Помните! Кожа в месте входа иглы должна быть здоровой! Внутримышечно — где и как?

 

Внутримышечное введение подразумевает введение вглубь мышечных тканей, мышц. Лучшими местами на теле собаки  являются область бедра, реже плеча. Чаще всего делают в бедро (кстати, среди владельцев более понятно » сделать в бедро», чем «сделать внутримышечно», поэтому врачу  в назначениях для ясности понимания чаще приходится писать «в бедро»).

При инъекции в бедро важно понимать следующее:

• Мышца не должна быть напряжена, если животное «зажалось» успокойте его и помассируйте бедро пальцами. Лапу слегка согните.

• Смазывать спиртом и т.п. кожу не надо. У животных сильный антибактериальный слой на коже, конечно если кожа в месте предполагаемой инъекции здорова, без признаков воспаления.

• Главное, нельзя трогать иглу руками!!!

• Препарат должен быть комнатной температуры, а лучше температуры тела (37-39 градусов по Цельсию)

• Не во все точки бедра можно делать укол.  Берегите нервные стволы в толще мышц.

• Шприц при инъекции должен иметь правильное направление.

Укол маленькой собаке  (до 10 кг) делается в мышцы не глубже 0,7 — 1,5 см.  Более крупным собакам игла вводится на глубину от 1,5 до 3,5 см. Взять шприц необходимо правильно сразу, чтобы после вкола не переставляя пальцы было удобно давить на поршень.

На схеме:  зеленым отмечены области, куда можно сделать внутримышечный укол собаке.

Рис. 15. Внутримышечные инъекции собакам

Рис. 16. Внутримышечные инъекции собакам

Рис. 17. Места внутримышечных иньекций корове.

Н а картинке примерно обозначила места инъекций  для крупного

Рис. 18. Места инъекций  для крупного рогатого скота. Зеленым для внутримышечных инъекций, желтым - для подкожных.

Рис. 19. Место внутримышечной инъекций  для крупного

Рис. 20. Места инъекций  для свиней. Зеленым для внутримышечных инъекций, желтым - для подкожных.

рогатого скота и овец-коз. Зеленым для внутримышечных инъекций, желтым - для подкожных.

Рис. 21. Места инъекций  для черепах

Чтобы делать инъекции черепахе, нужно иметь одноразовые шприцы или шприцы вместимостью 1, 2, 5 мл, набор игл. Одноразовый шприц готов к употреблению, он стерилен. Постучав пальцем по ампуле, чтобы содержащееся в ней лекарство оказалось все внизу, по ней, там, где она начинает сужаться, водят пилочкой или сразу отламывают острый ее конец, накрыв его сначала кусочком ваты. Держа ампулу в левой руке, а шприц в правой, иглу вводят в ампулу так, чтобы она не касалась стенок ампулы. 

Набрав лекарство, шприц поднимают иглой вверх и выпускают из него весь имеющийся в нем воздух до тех пор, пока не появится струйка. Если в шприце оказалось лекарства больше, чем нужно, дозу уменьшают, выдавливая поршнем лишнее и глядя на деления, имеющиеся на цилиндре.

Если лекарство (препарат в форме порошка) находится во флаконе, то с помощью пинцета или ножа удаляют алюминиевый кружочек посередине колпачка. Затем в шприц набирают растворитель: новокаин, изотонический раствор хлорида натрия, протирают ватой, смоченной спиртом, резиновый кружочек на колпачке, вводят во флакон растворитель, тщательно перемешивают его с порошком и набирают лекарство в шприц. Вынув шприц с иглой из флакона, на него надевают другую, стерильную иглу, выпускают из него воздух и делают инъекцию. 

Кожу черепахи перед уколом протирать ничем не нужно, если сама по себе черепаха чистая. Можно промыть проточной водой. Спирт вызывает у рептилий ожоги.

Прежде чем вынуть из тела животного иглу, возле нее на кожу несильно надавливают чистым пальцем: это уменьшит боль.

Затем место, в которое вводилось лекарство, слегка массируют примерно минуту ‒ чтобы жидкость лучше распределилась в прилежащих тканях и быстрее всосалась.

В практике ветврачей применяют подкожные, внутримышечные, внутривенные, интрацеломические, эпицеломические и внутрикостные инъекции. Инъекции кальция ‒ есть несколько способов введения кальция ‒ внутримышечный и подкожный. В каждом конкретном случае этот вопрос стоит решать лечащему врачу.

Подкожно вводятся хорошо препараты, которые не обладают раздражающим действием. Препарат вводится под кожу в основании плеча или бедра с медиальной его стороны. 

Если конечность можно вытянуть, то колют в середину кожи, прикрывающей паховую вырезку панциря или под кожу у основания бедра. Если конечность вытянуть сложно, колют,  вводя иглу по краю нижнего панциря, под втянутой конечностью и неглубоко. Колоть сильно обезвоженных черепах может быть опасно, т.к. в области паховой ямки стенка мочевого пузыря может быть интимно связана с подкожным апоневрозом.

