|
Фиксация
мазков.
Обработка
мазков фиксирующими жидкостями,
придающими форменным элементам
стойкость по отношению к содержащейся
в красках воде, которая без фиксации
мазков гемолизирует эритроциты и
изменяет строение лейкоцитов. Кроме
того, фиксация, вызывая коагуляцию
белка, прикрепляет препарат к стеклу.
Реактивы.
Химически
чистый метиловый
спирт (метанол)
или 96°
этиловый спирт,
или денатурированный
спирт,
или смесь
Никифорова,
состоящая из равных количеств
этилового спирта и серного эфира.
Лучшим
фиксатором является метиловый
спирт.
В
метиловом спирте мазки выдерживают
не менее 5 мин, а в этиловом и
денатурированном спирте и смеси
Никифорова — не менее 30 мин.
По
окончании срока фиксации препараты
вынимают пинцетом, сушат на воздухе
или ополаскивают в банке с
нейтрализованной дистиллированной
водой и укладывают мазками кверху
на стеклянный мостик для окраски.
Фиксация
мазков по Яхонтовой.
Повышение
качества фиксации этиловым спиртом
за счет предварительной обработки
его цитратом и оксалатом натрия.
Готовят
2 реактива.
1.
В цилиндр емкостью 100 мл вносят 1,5 г
цитрата натрия, приливают 1,5 мл
дистиллированной воды, размешивают
стеклянной палочкой и для ускорения
растворения помещают цилиндр в
горячую водяную баню. В полученный
слегка мутноватый раствор приливают
этиловый спирт до объема 100 мл и
тщательно, в течение 5—8 мин,
размешивают. При размешивании на
дне цилиндра образуется клейкое
белое вещество, тянущееся за палочкой.
Раствор
оставляют в покое на сутки для
отстаивания.
2.
Реактив готовят так же, как и
предыдущий, но вместо цитрата натрия
берут оксалат натрия.
Прозрачные
реактивы 1 и 2 через сутки после их
приготовления сливают в равных
количествах и в этой смеси фиксируют
сухие мазки крови в течение 20—30 с,
после чего их подсушивают на воздухе
(можно и не сушить!) и окрашивают.
Фиксация
мазков парами фенола (по Сюткину).
Получение
хорошего качества фиксации мазков
при отсутствии спирта.
Методика.
На
дно эксикатора наливают жидкий фенол
(90 весовых частей кристаллического
фенола и 10 весовых частей дистиллированной
воды) из расчета 100 мл на 1,4 л объема
эксикатора.
Для
сохранения формы эритроцитов,
лейкоцитов и дифференцированной
окраски зернистости лейкоцитов
воздействие на мазки крови паров
фенола должно продолжаться в
зависимости от комнатной температуры
строго определенное время: при
температуре 16—18° — 20 мин, при
19—21°—10 мин, при 22—24° — 5 мин, при
25—27° — 3 мин.
По
истечении этого времени мазки
вынимают, раскладывают на столе
намазанной поверхностью кверху.
Время выветривания мазков должно
быть не менее времени фиксации.
|
ОКРАСКА
МАЗКОВ.
Краску
следует готовить на воде нейтральной
реакции.
Принцип.
К
щелочным
гематологическим
краскам относятся метиленовый синий
и его производные— азур I (метиленазур)
и азур II (смесь равных частей азура
I и метиленового синего),
к
кислым
— водорастворимый желтый эозин.
Азур-эозиновые
смеси красок обладают высокой
чувствительностью к реакции воды и
поэтому применяемая для приготовления
красителей и для смывания их
дистиллированная вода должна иметь
нейтральную реакцию, т. е. рН 7,0.
При
кислой
реакции воды клетки долго не
прокрашиваются и имеют красный
оттенок. При щелочной реакции
эритроциты окрашиваются в серовато-синий
цвет, а ядра и цитоплазма клеток —
в очень темные цвета.
Определение
рН воды.
Концентрацию
водородных ионов (рН) воды определяют
с помощью рН-метра, или индикаторных
бумажек.
Нейтрализация
дистиллированной воды.
Кислую
воду подщелачивают по каплям 1%
раствором карбоната натрия,
щелочную
— подкисляют 1% раствором уксусной
кислоты до тех пор, пока она не будет
иметь рН 7,0.
