на уничтожение потенциально опасных возбудителей на объектах окружающей среды;

б) система мероприятий, направленных на уничтожение любых микроорганизмов на различных предметах окружающей среды;

в) система мероприятий, направленных на уничтожение возбудителей инфекционных болезней в различных источниках инфекции;

г) система мероприятий, направленных на уничтожение патогенных микроорганиз-мов на различных предметах, в организме животных и членистоногих.

2. В каком случае проводится профилактическая дезинфекция?

а) в очаге дизентерии при лечении больного дома;

б) в очаге брюшного тифа до госпитализации больного;

в) в очаге дифтерии после госпитализации больного;

г) в боксе инфекционной больницы после выписки больного полиомиелитом;

д) в ДДУ, магазинах, столовых по окончании рабочей смены.

3. Концентрация рабочего раствора хлорамина для обработки помещений в очагах шигиллезов: а) 0,05%; б) 0,5%; в) 1%; г) 3%; д) 5%.

4. Как активировать раствор хлорамина?

а) подогреть; б) подкислить; в) подщелочить; г) добавить аммонийные соединения;

д) смешать несколько растворов хлорсодержащих средств.

5. Укажите допустимый срок хранения 1% осветленного раствора хлорной извести:

а )1 день; б) 3 дня; в) 7 дней; г) 14 дней; д) использовать сразу после приготовления.

6. Укажите наиболее приемлимый способ обработки полированной мебели в очаге туберкулеза:

а) распыление 5% хлорамина (хлорной извести) или мытье им;

б) механическая обработка ветошью, смоченной 3% фенолом;

в) проветривание и инсоляция мебели;

г) механическая обработка ветошью, смоченной полиролем;

д) сжигание.

7. Как приготовить 1% осветленный раствор хлорной извести

а) растворить сухое вещество в воде комнатной температуры;

б) растворить вещество в горячей воде;

в) развести маточный раствор водой до 1% концентрации;

г) растворить сухое вещество в 1% растворе хлористого аммония

8. Что в первую очередь определяет обязательность проведения дезинфекции в очаге инфекционного заболевания?

а) наличие источника возбудителя инфекции;

б) болезнь вирусной этиологии;

в) болезнь бактериальной этиологии;

г) устойчивость возбудителя инфекции во внешней среде;

д) присутствие в очаге контактных лиц, относящихся к «декретированным» контингентам

9. Какой дезинфектант следует рекомендовать для обработки плохо проветриваемого помещения?

а) ДТСГК; б) хлорамин; в) перекись водорода; г) лизол

10. Кто проводит текущую дезинфекцию в квартире больного дизентерией, оставленного дома?

а) лечащий врач; б) участковая медицинская сестра; в) работники территориального ЦГСЭН; г) работники дезинфекционной службы; д) члены семьи больного.

Тесты второго уровня (несколько правильных ответов)

11. В каких случаях проводится заключительная дезинфкция?

а) в очаге дизентерии при лечении больного дома;

б) в очаге брюшного тифа до госпитализации больного;

в) в очаге дифтерии после госпитализации больного;

г) в боксе инфекционной больницы после выписки больного полиомиелитом;

д) в ДДУ, магазинах, столовых по окончании рабочей смены.

12. Виды дезинфекции:

а) физическая; б) заключительная; в) текущая; г) химическая; д) профилактическая; е) биологическая.

13. Кто проводит 1-профилактическую, 2-текущую и 3-заключительную дезинфекцию?

а) медицинский персонал отделения инфекционной больницы;

б) медицинский персонал поликлиники;

в) работники территориального ЦГСЭН;

д) члены семьи больного.

14. Как повысить дез. активность перекиси водорода?

а) подогреть до 56*С; б) подогреть до 96*С; в) добавить аммонийные соединения;

г) добавить моющие средства; д) добавить сильную кислоту.

15. Сухую хлорную известь используют для обработки:

а) рвотных масс; б) жидких испражнений; в) оформленных выделений; г) санитарно-технического оборудования; д) поверхностей в жилых помещениях.

16. Физический метод дезинфекции предусматривает использование:

а) кипячения; б) горячего воздуха; в) паровоздушной смеси; г) насыщенного пара; д) ультрафиолетовых лучей; е) бактерицидных препаратов; ж) ионизирующего излучения;

з) культур микробов-антагонистов.

17. Стерилизация осуществляется:

а) паровым методом; б) воздушным методом; в) радиационным методом; г) механичес-

ким методом; д) газовым методом; е) с использованием растворов химических препаратов.

18. Медицинские резиновые перчатки стерилизуют:

а) перекисью водорода; б) хлорамином; в) смесью оксида этилена с бромидом метила; г) водяным паром при t 120*С в автоклаве; д) горячим воздухом при t 180*С в сухожаровом шкафу.