Рис. 22. Места инъекций  для черепах

Внутримышечно вводятся антибиотики (только в передние лапы), витаминные комплексы и кальций и другие препараты с помощью шприца объемом 1 мл или 0,5 мл с иголкой калибра 27G. Уколы можно делать в 3 области: в мышцу плеча (передних лап), в мышцу бедра (задних лап) или в ягодичную область (слева или справа от хвоста). Колоть надо между щитками. Перед непосредственным введением лекарства в мышцы необходимо потянуть поршень шприца на себя, чтобы убедиться, что игла не находится в сосуде. Если она в нем, в шприце появится кровь. В таком случае иглу продвигают немного вглубь. 

 Уколы в мышцу плеча делаются в верхнюю часть вытянутой передней лапы, игла должна идти параллельно кости плеча.

• Уколы в мышцу бедра делаются в бедро вытянутой задней лапки, причем игла должна идти параллельно кости бедра.

• В ягодичную область укол делается ближе к карапаксу между хвостом и задней лапой. Колоть надо между щитками.

3.3. Внутривенные введения. У крупных животных растворы вводят в яремную вену, иногда в шпорную или молочную; у собак - в бедренную, яремную, плюсневую и подкожную предплечья.

У свиней внутривенные вливания делают в большую уш­ную вену. Основание уха сдавливают резиновой трубкой или вену зажимают пальцем. Иглу направляют в сторону основа­ния ушной раковины.

Рис. 23. Внутривенная инъекция корове

У кроликов вливания делают в ушную вену, расположен­ную по краю наружной поверхности ушной раковины.

В ветеринарии мелких домашних животных при многих заболеваниях имеется необходимость во внутривенных инъекциях: для введения физиологических растворов обезвоженным животным, внутривенного введения лекарств, венозного доступа во время реанимации, при операции, при госпитализации пациента с судорогами. Введение внутривенного катетера должно быть составляющей процедурой в лечении при внутривенном введении большого объема жидкости или когда лекарственные препараты вводятся внутривенно многократно, либо же непрерывно в виде капельниц. На наш взгляд, эта процедура не достаточно широко используется в России, хотя техника введения внутривенных катетеров достаточно проста и должна быть использована в практике каждым ветеринарным врачом.

Существуют две основные категории внутривенных катетеров по месту введения: периферические и центральные. Катетеры типа «через стилет» наиболее часто используются в ветеринарной медицине мелких домашних животных. В таких катетерах игла-стилет из нержавеющей стали находится внутри катетера и выступает из него на 1-2 мм. Стилет служит для прокола кожи и вены. После того как катетер введен в полость вены, стилет изымается из катетера. Катетеры такого типа выпускаются разнообразных размеров и обычно с наружным диаметром от 24 до 14 G и длиной от ¾ до 2 дюймов (1 дюйм = 2.54 см). Другой тип катетеров - «через иглу» используются гораздо реже. Эти катетеры находятся внутри иглы, которая используется для введения в кровеносный сосуд. После введения иглы в сосуд, катетер продвигается через иглу в вену. Игла выводится из сосуда и защитный кожух крепится на иглу, чтобы предотвратить разрез катетера или порез пациента. Эти катетеры обычно длиной от 8 до 12 дюймов и могут быть использованы для внутривенного вливания растворов и лекарств, а также для забора анализов крови. Такие катетеры могут быть использованы как периферически, так и центрально. Одно- и многопросветные центральные венозные катетеры предназначены для одновременного внутривенного вливания нескольких лекарственных растворов, сбора крови, а также измерения центрального венозного давления.

Последовательность установки внутривенного катетера коту:

Рис. 24. Подготовка места инъекции

Рис. 25. Подготовка места инъекции

Теоретически, катетер можно ввести в любую поверхностную вену. Наиболее часто используемые вены - головная (подкожная) вена (v. cephalica), медиальная и латеральная вена сафена (v. saphena medialis et lateralis). Центральный венозный доступ может быть получен через яремную вену и вену сафена. Латеральная вена сафена более доступна у собак, тогда как у кошек проще ввести центральный катетер через медиальную вену сафена. Катетеры, введенные в заднюю ногу, труднее поддерживать в чистоте и не рекомендуются для пациентов с недержанием мочи или поносом.

Рис. 26. Подготовка места инъекции

Постановка периферического катетера. Введение внутривенного катетера должно проводиться асептически, чтобы предотвратить возможные инфекции. Шерсть над веной должна быть сострижена (рис.4), авторы также рекомендуют состригать шерсть на вентральной стороне ноги для упрощения и более надежного закрепления катетера (рис.5). Кожа должна быть очищена и продезинфицирована, как при подготовке хирургического поля (рис.6). Мы предпочитаем использовать ватные тампоны, пропитанные 4% раствором хлоргекседина и 70% спиртом. Обработка кожи начинается в месте введения катетера и проводится круговыми движениями по спирали от центра к периферии, чередуя тампоны, смоченные хлоргекседином и спиртом.

