
- •Микробиологические методы исследования:
- •6.Принципы систематики прокариот
- •8. Вид у бактерий
- •11.Характеристика фототрофных бактерий с аноксигенным путем метаболизма
- •12. Грамотрицательные аэробные хемолитотрофные бактерии
- •13, Спириллы и спиролхеты относятся к группе извитых микроорганизмов (spiro – завиток).
- •14. В девятом издании Определителя бактерий Берги все прокариоты распределены по группам, не имеющим таксономического статуса.
- •17. Грамположительные анаэробные бактерии
- •18. Грамположительные аэробные кокки
- •16.1.1.2. Стрептококки (род Streptococcus)
- •Спорообразование
- •Прорастание споры
- •21. Представители семейства Rickettsia представлены полиморфными, чаще кокковидными или палочковидными, неподвижными клетками. Грамотрицательны.
- •23. Археи
- •История открытия
- •Форма клеток и колоний
- •Мембраны
- •24. По устоявшейся классификации в настоящее время выделяют 5 типов архей[167]:
- •25. Физические факторы
- •Температура
- •Влажность
- •Излучения
- •Классификация ictv
- •29. Вирусология — раздел микробиологии, изучающий вирусы (от латинского слова virus — яд).
- •2. Формы и сочетания клеток
- •3. Жгутики прокариот
- •Базальное тело и механизм его работы
- •Механизм движения клетки
- •6. Клеточная мембрана и внутриклеточные орагнеллы прокариот
- •9. Генетические рекомбинации у бактерий
- •10. Споры и спорообразование прокариот
- •Субстратное фосфорилирование
- •14. Конструктивный метаболизм
- •16. Уксуснокислым брожением называется окисление этилового спирта в уксусную кислоту под влиянием уксуснокислых бактерий.
- •17. При спиртовом брожении микроорганизмы превращают углеводы с образованием этилового спирта как основного продукта брожения:
- •19. Рост и размножение
- •22 Основные типы пит. Сред
- •Методы определения количества бактерий
- •1/10 И переносят в следующую пробирку с 9 см3
- •2 Разведения или, если разведения не производили, проводится посев на 2 чашки по 1 мл
- •4, Помещают в термостат. Посевы инкубируют при заданной температуре в течение определенного
- •80°С дистиллированной воды и медленно доводят до кипения на слабом огне. Затем воду
- •24. Микроскопические методы исследования микроорганизмов
- •Правила работы с имерсионной системой:
- •Методы окраски бактерий (мазков)
- •25. Распространение микроорганизмов в природе.
- •2. Микрофлора тела человека.
- •В медицине
Методы определения количества бактерий
Приготовление разведений
Приготовление десятикратных разведений исследуемого материала - одна из наиболее
частых процедур в технике санитарно-микробиологических исследований. Несмотря на
кажущуюся техническую простоту, она является одной из наиболее существенных источников
ошибок при определении количества микроорганизмов в объекте. Поэтому при приготовлении
разведении недопустимы малейшие отклонения от регламентированных процедур.
В стерильные пробирки с соблюдением правил асептики разливают стерильную воду или
специальный раствор для разведений по 9 см3
. Стерилизация заранее мерно расфасованной
жидкости для разведений не желательна, так как при автоклавировании ее объем может
измениться из-за испарения. Для приготовления 1-го разведения (1/10) 1 мл анализируемой пробы
стерильной пипеткой переносят в пробирку с 9 см3
жидкости для разведения. При этом пипетку
нельзя погружать в воду более чем на 3 мм, во избежание смывания микроорганизмов с ее
наружной поверхности. Новой стерильной пипеткой тщательно перемешивают содержимое
пробирки путем многократного заполнения и опорожнения пипетки, набирают 1 мл разведения
1/10 И переносят в следующую пробирку с 9 см3
жидкости для разведения, получая при этом
разведение 1/100. Повторяют эти операции до получения всего необходимого набора разведений.
Глубинный посев в плотные питательные среды
Метод используется для определения количества жизнеспособных микроорганизмов в тех
случаях, когда их идентификация не требуется, либо когда селекция нужной физиологической
группы бактерий может быть осуществлена за счет температуры инкубации, состава питательной
среды или обработки исследуемого материала перед посевом.
Питательный агар расплавляют и охлаждают до 45±5°С. На столе раскладывают пустые
стерильные чашки Петри и делают на их крышках необходимые надписи. После перемешивания
образца в чашку с соблюдением правил асептики стерильной пипеткой, вносят 1 мл исходного
материала или заранее приготовленного разведения. Разведения выбирают с таким расчетом,
чтобы на чашке выросло от 30 до 300 колоний. При исследовании пищевых продуктов общее
количество колоний может колебаться в пределах 15-30. Из каждой пробы засевают как минимум
2 Разведения или, если разведения не производили, проводится посев на 2 чашки по 1 мл
исходного материала. В некоторых случаях, например, при исследовании пищевых продуктов,
каждое разведение засевают на 2 параллельные чашки. После внесения материала (разведения) в
чашку заливают 10-12 мл питательного агара, предварительно профламбировав горлышко сосуда.
Слой питательной среды должен быть толщиной 4-5 мм. Затем быстро перемешивают содержимое
чашки, передвигая ее круговыми движениями по поверхности стола. Следует избегать
образования пузырьков, смачивания стенок и крышки. Рекомендуется, чтобы время от внесения
материала до заливки питательной средой не превышало 15 минут.
После застывания питательной среды чашки переворачивают и стопками, не более чем по 3-