Окраска
по Романовскому
Принцип.
Окрашивание
различных элементов клеток в разные
цвета и оттенки смесью основных
(азур II) и кислых (водорастворимый
желтый эозин) красок.
3,8
г сухой краски Романовского растворяют
в 250 мл чистого метилового или
этилового спирта.
Раствор
оставляют на 3—5 сут, часто взбалтывая
для лучшего растворения краски.
Затем
прибавляют 250 мл чистого глицерина
и вновь оставляют на 3—5 сут,
периодически взбалтывая. Приготовленная
таким образом краска хорошо сохраняется
длительное время в темных бутылях
в шкафу, где нет ни кислот, ни щелочей.
Вновь
полученный или приготовленный
раствор красителя Романовского
перед употреблением оттитровывают,
т. е. окрашивают несколько фиксированных
мазков крови в течение 25—40 мин
различно разведенной краской (1—2
капли краски на 1 мл дистиллированной
воды). По хорошо окрашенному препарату
устанавливают нужное количество
капель краски на 1 мл воды и время
окрашивания.
Фиксированные
мазки укладывают на мостик, состоящий
из двух стеклянных палочек, уложенных
на два противоположных края кюветы.
Затем
мазки заливают разведенной краской,
которую наливают на мазок возможно
более высоким слоем. Окрашивание
длится в зависимости от температуры
воздуха в помещении от 25 до 45 мин.
Если
температура в помещении низкая или
требуется быстрее окрасить мазки,
то разведенную краску можно подогреть
до 60—70° (до кипения доводить нельзя).
После
окончания окраски краску смывают
(но не сливают) сильной струей воды
и ставят мазки вертикально в деревянный
штатив для просушивания.
Разведенной
краской можно пользоваться только
в течение одного дня.
Окраска
по Романовскому в модификации
Филипсона.
Принцип.
Применение
красителей-фиксаторов, которыми
мазки крови в первый период одновременно
фиксируются и частично окрашиваются,
а во второй период, после разбавления
красителей – фиксаторов дистиллированной
водой, докрашиваются окончательно.
1.Одну
часть готовой краски Романовского
и 3 части этилового спирта (ректификата)
тщательно смешивают. Краска сразу
же пригодна к употреблению, но можно
готовить ее и заранее.
2.
Дистиллированная вода нейтральной
реакции.
Методика.
Приготовленный
краситель наливают на нефиксированный
мазок, покрывая его полностью и через
1 — 1мин 30 сек, не сливая красителя,
прибавляют к нему но каплям примерно
столько же дистиллированной воды,
следя за тем, чтобы вода при соединении
с красителем не сливалась с мазка.
Через 20—30 мин краситель смывают
водой и мазок высушивают.
Окраска
по Лейшману.
Способ
Лейшмана отличается от предыдущего
лишь применяемым красителем и
продолжительностью периодов фиксации
и окраски. При этом способе применяют
краситель,
получаемый растворением смеси азура
I, метиленового синего и желтого
водорастворимого эозина в количестве
0,2 г в 10 мл абсолютного метилового
спирта.
Продолжительность
фиксации неразбавленным красителем
3—4 мин, а окраски с равным количеством
воды 5—10 мин.
Способы
быстрой окраски мазков краской
Романовского по Алексееву.
Принцип.
Одновременная
фиксация и окраска мазков с применением
для ускорения окрашивания по первому
способу подогрева дистиллированной
воды и по второму способу — подогрева
разведенной краски Романовского.
Реактивы.
1.
Разведенная краска Романовского
(1,5 капли краски на 1 мл дистиллированной
воды).
2.
Краситель Лейшмана для второго
метода (растворяют 4 г сухой краски
в 1 л метилового спирта и хранят в
темной посуде).
3.
Чистый метиловый спирт.
4.
Нейтральная дистиллированная вода.
5.
Фильтровальная бумага.
Методика.
1.
На сухой нефиксированный мазок
наносят глазной пипеткой 6—10 капель
краски Романовского, распределяя
ее той же пипеткой равномерным слоем.