Рис. 27. Определение вены

Обработка кожи начинается в месте введения катетера и проводится круговыми движениями по спирали от центра к периферии, чередуя тампоны, смоченные хлоргекседином и спиртом. Используя марлевый тампон, вытрите излишки дезинфекционных растворов с обеих сторон от вены, не дотрагиваясь до кожи непосредственно над веной. Хотя использование стерильных перчаток при введении периферических внутривенных катетеров не обязательно, руки должны быть чистыми или в медицинских перчатках.

Выбор размера катетера зависит от размера пациента, места введения и планируемого использования. Общие рекомендации: использовать катетеры с наружным диаметром 24-22 G для новорожденных и экзотических пациентов, 22-20 G для кошек и маленьких собак, 18-20 G для средних собак, 16-18 G для крупных собак, 14 G для гигантских собак.

Рис. 28. Введение катетера

Правильная фиксация животного очень важна при введении периферического внутривенного катетера. Ассистент, фиксирующий пациента, должен пережать сосуд большим пальцем руки проксимально от места введения катетера (рис.7). Жгут может быть использован как альтернативный метод пережатия сосуда. Конечность должна быть зафиксирована с одновременным натяжением кожи латерально для стабилизации вены.

Рис. 29. Введение катетера

Р ис. 30. Катетеры для внутривенных вливаний.

Человек, вводящий катетер, должен держать лапу животного в недоминирующей руке (левой руке для правшей), также немного натягивая кожу латерально. Это поможет вам увидеть и стабилизировать вену. Начинайте введение катетера как можно дистально. Держа катетер со стилетом внутри в доминирующей руке, расположите его параллельно вене. Проколите кожу одним быстрым движением, держа катетер под углом в 15-30 градусов, предварительно убедившись, что срез иглы находится в верхнем положении (рис.8). Введите катетер в вену до тех пор, пока не увидите кровотока в индикаторной камере. После того как кровь появилась в индикаторной камере катетера продвиньте катетер еще 1-2 мм вдоль вены, чтобы сам катетер, а не только игла-стилет находился в просвете вены.

Рис. 31. Фиксация катетера

Рис. 32. Фиксация катетера

Убедившись, что кровь поступает в индикаторную камеру (рис9), зафиксируйте иглу-стилет и продвиньте канюлю катетера в вену до тех пор, пока основание катетера не достигнет кожи (рис.10). Если катетер находится в просвете вены, он должен продвигаться с минимальным сопротивлением. Если катетер не продвигается в вену достаточно легко, удалите его и начните установку катетера сначала.

Рис. 33. Подсоединение системы

Повторная попытка может быть проведена на той же вене, проксимально от первого места введения. Если кожа животного толстая (самцы котов, собаки породы Шарпей, очень обезвоженные пациенты), ее можно сначала проколоть с помощью стерильной иглы или кончика лезвия скальпеля. Если используется скальпель, разрез должен быть длинной 0,5-1 мм и при разрезе нужно быть осторожным, чтобы не проколоть стенку сосуда. Если катетер правильно введен и канюля находится внутри сосуда, у больного с нормальным давлением крови и адекватным кровенаполнением кровь будет медленно капать из просвета катетера. Как только вы убедились, что катетер находится внутри вены, ассистент должен убрать палец, пережимающий сосуд. Поставьте заглушку или заглушку-порт, заполненную гепаризированным физиологическим раствором, на катетер, либо присоедините инфузионную систему. Разнообразные виды заглушек показаны на рис.11. Немедленно введите в катетер физраствор или гепаринизированный физраствор для предотвращения образования тромба. Физраствор должен проходить через катетер без сопротивления. Если при введении физраствора вы заметили отек или гематому, удалите катетер и наложите временную давящую повязку, используя ватный тампон и лейкопластырь.

Рис. 34. Фиксация системы

После установки катетера, зафиксируйте его лейкопластырем вокруг ноги (рис.12-17). Не накладывайте лейкопластырную ленту слишком туго, либо это приведет к отеку конечности. Если это произошло, лейкопластырная повязка должна быть снята и наложена по новой, либо катетер должен быть удален. Катетер необходимо промывать физраствором или гепаринизированным физраствором один раз в течение 4-6 часов. Если физраствор не проходит в катетер без особого усилия, не пытайтесь промыть тромб в вену. Если катетер закупорен тромбом, он (катетер) должен быть удален. При удалении катетера, убедитесь, что он присутствует целиком. Проверяйте катетер и место его введения каждые 24-48 часов! Особое внимание должно уделяться появлению красноты, отека, выделений. Всегда мойте руки перед проверкой катетера! Лейкопластырная повязка, фиксирующая катетер должна быть всегда сухой и чистой. При осмотре повязка должна быть снята, кожа на месте введения катетера осмотрена, и вена пропальпирована. При наличии признаков воспаления или тромба, катетер должен быть удален и, если состояние пациента требует внутривенной катетеризации, новый катетер должен быть введен в вену другой конечности. При возникновении на месте введения катетера красноты, болезненности или отека, кончик катетера желательно сохранить для бактериального посева. При намокании лейкопластырной повязки замените ее, чтобы предотвратить смещение катетера и дерматит.