19. Мерами профилактики гепатита В в ЛПУ являются:

а) обеззараживание рук медицинского персонала и пациентов; б) соблюдение правил дезинфекции и стерилизации; в) создание ЦСО; г) правильных ответов нет.

20. Стерилизации подлежат изделия медицинского назначения, которые при манипуляциях у пациента будут иметь контакт:

а) с кожей; б) с поврежденной слизистой в со слюной; г) с раневой поверхностью; д) с инъекционными препаратами.

21. Требования, предъявляемые к химическим дезинфектантам: а) нетоксичность; б) широкий спектр антимикробного действия; в) узкий спектр антимикробного действия; г) хорошая растворимость в воде; д) сохранение активности препарата в присутствии белка и других органических веществ; е) сохранение активности препарата при комнатной температуре; ж) бактериостатическое действие.

22. Что влияет на эффективность дез. средств?

а) температура раствора дезинфектанта и объекта окружающей среды; б) концентрация дезинфектанта; в) экспозиция; г) атмосферное давление; д) присутствие активаторов.

Расположите в правильном порядке

23. Укажите правильную последовательность действий при ручном режиме предстерилизационной очистки:

1. сушка горячим воздухом при 85*С;

2. замачивание в проточной воде;

3. ополаскивание в дистиллированной воде;

4. ополаскивание в проточной воде;

5. замачивание в моющем растворе;

6. каждое изделие моется ватно-марлевым тампоном.

Установите соответствие

24. Соответствие способов дезинфекции методам дезинфекции:

1. Физический 2.Химический 3. Биологический

а) кипячение; б) УФ-облучение; в) воздействие ультразвука; г) воздействие дез. средства-ми; д) воздействие микробов-антагонистов; е) воздействие пара.

25. Можно ли использовать для дезинфекции (да/нет):

а) 1% раствор хлорамина, приготовлен 2 дня назад;

б) 1% активированный раствор хлорной извести, приготовлен вчера;

в) 0,5% раствор хлорной извести, приготовлен в день обработки;

г) 10% раствор хлорной извести, приготовлен 4 дня назад.

26. При контроле качества ПСО используются (реактив – определяемое вещество):

1) остатки крови а) азопирам

2) остатки моющих средств б) фенолфталеин

3) остатки жира в) амидопирин

г) судан-111

Место проведения самоподготовки: читальный зал

Учебно-исследовательская работа студентов по данной теме. Напишите рефераты на следующие темы:

• Организация и проведение дезинфекции в детских (дошкольных и школьных) учреждениях.

• Организация и проведение дезинфекции на транспорте.

• Правило личной и общественной безопасности и охраны труда при проведении дезинфекции. Признаки отравления дезсредствами и оказание первой медицинской помощи.

Литература для преподавателей

Основная литература:

1. Зуева Л.П.. Эпидемиология: учебник / Л. П. Зуева, Р. Х. Яфаев. - СПб. : Фолиант, 2005. - 752 с.

2. Мельниченко П.И. Военная гигиена и военная эпидемиология: учебник для студ. мед. вузов / П. И. Мельниченко, П. И. Огарков, Ю. В. Лизунов. - М. : Медицина, 2005. - 400 с.

Мельниченко, П.И. Военная гигиена и военная эпидемиология [Электронный ресурс]: учебник / П.И. Мельниченко, П.И. Огарков, Ю.В. Лизунов. - М.: Медицина, 2006. - 400 с. – Режим доступа: http://www.studmedlib.ru/book/ISBN5225048498.html.

3. Руководство к практическим занятиям по эпидемиологии инфекционных болезней: учеб. пособие / под ред. В. И. Покровского, Н. И. Брико. - М. : ГЭОТАР-МЕДИА, 2005. - 800 с.

Руководство к практическим занятиям по эпидемиологии инфекционных болезней [Электронный ресурс] : учеб. пособие / под ред. В. И. Покровского, Н. И. Брико. - М.: ГЭОТАР-Медиа, 2005. - 800 с. - Режим доступа: http://www.studmedlib.ru/book/ISBN5970400386.html

4. Шкарин В.В. Дезинфектология : рук-во для студ. медвузов и врачей / В. В. Шкарин, М. Ш. Шафеев. - Н. Новгород : Изд-во НГМА, 2003. - 368 с.

5. Власов В.В. Эпидемиология: учеб. пособие для вузов / В. В. Власов. - 2-е изд., испр. - М. : ГЭОТАР-МЕД, 2005. - 462 с.

Власов, В. В. Эпидемиология [Электронный ресурс]: учеб. пособие для вузов / В. В. Власов. - М.: ГЭОТАР-МЕД, 2004. - 464 с. - Режим доступа: http://www.studmedlib.ru/book/ISBN5970402656.html

Дополнительная литература :