Через 30 с другой пипеткой добавляют
к краске по каплям удвоенное количество
подогретой до 50—60° дистиллированной
воды. Покачиванием препарата
перемешивают краску с водой и
оставляют на 3 мин в покое, затем
смывают ее дистиллированной водой
и высушивают мазок фильтровальной
бумагой.
2.
На сукой нефиксированный мазок
наливают равномерным слоем 10—12
капель краски Лейшмана. Через
20—30 с, не сливая краску, добавляют
к ней нагретый до 50—60° раствор краски
Романовского в количестве, способном
удержаться на препарате. Через 3 мин,
не сливая краску, смывают ее сильной
струей дистиллированной воды и
высушивают препарат фильтровальной
бумагой.
Окраска
по Нохту.
Принцип.
Воздействие
на фиксированный мазок водного
раствора смеси основной (азур II) и
кислой краски (эозин).
Реактивы.
1.
Раствор 1 г азура II в 1 л дистиллированной
воды.
2.
Раствор 1 г водорастворимого желтого
эозина в 1 л дистиллированной воды.
Каждый
из этих растворов хорошо перемешивают
и оставляют созревать при ежедневном
встряхивании на 10—14 дней.
Перед
окрашиванием раствор красителя
готовят смешиванием 25 мл раствора
1,
20
мл раствора 2 с 55 мл нейтральной
дистиллированной воды
Методика.
Краситель
наливают на фиксированный мазок, и
окрашивание длится в зависимости
от температуры воздуха 25—45 мин.
Затем краситель смывают и мазки
высушивают на воздухе.
Окраска
по Паппенгейму — Крюкову.
Принцип.
Комбинированная
окраска фиксатором-красителем
Мая—Грюнвальда
и краской Романовского,
дающая возможность очень хорошо
дифференцировать составные части
клеток.
Реактивы
1.
Готовый краситель-фиксатор
Мая—Грюнвальда, состоящий из эозин
метиленового синего в метиловом
спирте.
2.
Свежеприготовленный раствор краски
Романовского
(1—2
капли краски на 1 мл дистиллированной
воды).
3.
Нейтральная дистиллированная вода.
При
отсутствии готового красителя-фиксатора
Мая-Грюнвальда его можно приготовить
растворением 0,3-0,5 г сухой краски
Мая-Грюнвальда в 100 мл чистого
метилового спирта с добавлением
(или без него) 50 мл чистого глицерина.
Краситель
в обоих случаях созревает 4 дня при
комнатной температуре.
Методика.
На
нефиксированный мазок наливают
пипеткой 10—15 капель готового
красителя-фиксатора Мая—Грюнвальда,
через 3 мин прибавляют по каплям
столько же воды и продолжают
окрашивание еще 1 мин, после чего
краситель смывают водой и мазок
высушивают на воздухе.
Затем
на высушенный мазок наливают
свежеприготовленный водный раствор
красителя Романовского на 8—15 мин
в зависимости от температуры в
помещении, смывают краску водой и
мазок высушивают на воздухе.
Этот
способ окраски является наилучшим.
Окраска
по Райту.
Принцип.
Применение
специально приготовленного
красителя-фиксатора, дающего наиболее
четкую окраску зернистости
гранулоцитов, особенно базофилов.
Реактивы.
Краситель-фиксатор:
1% раствор медицинского метиленового
синего на 0,5% водном растворе
двууглекислого натрия наливают в
сосуд так, чтобы высота слоя не
превышала 6 см, и нагревают в аппарате
Коха при 100° в течение часа с момента
образования пара. Затем жидкость
охлаждают и фильтруют. Фильтрат при
искусственном освещении в тонком
слое должен иметь пурпурно-красный
оттенок.
К
100 мл фильтрата прибавляют 500 мл 0,1%
водного раствора эозина (желтого,
водорастворимого). При смешении
обеих жидкостей тотчас же образуется
обильный осадок, который отфильтровывают
и высушивают. Полученный краситель
растворяют в чистом метиловом спирте
в соотношении 0,1 : 60.
Методика.
На
сухой нефиксированный мазок наливают
несколько капель краски, спустя 1
мин прибавляют столько же капель
дистиллированной воды. Через 2—3 мин
препарат промывают в воде (около
полминуты), пока он в тонком слое не
приобретает розовый оттенок.
|
Приготовление
и окраска толстой капли
Принцип.