Для удаления периферического катетера, ножницами разрежьте лейкопластырную повязку на боковой или вентральной стороне конечности, соблюдая осторожность и не перерезая катетер. Снимите лейкопластырную повязку вместе с катетером. Наложите временную давящую повязку на 15-20 мин. Владельцы животного должны наблюдать, чтобы животное не начало зализывать кожу, выбритую под введение катетера. Елизаветинский воротник может быть назначен для предотвращения зализывания.

При трудном венозном доступе у пациентов с гиповолемическим шоком, ожирении или сильном подкожном отеке можно провести разрез кожи над веной для облегчения введения катетера. Если состояние пациента не критическое, необходимо провести местное обезболивание перед разрезом. Процедура должна проводиться с полным соблюдением правил антисептики и в стерильных хирургических перчатках. Кожа должна быть выбрита и обработана дезинфицирующим раствором, как описано выше. Произведите разрез длиной 1-2 см параллельно вене, соблюдая осторожность и не повреждая стенки сосуда. Тупым методом отпрепарируйте вену от окружающих тканей, подведите шовный материал под сосуд проксимально и дистально от места предполагаемого введения катетера. Стабилизировав сосуд натяжением шовного материала, введите катетер через поверхностную стенку сосуда. Альтернативно, небольшой надрез стенки сосуда может быть выполнен и катетер введен в вену через него. Если был произведен разрез стенки сосуда, то швы должны быть наложены проксимально и дистально от разреза для предотвращения кровотечения и вытекания лекарственного препарата в подкожное пространство. Кожные швы и стерильная повязка должны быть наложены после введения катетера.

Периферийные катетеры могут быть оставлены на 24-72 часов или дольше, если катетер был введен в строго асептических условиях, и никаких осложнений (инфекция, флебит, тромбоз, экстраваскуляризация) не наблюдается.

Введение центрального катетера. Центральный венозный доступ может быть получен через яремную или медиальную вену сафена. Введение центрального венозного катетера показано для пациентов, нуждающихся в измерении центрального венозного давления, длительного и в больших объемах внутривенного введения лекарственных растворов, введения гипертонических растворов, частого забора крови. Центральный внутривенный катетер, введенный через яремную вену должен быть такой длины, чтобы кончик катетера располагался в соединении краниальной ветви полой вены и правого предсердия. Правильное расположение катетера должно быть подтверждено рентгенографически. Седация животного чаще всего необходима для введения центрального внутривенного катетера. Введение центрального внутривенного катетера противопоказано пациентам с коагулопатиями, поскольку трудно будет контролировать кровотечение в месте введения катетера. Также не рекомендуется введение катетера, если имеются инфекционные поражения кожи на месте введения.

При введении центрального внутривенного катетера необходимо соблюдать правила асептики. Шерсть на шее должна быть выбрита, место введения катетера должно быть продезинфицировано, как описано выше, обязательно использование стерильных перчаток. При помощи ассистента зафиксируйте животное в боковом лежачем положении с вытянутой шеей и отведенными каудально грудными конечностями. Для введения центральных катетеров используется методика Сельдингера. Наложите давление с помощью пальцев на вену в области яремного желоба, введите короткий катетер в вену под углом в 30-45 градусов и так, чтобы острие иглы было направлено по направлению к сердцу. Введите стерильный гибкий металлический проводник через катетер, выведите из вены короткий катетер и введите длинный катетер в вену через проводник. Если эта методика используется для введения катетера с большим наружным диаметром, пластиковый расширитель должен быть предварительно введен в сосуд. Если производится чрезкожное введение, то перед введением расширителя нужно сделать небольшой разрез кожи над проводником, так как расширитель не способен растянуть кожу до нужного диаметра. Описанный выше метод разреза кожи может быть использован как альтернативный метод при введении центрального венозного катетера. После расширения отверстия в стенке сосуда, выведите расширитель и через проводник введите длинный катетер в венозный сосуд. Выведите проводник после того, как конец катетера достиг предполагаемого места расположения. При помощи стерильного шприца отсосите воздух из всех портов многопросветного катетера и убедитесь в наличии крови в каждом просвете. Промойте катетер гепаринизированным физраствором и вставьте заглушку или заглушку-порт. Закрепите катетер при помощи кожных швов и наложите стерильную повязку. Заглушка или заглушка-порт всегда должны находиться вне повязки для быстрого доступа к катетеру. При накладывании повязки на шею, убедитесь, что повязка надежна, но не слишком тугая. Закрепите эластичный бинт поверх повязки, чтобы избежать соскальзывания повязки и смещения катетера. Проводите инспекцию места введения катетера регулярно и уделяйте особое внимание любым признакам инфекции, увлажнения, кровотечения, воспаления, флебита и тромбоза. Отек или затрудненное дыхание могут указывать на то, что повязка наложена слишком туго. Не используйте ошейник для выгула собак с центральным внутривенным катетером в яремной вене, используйте шлейку или поводок, одетый вокруг грудной клетки животного.

В случаях, когда введение центрального внутривенного катетера в яремную вену противопоказан (тромбоэмболизм, затрудненное дыхание, операции или травмы в области шеи, нарушение свертываемости крови), но пациент нуждается в центральном внутривенном катетере, можно использовать длинный (8-12 дюймов) катетер, введенный в медиальную вену сафена. Эта процедура представляет собой введение длинного катетера типа «через иглу». Данный катетер позволяет получить доступ к центральной венозной системе при условии, что катетер достаточно длинный и достигает каудальной полой вены. Рентгенограмма необходима для того, чтобы убедиться, что катетер введен правильно. Медицинские показания для постановки данного типа катетера такие же, как и для центрального внутривенного катетера через яремную вену. У кошек лучше всего использовать медиальную вену сафена, а у собак – латеральную вену сафена.

Введенный с использованием правил асептики центральный внутривенный катетер может быть оставлен в вене на 5-7 дней или дольше. Для забора крови из центрального катетера используется метод «три шприца». Обязательно используйте медицинские перчатки при работе с центральным катетером. С помощью стерильного шприца наберите от 3 до 5 мл крови и отложите в сторону. С помощью второго шприца сделайте забор крови в объеме, необходимом для анализа (1-3 мл). Введите кровь из первого шприца обратно в катетер, введите в катетер 3 мл гепаринизированного физраствора.

Место введения катетера должно регулярно проверяться на наличие признаков инфекции, увлажнения, кровотечения, инфильтрации, воспаления, флебита и тромбоза. Если при проверке катетера физраствор не проходит через катетер или проходит с заметным сопротивлением, катетер может быть согнут, закупорен тромбом или вне сосуда. Отек выше повязки указывает на инфильтрацию вводимых препаратов в подкожную клетчатку, отек ниже повязки указывает на то, что повязка слишком туга. Набухание повязки выше свидетельствует о инфильтрации, отек ниже показывает, что лента упаковки является слишком жесткой. Елизаветинский воротник должен быть одет на животных одновременно с введением внутривенного катетера.

В заключение хочется отметить, что внутривенная катетеризация очень важный навык, которым должен владеть любой ветеринарный врач и ветеринарный техник. Эту технику очень легко освоить, и она незаменима при необходимости быстрого венозного доступа для тяжелобольных пациентов. Она позволяет введение внутривенных лекарственных средств в больших объемах или в виде постоянных инфузий, а также снижает стресс при внутривенном введении лекарств.

Очень часто в ветеринарии при экстренной и восстановительной терапии используют внутривенные вливания: струйно или капельно. Обычно эти манипуляции выполняет ветеринарный врач, в клинике или на дому, так как внутривенные инъекции требуют большей аккуратности и осторожности, нежели внутримышечные и подкожные. Для внутривенных инъекций понадобятся обычные иглы, иглы-бабочки или браунюли ( катетер для периферических вен).

 

 

Рис. 35. Иглы-бабочки и катетеры-браунюли

 

В вене при правильном использовании и гигиене катетер может находиться до

Рис. 36. Установка катетера коту

пяти-шести дней. Браунюля представляет собой тонкую пластиковую трубку, которая находится в просвете вены и пластикового порта, который фиксируется на коже животного. Порт закрывается завинчивающейся крышкой. Браунюля крепится лейкопластырем на передней или задней лапе животного, в области подкожных вен. Внутривенный катетер зафиксированный на передней правой лапе. (1-порт, завинчен крышкой, 2-крышка клапана)

Если браунюля не используется, её рекомендуется забинтовать. (не оченьтуго). Для внутривенных вливаний применяются различные физиологические растворы: физраствор (NaCl 0.9%), глюкоза 5%, раствор Рингера (в ветеринарии Рингер-Локк), Дисоль, Трисоль, раствор Гартмана и другие. Все перечисленные препараты выпускаются различного объема, в стеклянных флаконах и пластиковой упаковке. Желательно чтобы вливаемый раствор имел температуру 30-35 градусов.

Не поленитесь перед капельницей еще раз УТОЧНИТЬ ДОЗИРОВКУ назначенного лекарства у вашего ветврача!

Д ля капельниц также необходима инфузионная система. Системы могутразличаться по внешнему виду, но любая капельница всегда содержит следующие составляющие: 1. Заборная игла                          

2. Встроенный воздуховод или игла для притока воздуха

3. Заборная камера с фильтром

4. Силиконовая трубка (проводник)

5. Дозатор

6. Резиновый клапан с канюлей

Как заправить систему

Флакон с раствором переворачивается пробкой вниз и надёжно фиксируется на высоте около 50 см от животного. Для фиксации в ветеринарных клиниках используется штатив.

     

Рис. 37. Штатив

В домашних условиях для фиксации удобно использовать целлофановый пакет с ручками.

                     Рис. 38. Установка капельницы в домашних условиях

                                                 

 Инфузионную систему освобождают от упаковки, передвигают колёсико дозатора в крайнее положение, следя при этом чтобы силиконовая трубка пережалась. Затем сняв колпачок, заборной иглой прокалывают пробку флакона. Внимание иглу при этом нужно ВКРУЧИВАТЬ! Если нет встроенного воздуховода, то в пробку вставляют дополнительную иглу. Если он имеется, то проследить чтобы воздуховодное отверстие было открыто.