Использование
большего объема крови с целью
улучшения условий обнаружения в
крови малярийных плазмодий, спирохет
возвратного тифа, эозинофилов
Реактивы.
1.
Краска Романовского.
2.
Дистиллированная вода.
Методика.
Приготовляют
обычный мазок крови и на толстые
места его наносят отдельно две
большие капли крови. Каждую каплю
концом иглы или углом другого стекла
размазывают до величины двух- или
трехкопеечной монеты и сушат на
воздухе.
Мазок
до нанесения толстых капель и после
не фиксируют, а наливают на него на
несколько минут дистиллированную
воду для извлечения гемоглобина.
Окрашенную гемоглобином воду затем
осторожно сливают и на препарат
наливают разведенную, как обычно,
краску Романовского на 20—30 мин.
После окраски препарат осторожно
промывают водой, чтобы не смыть
каплю, и высушивают на воздухе.
Больший
объем крови, чем в мазках, и гемолиз
эритроцитов позволяют легче обнаружить
в крови малярийные плазмодии,
спирохеты возвратного тифа, а также
эозинофилы и полихроматофилы.
Клиническое
значение.
|
Окраска
патологической (токсигенной)
зернистости нейтрофилов по Шмелеву.
Реактивы.
1.
Дифосфат натрия.
2.
Монофосфат калия.
3.
Краска азур II.
4.
Водорастворимый желтый эозин.
5.
Дистиллированная вода.
6.
Фильтровальная бумага.
Приготовление
буферного раствора.
11,876
г высушенного в теплом месте в течение
5 сут двуводиого дифосфата натрия
(Na2HP04*2H20) растворяют в 1 л дистиллированной
воды;
9,078
г монофосфата калия (КН2Р04) также
растворяют в 1 л дистиллированной
воды.
Для
получения буферной смеси рН 5,4 0,4 мл
полученного раствора дифосфата
натрия смешивают с 9,6 мл раствора
монофосфата калия.
Краситель
готовят из 0,1% водного раствора азура
II и 0,1% водного раствора водорастворимого
желтого эозина. Смешивают 10 мл
фосфатной буферной смеси с 2,5 мл 0,1%
водного раствора азура II и 1,5 мл 0,1%
водного раствора эозина.
Методика.
Мазок
фиксируют в течение 4 мин в метиловом
спирте, затем окрашивают в течение
часа азуром II — эозином в фосфатной
буферной смеси. После этого краску
смывают дистиллированной водой и
мазок просушивают фильтровальной
бумагой.
Окраска
патологической (токсигенной)
зернистости по Фреифельд.
Принцип.
Применение
основной краски — карбол-фуксин-метиленового
синего.
1.
1 г щелочного фуксина растворяют при
слабом нагревании в 15 г 96° этилового
спирта, охлаждают и к спиртовому
раствору добавляют 100 мл 5% раствора
карболовой кислоты.
2.
1% водный раствор метиленового синего.
Оба
красителя можно хранить в отдельности
практически неограниченное время.
Рабочую
смесь готовят непосредственно перед
окраской, так как она непригодна для
хранения.
К
20 мл водопроводной
воды приливают 7 капель первой краски,
смешивают, прибавляют 5 капель второй
краски и снова смешивают.
Методика.
Мазки
крови, фиксированные 3 мин в метиловом
спирте, красят 1 час рабочей смесью
красителя, а затем краситель смывают
водой и мазки высушивают.
Препарат,
уже окрашенный по Романовскому,
может быть окрашен этим способом
без предварительного обесцвечивания.
_________________________________________________________________________
При
тяжелой бактериальной
инфекции
в цитоплазме нейтрофилов могут
появиться более крупные, чем в норме,
гранулы - токсигенная зернистость
нейтрофила
Наличие
в цитоплазме нейтрофилов патологической
зернистости имеет большое значение
для оценки состояния больного при
инфекционных процессах, при сепсисе,
новообразованиях, интоксикациях и
других заболеваниях.
_________________________________________________________________________
Окраска
для выявления базофильной пунктации
эритроцитов по Фреифельд
Принцип.
Базофильная
зернистость эритроцитов хорошо
воспринимает щелочной раствор
метиленового синего.
Методика.