Рис. 39. Подключение системы для внутривенных введений

Затем один-два раза нажав на стенки заборной камеры (фото 12), наполнить её раствором до половины (фото 13). Далее, медленно регулируя колёсико дозатора, постепенно заполнять силиконовую трубку до первых капель из канюли (фото 14). При появлении первых капель трубку снова пережать (закрыть). ВАЖНО - на первоначальном этапе заполнения трубки-проводника раствор в заборной камере должен КАПАТЬ, а не литься! Это необходимо, дабы предотвратить заброс пузырьков воздуха в силиконовую трубку. Ваша система заправлена.

Рис. 39 Подключение

системы к катетеру

Теперь необходимо подготовить катетер. Для этого нужно снять бинтовую повязку (если катетер был забинтован), отвернуть крышку катетера против часовой стрелки (фото 15) и ввести канюлю системы в порт катетера (фото 16 -17).

Рис. 40. Отключение системы

Медленно перемещая колёсико дозатора, регулируют скорость введения раствора. Средняя скорость раствора одна капля в секунду. Для каждого конкретного случая скорость введения подбирается индивидуально.

К ак закончить капельное вливание.

После того, как вы прокапали весь необходимый объём раствора, система перекрывается, канюлю извлекают из порта и завинчивают крышкой катетер по часовой стрелке. Открывают крышку клапана катетера (крышка может иметь различный цвет - синий, жёлтый, розовый, зелёный), вставляют шприц с набранным раствором гепарина и вводят, протыкая резиновый клапан, в просвет катетера 0.1 - 0.3 мл раствора. Это необходимо, чтобы в  катетере кровь не свернулась   и не образовала  тромба. Шприц вытаскивают, крышку закрывают. Катетер, при необходимости, забинтовывают.

У птиц подобные инъекции осуществляют в подкожную локтевую вену на внутренней поверхности крыла. Укол прово­дят на уровне локтевого сгиба тонкой иглой под углом 40°. На месте укола выщипывают перья и кожу смазывают раст­вором йода. Попасть иглой в эту вену довольно трудно, а по­этому рекомендуется сделать короткий разрез кожи и обна­жить вену. Для инъекций используют аппараты Боброва, Конькова и цилиндр от шприца Жанэ. Эти приборы соединя­ют с иглой посредством канюли. Перед пункцией вены, пос­леднюю фиксируют большим пальцем левой руки. После на­полнения кровью вена рельефно выступает, что облегчает вве­дение иглы. Перед пункцией вены иглу прочно фиксируют большим и указательным пальцами правой руки. Скос иглы располагают к коже наружу, под углом в 40-45°. Иглу вво­дят в вену умеренным толчком. При попадании иглы в прос­вет вены сразу же по игле вытекает струей кровь. Если игла не попала в вену или кровь из иглы течет слабой струей или каплями, то нужно переместить иглу в вене, при­дать ей другое положение. Если игла засорилась и раствор «по ней не проходит, то иглу надо извлечь и заменить другой. При правильном положении иглы в вене из прибора выпу­скают небольшое количество раствора, затем соединяют ка­нюлю резиновой трубки с иглой, сосуд с раствором поднима­ют на 20-40 см выше места укола иглы. Раствор должен поступать в вену со скоростью 20-30 мл в минуту лекарственных растворов, что регулируется поднятием или опусканием сосуда с раство­ром. После окончания введения, прежде чем извлечь иглу, на­до отсоединить канюлю от иглы, пережать вену и промыть игу.

3.4. Внутрисердечные инъекции. Введение лекарственных средств во внутрисердечную по­лость применяют не позже 5 мин. после остановки сердца. Животное должно находиться в правом боковом положении.

Прокол не следует производить сильным толчком, поэтому рекомендуется осторожное введение иглы в два приема: про­кол через кожу, затем, ориентируясь относительно нап­равления, перфорируют межреберье.

Практически прокол де­лают иглой длиной 6 - 7 см вплотную у грудной кости в 5 - 6-м межреберном промежутке на 3 - 4 см. Для введения ис­пользуют раствор гидрохлорида адреналина в дозе крупным животным до 10 мл. Раствор попадает в левый желудочек сердца.

3.5. Внутрикостные инъекции. Для внутрикостных вливаний характерна быстрота дейст­вия лекарственных веществ, что является очень важным усло­вием терапии животных.

Внутрикостные инъекции показаны в следующих случаях: при наличии травмированных крупных вен, интоксикациях, расстройствах функции желудочно-кишечного тракта; у мел­ких животных, у которых даже крупные вены слишком узкие; для длительных капельных вливаний; при шоке, когда вены находятся в шоковом состоянии; у свиней, если внутривенное вливание затруднено. Пункцию костей осуществляют и с ди­агностическими целями. Красный костный мозг имеет исклю­чительно богатую сеть капилляров венозной системы, поэто­му введенные лекарственные растворы быстро всасываются в вены, что позволяет считать внутрикостные инъекции раз­новидностью внутривенных. При внутрикостных введениях необходимо соблюдать правила асептики и антисептики, как и при внутривенных.