Мазок
фиксируют в течение 3 мин в метиловом
спирте, а затем окрашивают в течение
часа раствором метиленового синего
(5 капель 1% раствора на 20 мл водопроводной
воды).
Краску
смывают водой и мазок высушивают.
_______________________________________________________________________
Базофильная
зернистость (пунктация) эритроцитов
- гранулы сине-фиолетового или синего
цвета, различного размера, располагаются
чаще по периферии эритроцита,
представляет
собой остатки рибосом. Встречаются
при интоксикации свинцом или тяжелыми
металлами, талассемии, алкогольной
интоксикации, цитотоксическом
действии лекарственных препаратов,
тяжелых анемиях.
_________________________________________________________________________
Базофильную
пунктацию можно обнаружить и в мазках
крови, окрашенных обычными способами
по Романовскому, Паппенгейму—Крюкову
и др.
|
|
|
|
|
|
Метод
прижизненной окраски ретикулоцитов
бриллиантовым крезиловым синим.
Каплю
насыщенного раствора бриллиантового
крезилового синего в абсолютном спирте
наносят на вымытое, обезжиренное и
подогретое стекло и делают тонкий мазок.
На приготовленное таким образом стекло
наносят каплю крови,
делают мазок и тотчас помещают стекло
во влажную камеру (чашку Петри, на края
которой выкладывают смоченные валики
марли), выдерживают в ней в течение 3—5
минут, высушивают на воздухе, после чего
микроскопируют. Зернисто-нитчатая
субстанция внутри ретикулоцита
окрашивается в фиолетово-синий цвет на
зеленовато-голубом фоне эритроцитов.
Лучшая окраска ретикулоцитов достигается
способом Гель-Мейера: в пробирке
Видаля смешивают несколько капель крови
с равным объемом 1%-ного раствора
бриллиантового крезилового синего в
изотоническом растворе хлорида натрия,
закрывают пробкой и оставляют в пробирке
на 1 час, затем из смеси делают мазок на
предметном стекле.
СПОСОБЫ
ОКРАСКИ НА ВЫЯВЛЕНИЕ БАКТЕРИЙ,
ГИСТОЛОГИЧЕСКИХ СРЕЗОВ
Красители
Метиленовый
синий
— темно голубой щелочной (oснóвный) и
нефлюоресцирующий краситель из группы
фенотиазина (тригидрат хлорида
тетраметилентионина).
толуидиновый
синий
— toluidine blue толуидиновый синий, щелочной
(oснóвный) цитохимический краситель
конго
красный
(Congo red) - темно-красный или краснокоричневый
краситель, который приобретает синюю
окраску в кислой среде. Применяется в
гистологии в качестве красителя. Если
более 60% красящего вещества исчезает
из крови в течение часа после его
введения, это свидетельствует о наличии
у человека амилоидоза*; (син.
конгорот)
бензидиновый краситель, широко применяемый
в гистологической технике, напр. для
прижизненного выявления амилоида,
окрашивания эластических волокон,
кератина.
*
АМИЛОИДОЗ
- белково-углеводная дистрофия;
образование
и системное (или
локальное) отложение в тканях белкового
вещества амилоида; обусловлено генетически
(напр., при периодической болезни); может
возникать как осложнение хронических
инфекций (напр., остеомиелита) и т. д.
фуксин
Пфайффера (карболовый)
— гистологический краситель, состоящий
из спиртового раствора фуксина в 5%
карболовой воде
(см.
Окраска
патологической (токсигенной) зернистости
по Фреифельд – способ
приготовления:
1 г щелочного фуксина растворяют при
слабом нагревании в 15 г 96° этилового
спирта, охлаждают и к спиртовому раствору
добавляют 100 мл 5% раствора карболовой
кислоты).
Витальный
способ окраски
Для
витального
(прижизненного) крашения
применяют 0,2-0,001 % водные растворы
метиленового
и толуоидинового
синего,
и конго
красный,
которые добавляют в придавленную или
висячую капли культуры. Этим способом
выявляют спирохеты,
простейшие,
определяют подвижность бактерий,
иммунное набухание капсулы, но
использование его требует строгого
соблюдения правил, исключающих
лабораторное заражение.
Поствитальные
способы окраски
Способы
окраски фиксированных препаратов
(поствитальные) разделяют на простые
и
сложные.
При простых
способах красящие растворы фуксина
Пфейффера (экспозиция 1-2 мин), щелочного
метиленового синего (3-5 мин) наносят на
фиксированный препарат, так, чтобы он
полностью покрыл мазок, краситель
сливают, препарат промывают струйкой
воды, встряхивают, высушивают и
микроскопируют.
Простые
способы позволяют судить о величине,
форме, локализации, взаимном расположении
отдельных клеток, но с их помощью нельзя
установить структуру микробов и часто
их дифференцированное отношение к
красителям.
Из
сложных
способов
окрашивания бактерий в основном
используют дифференцированный способ
Грама,
выявление кислотоустойчивости по Цилю —
Нельсону,
определение волютиновых зёрен по
Леффлеру
или Нейссеру,
дифференцирующий способ
Романовского — Гимзы,
негативно-позитивный способ определения
капсулы по Гинсу — Бурри, выявление
спор по Пешкову
или Цилю — Нельсону и др. Для окраски
простейших применяют способ
Романовского —Гимзы. Грибы исследуют
неокрашенными или способами Грама,
Циля — Нельсона, Леффлера, Романовского —
Гимзы, а также раствором
Люголя
и др.
Окраска
по методу Романовского-Гимза
Краска
Романовского-Гимза состоит из смеси
азура,
эозина и метиленовой сини.
Непосредственно перед употреблением
к 10 мл дистиллированной воды нейтральной
или слабо щелочной реакции
(pH
7,0 – 7,2) прибавляют 10 капель коммерческого
красителя Романовского-Гимза.
Приготовленный раствор краски тотчас
же наливают на фиксированный мазок или
лучше предметное стекло с окрашиваемым
препаратом погружают в стаканчик с
краской. Через 1 ч краску сливают, препарат
промывают водой и высушивают на воздухе.
Окрашивание
по Романовскому
— Гимзе — цитологический
метод окрашивания
микроорганизмов, клеточных
структур и тканей
различных видов (в том числе крови)
для изучения методом световой микроскопии.
Предложена
в 1904 году Густавом
Гимзой. (Раствор Гимзы для
окраски по Романовскому).
Приготовление
красителя
Готовый
жидкий краситель перед окрашиванием
мазков разводят из расчета 1-2 капли
красителя на 1 мл дистиллированной воды.
Мазки окрашивают 20 — 25 минут при
37 °C во влажной камере (закрытая чашка
Петри с увлажнённым фильтром на дне).
После окрашивания мазки промывают в
проточной воде, сушат на воздухе и
исследуют при масляной иммерсии.
Специальный
стандартный раствор Гимза
Состав
красителя:
Азур
1 — 3,772 г
Эозин —
2,165 г
Метиленовая
синька
—
1,563 г
Метанол
(ЧДА) — 750,0 мл
Глицерин
(ЧДА) — 256,0 мл
Краска Романовского-Райта
азур
І,
азур
ІІ,
метилен
фиолетовый
и метиленовый
синий
. Затем добавляется эозин
для получения “нейтрального” красителя.
Осадок затем растворяется в смеси
метилового
спирта и глицерина
для получения хранимого раствора.
Последний разводится водой для получения
рабочего раствора при приготовлении
образцов патологического материала.
_________________________________________________________________________________
Краситель
Романовского сочетает в своем составе
эозин
— азур
ІІ.
Краситель
Романовского является прототипом ряда
других красителей,
которые применяют для исследования
гистологических препаратов крови
и костного
мозга, для обнаружения
паразитов крови, таких как малярия,
а также при широком круге других
патологических состояний. Окрашивание
красителем Романовского-Райта удобнее,
чем окрашивание
гематоксилином
(гистологический
краситель, получаемый из эфирного
экстракта кампешевого
дерева) и
эозином,
так как позволяет дифференцировать
различные типы лейкоцитов.
По
причине того, что водные растворы
красителей не были устойчивыми, в 1901
году
Лейшман
и в 1902
году
Райт
предложили
применение метилового
спирта
в качестве фиксатора перед окрашиванием.
В 1904 году Гимза
улучшил эту методику путем стандартизации
растворов красителя и добавления
глицерина
для увеличения растворимости и
стабильности.