Внутрикостно инъецируют все те лекарственные растворы, которые вводят внутривенно, за исключением хлористого кальция. Наиболее целесообразно инъекции делать в груд­ную кость (интрастернальные инъекции), которая особенно богата красным костным мозгом и сосудами и бедна компак­тной костной тканью, легко прокалывается иглой.

Для внутрикостных инъекций требуются крепкие иглы. Лучше пользоваться иглами системы Симоняна, но можно применять и иглы Боброва, Сайковича, Дюфо. В оливы этих игл вставляют насадку со шляпкой, создающей хороший упор для руки. В область пункции предварительно инъецируют анестезирующий раствор новокаина. То же желательно сде­лать и в костный мозг перед инъекцией основного лекарства. Все инъецируемые жидкости подогревают до температуры тела.

У крупного рогатого скота стерильную пункцию и инъек­цию проводят на стоячем животном. Место прокола - боко­вая поверхность второго сегмента грудной кости на пересече­нии вертикальной линии, проведенной через середину лопатко-плечевого сустава, с горизонтальной, проведенной через середину локтевого сустава. У коров молочных пород средней упитанности точка укола лежит примерно на 10 см от перед­него края и на 5 см от нижнего края грудной кости. Прокол делают перпендикулярно к боковой поверхности грудной ко­сти. При проколе компактного слоя кости слышен характер­ный хруст, после чего иглу вводят еще на глубину 1 - 1,5 см. Из иглы извлекают мандрен и насадку, а шприцем отсасыва­ют 0,1-0,2 мл костномозговой жидкости и, если нужно, дела­ют инъекцию.

Внутрикостные инъекции у свиней можно делать в любую губчатую кость, но наиболее удобно это сделать во второй сегмент грудной кости. В этом случае свинью фиксируют в спинно-боковом положении. Прокол должен идти на глубину 1-2 см сбоку от срединной линии, затем сверлящим движени­ем иглу продвигают еще на 5-7 см, следя за тем, чтобы грудную кость не проколоть насквозь. После этого извлека­ют мандрен и, применив довольно значительное давление на поршень, делают инъекцию.

Внутрикостные инъекции телятам можно производить в возрасте от 1 дня до 6 месяцев и старше. Теленок фиксирует­ся в стоячем положении.

Производящий манипуляцию подходит к животному с противоположной стороны, поворачиваясь спиной к голове те­ленка. В дальнейшем прощупывает треугольный выступ маклока с пальцевидным вдавливанием в центре. В этом участке удаляется волосяной покров и кожа смазывается настойкой йода. Укороченная игла для спинномозговых пункций длиной 3-4 см с мандреном прижимается к 3-й фаланге указательного пальца (с целью наиболее прочной фиксации мандрена в игле) и вводится в центр пальцевидно­го вдавливания треугольного выступа маклока в направлении назад, вниз и немного внутрь на глубину 1,0-1,5 см до ощу­щения хруста прокалываемых трабекул и так называемого «провала». После введения иглы вынимают мандрен, присое­диняют шприц, наполненный лекарственным раствором, игла на 2-3 мм оттягивается назад, и раствор вводится с приме­нением некоторого усилия.

Для контроля правильности введения внутрикостной инъ­екции можно произвести аспирацию содержимого кости. Ин­дикатором правильности введения служит появление красно­ватого цвета жидкости в шприце.

После введения соответствующего количества лекарствен­ной жидкости шприц отсоединяют, извлекают иглу, место вве­дения смазывают настойкой йода.

Внутрикостные инъекции можно производить с таким же успехом и при лежачем положении животного. При этом вве­дение проводится в маклок, который находится с наружной стороны, где меньше наблюдается натяжение кожи, и ниже расположенных тканей. Для устранения некоторой болезнен­ности, которая наблюдается во время введения внутрикостного раствора, можно вначале ввести 5,0-0,0 мл 0,25% раст­вора новокаина. Внутрикостные введения лекарственных ве­ществ необходимо проводить поочередно в обоих маклоках. Если имеется необходимость многократного введения вещест­ва, то практически производят поочередно на обоих маклоках.

3.6. Аутогемотерапия. Для аутогемотерапии кровь берут у крупных животных из яремной вены, у собак - из подкожной вены предплечья, у свиней - из больших краевых вен наружной поверхности уха или артерий хвоста путем отсечения его кончика. Получен­ную кровь сразу же (до ее свертывания) вводят под кожу в области крупа, у мелких животных кровь вводят в области шеи или внутренней поверхности бедра. Большие дозы крови вводят в нескольких местах, чтобы уменьшить травматизацию тканей и избежать образования абсцессов.

Дозу крови каждый раз устанавливают в зависимости от особенностей больного и характера патологического процесса в организме. Доза крови для крупных животных - от 50 до 150 мл, для мелких животных - от 10 до 20мл. Инъекции на­чинают с доз 50-70 мл для крупных животных, постепенно увеличивая при повторном введении на 10-25 мл, интервалы между введениями крови должны быть 2-4 дня. Мелким жи­вотным инъекции начинают с доз 5-8 мл.