_________________________________________________________________________________
Окраска по методу Нейссера для выявления зерен волютина
Фиксированный
на пламени горелки мазок окрашивают 1
– 2 мин. синькой Нейссера.
Синьку
сливают, на препарат наносят несколько
капель раствора Люголя на 1 мин.
Мазок
промывают водой, подсушивают фильтровальной
бумагой.
Докрашивают
в течение 2 мин. раствором хризоидина
или 1 – 3 мин. раствором везувина.
Промывают
водой, подсушивают и микроскопируют.
Зерна
волютина окрашиваются в синий цвет,
тела микробных клеток – в светло-коричневый
цвет.
(
Волютин - один из типов включений.
Непостоянно присутствует у коринебактерий,
спирилл, дрожжей. Представляет собой
запасной питательный материал в виде
комплексов РНК с метаполифосфатами.
Выявление В. применяют для идентификации
коринебактерий дифтерии, у к-рых В.
располагается в виде зерен по концам
бактерий. Обнаруживают В. окраской
по Нейссеру
или Леффлеру
)
Окраска
по методу Пешкова для выявления
бактериальных спор
На
фиксированный мазок наливают синьку
Леффлера и дают краске закипеть.
Окрашивание мазка происходит кипящей
синькой в течение 20 – 30 с.
Препарат
промывают водой.
Докрашивают
0,5%-ным водным раствором нейтральрота
в течение 30 – 60 с.
Промывают
водой и высушивают.
Споры,
окрашенные синькой Леффлера, имеют
голубой цвет, вегетативные тела бактерий
– красный цвет.
Окраска
по методу Ожешко для выявления спор
На
высушенный нефиксированный препарат
(мазок готовится толстым и на краю
стекла) наливают несколько капель
0,5%-ного раствора соляной кислоты и
подогревают 1 – 2 мин. над пламенем
горелки до закипания, после чего остатки
кислоты сливают.
Остывший
препарат промывают водой, подсушивают
на воздухе и фиксируют на пламени
горелки.
Окрашивают
карболовым фуксином Циля (фуксин
наливают на фильтровальную бумажку) с
подогреванием до появления паров.
Обесцвечивают
5%-ным раствором серной кислоты в течение
нескольких секунд.
Промывают
водой.
Докрашивают
синькой Леффлера или 1%-ным водным
раствором малахитовой зелени в течение
3 – 5 мин.
Споры,
окрашенные фуксином, имеют рубиново-красный
цвет, вегетативные тела микробных клеток
при докрашивании синькой Леффлера –
синий цвет, при применении малахитовой
зелени – зеленый цвет.
Окраска
по методу Бурри для выявления капсул
На
узкий конец предметного стекла наносят
каплю туши в петлю исследуемого материала.
Смесь перемешивают тщательно петлей,
делают мазок, как мазок из крови,
высушивают на воздухе и, не фиксируя,
микроскопируют с иммерсионной системой.
Фон препарата окрашен в темно-дымчатый
цвет, микробные тела и их капсулы не
окрашиваются тушью и остаются бесцветными,
вследствие чего этот способ получил
название негативного.
Окраска
по методу Гинса для выявления капсул
Приготавливают
негативно окрашенный по методу Бурри
препарат.
Фиксируют
любым химическим способом: метиловым
спиртом, смесью Никифорова или другими
смесями.
Промывают
водой.
Окрашивают
карболовым фуксином Циля, разведенным
1:3, в течение 3 – 5 мин.
Препарат
промывают водой, высушивают и
микроскопируют с иммерсионной системой.
При
микроскопировании на темном фоне
препарата контрастно выделяются
неокрашенные капсулы, внутри которых
находятся бактерии ярко-малинового
цвета.
_________________________________________________________________________________
Иммерсионная
система —
оптическая система, в которой пространство
между первой линзой и предметом заполнено
жидкостью. Применяемая таким образом
жидкость называется иммерсионной.
_________________________________________________________________________________
Окраска
по методу Циля-Нильсена
Метод
назван именами немецких медиков —
микробиолога Франца
Циля (1857—1926)
и патологоанатома Фридриха
Нельсена (1854—1898),
которые разработали его в 1882—1883
гг.
Метод
окраски микроорганизмов для выявления
кислотоустойчивых микобактерий
(возбудителей туберкулёза,
микобактериозов,
лепры),
актиномицетов
и других кислотоустойчивых микроорганизмов.
Кислотоустойчивость микроорганизмов
обусловлена наличием в их клетках
липидов,
воска
и оксикислот.
Фиксированный
на пламени горелки мазок окрашивают в
течение 3 – 5 мин. раствором карболового
фуксина Циля или окрашенной фуксином
бумажкой с подогреванием до появления
паров, но не доводя краситель до кипения.
Дают
препарату остыть, бумажку снимают,
сливают избыток красителя, препарат
промывают водой.
Окрашенный
препарат обесцвечивают 5%-ным раствором
серной кислоты в течение 3 – 5 с или 96°
этиловым спиртом, содержащим 3% по объему
хлористоводородной кислоты, несколько
раз погружая стекло с мазком в стаканчик
с солянокислым спиртом.
После
обесцвечивания остаток кислоты сливают
и тщательно промывают препарат водой.
Докрашивают
дополнительно метиленовым синим
Леффлера 3 – 5 мин.
Окрашенный
препарат промывают водой, подсушивают
и микроскопируют.
При
окраске препаратов кислоустойчивые
бактерии
окрашиваются фуксином в рубиново-красный
цвет и не обесцвечиваются кислотой.
Некислотоустойчивые
бактерии,
а также элементы ткани и лейкоциты под
действием кислоты обесцвечиваются и
приобретают цвет дополнительного
красителя.
Окраска
по методу Грама
Метод
окраски
микроорганизмов
для исследования, позволяющий
дифференцировать бактерии
по биохимическим свойствам их клеточной
стенки.
Предложен
в 1884 году
датским
врачом Г. К. Грамом.
По
Граму бактерии окрашивают анилиновыми
красителями — генциановым
или метиловым
фиолетовым и др., затем
краситель фиксируют раствором йода.
При последующем промывании окрашенного
препарата спиртом
те виды бактерий, которые оказываются
прочно окрашенными, называют
грамположительными
бактериями (обозначаются Грам (+)), —
в отличие от грамотрицательных
(Грам (−)), которые при промывке
обесцвечиваются и воспринимают
дополнительную окраску – фуксина
Пфейффера.
Фиксированный
на огне мазок окрашивают генциан-,
метил- или кристаллвиолетом
2 мин. (положив на мазок фильтровальную
бумагу, пропитанную краской).
Наливают
раствор Люголя на 2 мин. Мазок приобретает
серо-бурую окраску.
Сливают
раствор Люголя.
Для
обесцвечивания вносят несколько капель
70° спирта на 2 мин.; следят, чтобы он
равномерно распределился по поверхности
всего мазка.
Препарат
промывают водой.
Докрашивают
фуксином Пфейффера 2 мин.
Бумажку
снимают, препарат промывают водой.
Промывают
водой, высушивают, микроскопируют.
Результат
окраски:
грамположительные бактерии
Грам (+), окрашиваются
основной краской в темно-фиолетовый
цвет, грамотрицательные бактерии
Грам (−),
воспринимая дополнительную окраску,
приобретают ярко-малиновый цвет.
_________________________________________________________________________________
Раствор
Люголя—
раствор йода
в водном растворе йодистого
калия_
Окраска
по Козловскому (бруцелл в патологическом
материале).
Мазок
фиксируют, красят 2-проц. водным раствором
сафранина с подогреванием до появления
первых пузырьков газа, промывают водой,
дополнительно красят 1-проц. раствором
малахитовой зелени 0,5—1 мин. Бруцеллы
яркокрасные, фон зеленый.
--------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------
Бруцеллёз—
зоонозная
инфекция,
передающаяся от больных животных
человеку, характеризующаяся множественным
поражением органов и систем организма
человека.
Возбудитель заболевания —
группа микроорганизмов рода бруцелл.
Патогенными для человека являются три:
возбудитель бруцеллёза мелкого рогатого
скота (Brucella
melitensis),
возбудитель бруцеллёза крупного рогатого
скота (Brucella
abortus),
возбудитель бруцеллёза свиней (Brucella
suis)