Аутогемотерапия с успехом применяется при лечении фа­рингита, ларингита, бронхита, воспаления легких, фурунку­леза, дерматита, мышечном и суставном ревматизме, эндо­метрите, задержании последа.

Противопоказано применение аутогемотерапии при орга­нических изменениях печени, почек, сердечной мышцы, ново­образованиях.

Особенностью аутогемотерапии является одновременное действие на организм продуктов расщепления белков сыворотки, ферментных элементов крови, а также бактерий и ток­синов, которые могут оказаться в крови больного животного. В профилактических целях также применяют изогенную кровь (того же вида животного) и гетерогенную (другого ви­да) для предупреждения анафилаксии при повторных введе­ниях гетерогенной крови. При этом необходимо к 3 частям крови добавлять 1 часть 1%-ного раствора хлорамина. В прак­тике широко применяется выдержанная кровь, обладающая более высокой активностью. От здоровых животных берут кровь и стабилизируют ее 4% раствором лимоннокислого нат­рия (на 100 мл крови 10 мл раствора) и сохраняют в течение 3 суток при температуре 2-4° выше нуля. Для крупных жи­вотных доза выдержанной гетерогенной крови – 10-12 мл, для мелких животных - от 1 до 5 мл. Введение крови прово­дят подкожно с интервалами 3-5 дней. Показания и проти­вопоказания те же, что и при аутогемотерапии.

3.7. Кровопускание. Процедура производится с лечебной целью для снижения вязкости крови, понижения кровяного давления, удаления из организма токсинов и различных токсических продуктов ме­жуточного обмена.

Кровопускание производят при следующих заболеваниях:

1. При ослаблении функции сердечно-сосудистой системы с явлениями застоя в малом и большом круге кровообраще­ния.

2. При явлениях кардиопульмональной недостаточности - пневмониях, эмфиземе легких, отеке легких, ревматическом воспалении копыт.

3. При интоксикации с явлениями уремии, эклампсии и для освобождения организма от продуктов распада тканей.

4. При заболеваниях животных с явлениями гиперемии головного мозга, для понижения внутричерепного давления.

С лечебной целью кровопускание проводится у крупных животных в объеме 2-4 л, у мелких животных - от 200 до 400 мл. Для возмещения выпущенной крови вводят изотониче­ские растворы, 4-5%-ный раствор глюкозы в тех же дозах.

В специальных лабораториях кровопускание проводят для получения лечебных, профилактических и стимулирующих сывороток. При этом количество крови выпускают с учетом поставленной задачи, а также с учетом возраста, веса, упи­танности и вида животных, условий их содержания и кормле­ния. Кровь можно брать в следующих количествах: у лоша­дей и взрослых коров и быков 3-6 литров, у мелкого рогато­го скота – 300-600 мл, у свиней – 200-600 мл, у собак – 50-300 мл, у кур – 10-40 мл, у крупных птиц (индеек, гу­сей) – 40-60 мл.

Техника кровопускания. Взятие крови произво­дят из поверхностно лежащих вен иглой большого диаметра. Кровь собирают в градуированный сосуд для учета количест­ва выпускаемой крови.

На месте пункции коротко выстригают волосы, кожу про­тирают спирт-эфиром и смазывают настойкой йода. Вену сдавливают пальцем или резиновым жгутом, в результате че­го периферическая часть вены расширяется и наполняется кровью, становится менее подвижной. Пункционную иглу фиксируют между указательным, средним и большим пальца­ми правой руки. Прокол делают против тока крови под углом 45° во избежание повреждения противоположной стенки сосу­да. Если игла введена в просвет вены, то кровь вытекает струей, соответствующей просвету иглы. При неточном введении иглы достаточно слегка изменить ее положение, чтобы обеспечить необходимый ток крови. Когда просвет иглы зак­рыт, то иглу вынимают и прочищают мандреном или заменя­ют другой.

Иглу из вены извлекают после снятия жгута. Кожу на ме­сте прокола обрабатывают настойкой йода и наклеивают ку­сочек ваты, смоченной коллодием.

Для лабораторных исследований у лошадей, крупного и мелкого рогатого скота кровь берут из яремных вен. Прокол вены делают на границе перехода верхней трети шеи в сред­нюю. У свиней взятие крови проводят из ушной, лицевой и вены предплечья, а также путем отсечения кончика хвоста. У собак кровь берут из вен передней и тазовой конечностей. У птиц — из подкрыльцовой вены правого и левого крыла, а то­тальное кровопускание производят из шейных вен.

В производственных условиях взятие крови для диагно­стических целей производится из яремных вен иглой от шпри­ца «Рекорд». Эти иглы меньше причиняют боль животным, так как меньше травмируют кожу и вену. На муфту иглы на­девают отрезок резиновой трубки длиной 5-6 см. При взя­тии крови свободный конец резиновой трубки опускают в пробирку. После взятия крови иглы и резинки промывают хо­лодной водой, чистят и стерилизуют.